Gusrina
BUDIDAYA IKAN
JILID 1
SMK
Direktorat Pembinaan Sekolah Menengah Kejuruan
Direktorat Jenderal Manajemen Pendidikan Dasar dan Menengah
Departemen Pendidikan Nasional
Hak Cipta pada Departemen Pendidikan Nasional
Dilindungi Undang-undang
BUDIDAYA IKAN
JILID 1
Untuk SMK
Penulis : Gusrina
Perancang Kulit : Tim
Ukuran Buku : 17,6 x 25 cm
Diterbitkan oleh
Direktorat Pembinaan Sekolah Menengah Kejuruan
Direktorat Jenderal Manajemen Pendidikan Dasar dan Menengah
Departemen Pendidikan Nasional
Tahun 2008
GUS GUSRINA
b Budidaya Ikan Jilid 1 untuk SMK /oleh Gusrina ---- Jakarta
: Direktorat Pembinaan Sekolah Menengah Kejuruan, Direktorat
Jenderal Manajemen Pendidikan Dasar dan Menengah,
Departemen Pendidikan Nasional, 2008.
xii. 202 hlm
Daftar Pustaka : A1-A8
Glosarium : B1-B12
ISBN : 978-602-8320-20-7
KATA SAMBUTAN
Puji syukur kami panjatkan kehadirat Allah SWT, berkat rahmat dan
karunia Nya, Pemerintah, dalam hal ini, Direktorat Pembinaan Sekolah
Menengah Kejuruan Direktorat Jenderal Manajemen Pendidikan Dasar
dan Menengah Departemen Pendidikan Nasional, telah melaksanakan
kegiatan penulisan buku kejuruan sebagai bentuk dari kegiatan
pembelian hak cipta buku teks pelajaran kejuruan bagi siswa SMK.
Karena buku-buku pelajaran kejuruan sangat sulit di dapatkan di pasaran.
Buku teks pelajaran ini telah melalui proses penilaian oleh Badan Standar
Nasional Pendidikan sebagai buku teks pelajaran untuk SMK dan telah
dinyatakan memenuhi syarat kelayakan untuk digunakan dalam proses
pembelajaran melalui Peraturan Menteri Pendidikan Nasional Nomor 45
Tahun 2008 tanggal 15 Agustus 2008.
Kami menyampaikan penghargaan yang setinggi-tingginya kepada
seluruh penulis yang telah berkenan mengalihkan hak cipta karyanya
kepada Departemen Pendidikan Nasional untuk digunakan secara luas
oleh para pendidik dan peserta didik SMK.
Buku teks pelajaran yang telah dialihkan hak ciptanya kepada
Departemen Pendidikan Nasional ini, dapat diunduh (download),
digandakan, dicetak, dialihmediakan, atau difotokopi oleh masyarakat.
Namun untuk penggandaan yang bersifat komersial harga penjualannya
harus memenuhi ketentuan yang ditetapkan oleh Pemerintah. Dengan
ditayangkan soft copy ini diharapkan akan lebih memudahkan bagi
masyarakat khsusnya para pendidik dan peserta didik SMK di seluruh
Indonesia maupun sekolah Indonesia yang berada di luar negeri untuk
mengakses dan memanfaatkannya sebagai sumber belajar.
Kami berharap, semua pihak dapat mendukung kebijakan ini. Kepada
para peserta didik kami ucapkan selamat belajar dan semoga dapat
memanfaatkan buku ini sebaik-baiknya. Kami menyadari bahwa buku ini
masih perlu ditingkatkan mutunya. Oleh karena itu, saran dan kritik
sangat kami harapkan.
Jakarta, 17 Agustus 2008
Direktur Pembinaan SMK
ii
KATA PENGANTAR
Buku Budidaya Ikan merupakan salah satu judul buku teks kejuruan
yang akan digunakan oleh para pendidik dan peserta didik SMK dan lembaga
pendidikan dan pelatihan lainnya. Buku teks kejuruan dalam bidang budidaya
ikan saat ini belum banyak dibuat, yang beredar saat ini kebanyakan bukubuku
praktis tentang beberapa komoditas budidaya ikan. Buku Budidaya Ikan
secara menyeluruh yang beredar dimasyarakat saat ini belum memenuhi
kebutuhan sebagai bahan ajar bagi siswa SMK yang mengacu pada Standar
Kompetensi Kerja Nasional Indonesia (SKKNI), Standar Isi (SI), Standar
Kompetensi Lulusan (SKL) dan model Kurikulum Tingkat Satuan Pendidikan
(KTSP) SMK.
Dengan melakukan budidaya ikan maka keberadaan ikan sebagai
bahan pangan bagi masyarakat akan berkesinambungan dan tidak akan
punah. Pada buku ini akan dibahas beberapa bab yang dapat digunakan
sebagai dasar dalam melakukan budidaya ikan. Bab pertama berisi tentang
wadah budidaya ikan, bab kedua berisi tentang media budidaya ikan, bab
ketiga berisi tentang hama dan penyakit ikan, bab keempat berisi tentang
nutrisi ikan, bab kelima berisi tentang teknologi pakan buatan, bab keenam
berisi tentang teknologi pakan alami, bab ketujuh berisi tentang
pengembangbiakan ikan dan bab kedelapan berisi tentang hama dan
penyakit ikan. Sedangkan materi penunjang seperti pemasaran, analisa
usaha budidaya ikan dan kesehatan dan keselamatan kerja terdapat pada
bab terakhir.
Agar dapat membudidayakan ikan yang berasal dari perairan tawar,
payau maupun laut ada beberapa hal yang harus dipahami antara lain adalah
memahami jenis-jenis wadah dan media budidaya ikan, pengetahuan tentang
nutrisi ikan dan jenis-jenis pakan alami yang meliputi tentang morfologi,
biologi dan kebiasaan hidup. Selain itu pengetahuan teknis lainnya yang
harus dipahami adalah tentang pengembangbiakan ikan mulai dari seleksi
induk, teknik pemijahan ikan, proses pemeliharaannya sampai pemanenen
ikan.
Akhir kata penulis mengucapkan puji syukur kehadirat Allah SWT atas
berkah dan rahmatNya sehingga dapat menyelesaikan penulisan buku ini
dihadapan pembaca. Tak lupa penulis mengucapkan terima kasih kepada
suami dan anak-anak atas dukungan dan orang tua tercinta serta temanteman
yang telah membantu. Selain itu kepada Direktorat Pembinaan SMK
Direktorat Jenderal Pendidikan Dasar dan Menegah yang menyediakan
anggaran untuk meyediakan sumber belajar buku teks kejuruan yang sesuai
dengan Standar Isi dan Standar Kompetensi Kelulusan SMK. Semoga buku
ini bermanfaat bagi yang membacanya dan menambah pengetahuan serta
wawasan. Dan juga kami mohon saran dan masukan yang membangun
karena keterbatasan yang dimiliki oleh penyusun.
Penyusun
iii
DAFTAR ISI
JILID 1
KATA PENGANTAR.........................................................................................ii
DAFTAR ISI.....................................................................................................iii
SINOPSIS........................................................................................................ v
PETA KOMPETENSI......................................................................................vii
BAB I PENDAHULUAN .................................................................................. 1
BAB II WADAH BUDIDAYA IKAN ................................................................ 23
2.1. JENIS-JENIS WADAH BUDIDAYA IKAN ....................................... 23
2.2. KONSTRUKSI WADAH BUDIDAYA............................................... 29
2.3. PERSIAPAN WADAH BUDIDAYA..................................................45
BAB III MEDIA BUDIDAYA IKAN .................................................................. 51
3.1. SUMBER AIR ..................................................................................... 52
3.2. PARAMETER KUALITAS AIR............................................................ 54
3.3. PENGUKURAN KUALITAS AIR BUDIDAYA IKAN ........................ 69
BAB IV. PENGEMBANGBIAKAN IKAN................................................... 75
4.1. SELEKSI INDUK................................................................................. 75
4.2. TEKNIK PEMIJAHAN IKAN.............................................................. 105
4.3 PENETASAN TELUR........................................................................ 133
4. 4. PEMELIHARAAN LARVA DAN BENIH IKAN............................... 141
4.5. PEMBESARAN IKAN.................................................................... 149
4.6. PEMANENAN................................................................................. 160
JILID 2
BAB V. NUTRISI IKAN ......................................................................... 167
5.1. ENERGI........................................................................................... 167
5.2. PROTEIN.......................................................................................... 172
5.3. KARBOHIDRAT............................................................................ 187
5.4. LIPID............................................................................................. 195
5.5. VITAMIN ....................................................................................... 204
5.6. MINERAL...................................................................................... 237
BAB VI. TEKNOLOGI PAKAN BUATAN .................................................... 249
6.1. JENIS-JENIS BAHAN BAKU ........................................................ 252
6.2. PENYUSUNAN FORMULASI PAKAN.......................................... 264
6.3 PROSEDUR PEMBUATAN PAKAN............................................. 282
6.4. UJI COBA PAKAN IKAN............................................................... 292
6.5. MANAJEMEN PEMBERIAN PAKAN............................................ 315
6.6 PAKAN DAN KUALITAS AIR........................................................ 324
BAB VII. TEKNOLOGI PRODUKSI PAKAN ALAMI ................................. 329
7.1. JENIS-JENIS PAKAN ALAMI ....................................................... 329
7.2. BUDIDAYA PHYTOPLANKTON................................................... 337
7.3. BUDIDAYA ZOOPLANKTON ....................................................... 355
iv
7.4. BUDIDAYA BENTHOS ................................................................. 389
7.5. BIOENKAPSULASI......................................................................... 397
JILID 3
BAB VIII. HAMA DAN PENYAKIT IKAN.................................................... 401
8.1. JENIS-JENIS HAMA DAN PENYAKIT.......................................... 401
8.2. PENCEGAHAN HAMA DAN PENYAKIT IKAN............................. 413
8.3. GEJALA SERANGAN PENYAKIT ............................................... 418
8.4. PENGOBATAN PENYAKIT IKAN................................................ 431
BAB. IX. PEMASARAN .............................................................................. 447
9.1. PENGERTIAN PEMASARAN....................................................... 447
9.2. CIRI-CIRI PEMASARAN HASIL PERIKANAN.............................. 448
9.3. PERENCANAAN DAN TARGET PENJUALAN ............................ 450
9.4. ESTIMASI HARGA JUAL.............................................................. 452
9.5. SISTEM PENJUALAN .................................................................. 455
9.6. STRATEGI PROMOSI ................................................................... 456
BAB. X. ANALISA KELAYAKAN USAHA ................................................... 465
BUDIDAYA IKAN..................................................................................... 465
10.1. PENGERTIAN STUDI KELAYAKAN ............................................ 465
10.2. NET PRESENT VALUE (NPV) ..................................................... 478
10.3. NET BENEFIT COST RATIO (NBC RATIO)................................. 479
10.4. INTERNAL RATE OF RETURN (IRR) .......................................... 479
10.5. ANALISIS BREAK EVENT POINT (BEP) ..................................... 480
10.6. APLIKASI ANALISA USAHA ........................................................ 481
BAB. XI. KESEHATAN DAN KESELAMATAN ........................................... 487
KERJA......................................................................................................... 487
11.1. PENGERTIAN KESEHATAN DAN KESELAMATAN KERJA (K3)487
11.2. PENERAPAN KAIDAH K3 PADA DUNIA USAHA PERIKANAN
BUDIDAYA .............................................................................................. 487
LAMPIRAN A DAFTAR PUSTAKA
LAMPIRAN B GLOSARIUM
v
SINOPSIS
Buku teks dengan judul budidaya ikan dapat dipelajari oleh para
peserta diklat dan pendidik pada Sekolah Menengah Kejuruan yang
mengambil program studi Budidaya Ikan. Menurut SKKNI dalam program
studi Budidaya Ikan dapat dikelompokkan menjadi Budidaya Ikan Air Tawar,
Budidaya Ikan Air Laut, Budidaya Ikan Air Payau dan Budidaya Ikan Hias.
Dalam buku teks ini akan memberikan pengetahuan mendasar tentang
bagaimana membudidayakan ikan dan dapat di aplikasikan pada berbagai
habitat budidaya. Pada buku teks ini berisi tentang wadah budidaya yang
dapat digunakan dalam melakukan budidaya ikan, media yang optimal dalam
budidaya ikan agar proses budidaya dapat berlangsung sesuai dengan
kebutuhan ikan untuk hidup tumbuh dan berkembang, bagaimana melakukan
proses perkembangbiakan ikan budidaya dari sudut biologis ikan budidaya
dan aplikasi pada beberapa ikan budidaya, kebutuhan nutrisi untuk ikan yang
akan dibudidayakan, bagaimana membuat pakan ikan yang harus diberikan
pada ikan budidaya, bagaimana memproduksi pakan alami sebagai pakan
yang sangat dibutuhkan bagi larva ikan dan benih ikan budidaya, hama dan
penyakit ikan yang dapat menyerang ikan budidaya serta perkembangan ilmu
pengetahuan dan teknologi dalam budidaya ikan.
Budidaya ikan merupakan suatu kegiatan yang sangat penting saat ini
dan masa yang akan datang. Hal ini dikarenakan ikan merupakan salah satu
jenis pangan yang sangat dibutuhkan oleh manusia yang mempunyai harga
jual relatif murah dan mempunyai kandungan gizi yang lengkap. Dengan
mengkonsumsi ikan maka kebutuhan gizi manusia akan terpenuhi. Oleh
karena itu kemampuan sumberdaya manusia untuk memproduksi ikan
budidaya sangat dibutuhkan. Dengan semakin bertambahnya jumlah
penduduk dan keterbatasan lahan budidaya selanjutnya, maka dibutuhkan
suatu teknologi budidaya ikan pada lahan yang terbatas dan produktivitas
tinggi untuk memenuhi kebutuhan pangan. Dengan mempelajari buku teks ini
diharapkan para pembaca dapat mengaplikasikan ilmu budidaya pada
berbagai media dan teknologi budidaya.
Pengetahuan tentang wadah budidaya ikan dan media yang
dibutuhkan bagi ikan budidaya akan memberikan pemahaman tentang
investasi yang harus dipersiapkan sesuai dengan skala produksi yang akan
diterapkan. Dengan menerapkan teknologi budidaya ikan yang intensif
dibutuhkan pemahaman tentang produksi pakan buatan yang ramah
lingkungan tetapi sesuai dengan kebutuhan ikan budidaya. Selain itu dalam
membudidayakan ikan sangat dibutuhkan pakan alami pada fase larva dan
benih, maka sangat dibutuhkan suatu pemahaman bagaimana
membudidayakan pakan alami yang sesuai dengan kebutuhan ikan.
vi
Selain itu dalam suatu budidaya ikan maka akan ada kendala yang dialami
pembudidaya ikan yaitu adanya serangan hama dan penyakit ikan. Oleh
karen itu diperlukan pemahaman tentang jenis-jenis hama dan penyakit yang
dapat menyerang ikan budidaya serta bagaimana tindakan pencegahan dan
pengobatan yang harus dilakukan oleh para pembudidaya agar ikan yang
dibudidayakan tidak terserang hama dan penyakit.
Dengan semakin berkembangnya ilmu pengetahuan dan teknologi
maka penerapan teknologi yang terkini telah merambah dalam budidaya ikan.
Pengembangbiakan ikan secara tradisional akan semakin kurang diminati
dan akan beralih kepada sentuhan ilmu pengetahuan dan teknologi untuk
meningkatkan produksi pada ikan budidaya. Aplikasi teknologi molekuker
dalam budidaya ikan sudah bisa diterapkan mulai dari rekayasa kromosom,
rekayasa gen dan terkini adalah rekayasa sel. Rekayasa kromosom antara
lain adalah melakukan kegiatan ginogenesis, androgenesis dan poliploidisasi
yang tujuan dari manipulasi kromosom ini untuk meningkatkan produktivitas
ikan budidaya dan memberikan nilai tambah pada pembudidaya ikan.
Sedangkan rekayasa gen dapat diterapkan jika peralatan untuk melakukan
rekayasa ini tersedia dimana dengan melakukan rekayasa gen dapat dibuat
komoditas ikan budidaya yang disisipi gen yang menguntungkan bagi
pembudidaya misalnya gen pertumbuhan, gen antibeku dan gen warna
tubuh.
Dengan mempelajari buku teks ini diharapkan dapat memahami
pengetahuan yang sangat mendasar dalam membudidayakan ikan. Dalam
buku teks ini juga dijelaskan berbagai kemampuan dasar untuk melakukan
suatu kegiatan yang langsung dapat diaplikasikan dengan menggunakan
bahasa yang sederhana dan mudah dimengerti oleh berbagai kalangan.
vii
PETA KOMPETENSI
KODE UNIT JUDUL UNIT KOMPETENSI/SUB KOMPETENSI
Memenuhi persyaratan kerja di DU/DI
PBD. PL 00.001U.01 1. Menyetujui kondisi dan ketentuan ketenagakerjaan
2. Memenuhi persyaratan ketenagakerjaan
Memenuhi persyaratan kesehatan, keselamatan dan
lingkungan di tempat kerja
1. Mengikuti prosedur di tempat kerja untuk kesehatan
dan keselamatan di tempat kerja
2. Melakukan tindakan kesehatan dan keselamatan
kerja dalam kondisi bahaya/darurat
PBD. PL 00.002U.01
3. Memelihara insfrastruktur dan lingkungan kerja
Membina kerjasama
1. Melakukan interaksi di tempat kerja
2. Melakukan pertemuan, menyelami dan mengarahkan
PBD. PL 00.003U.01 klien dan pelanggan
3. Memelihara penampilan pribadi
Menggunakan sistem komunikasi
1. Mengumpulkan, mencatat dan mengirim data
2. Mengumpulkan, mencatat dan menyediakan
informasi untuk memenuhi kebutuhan tempat kerja
PBD. PL 00.004U.01
3. Menanggapi masalah
Membuat perencanaan kerja
PBD. PL 00.005U.01 1. Membuat jadwal kegiatan
2. Mengatur bahan, peralatan dan cara kerja
Menyiapkan peralatan
1. Mengidentifikasi jenis peralatan
2. Menentukan peralatan
3. Mengontrol cara kerja peralatan
PBD. PL 00. 006U. 01
4. Membuat laporan
viii
Mengidentifikasi parameter kualitas air
1. Menyiapkan peralatan dan bahan yang digunakan
dalam identifikasi parameter kualitas air
2. Mengambil sampel air di lapangan
3. Mengukur parameter kualitas air
PBD.PL 00.007U.01
4. Membuat laporan hasil identifikasi parameter kualitas
air
KODE UNIT JUDUL UNIT KOMPETENSI/ELEMEN KOMPETENSI
Menentukan lokasi budidaya
1. Merencanakan tahapan kegiatan penentuan lokasi
budidaya
2. Mengidentifikasi persyaratan lokasi budidaya melalui
kegiatan survey lapangan
3. Menentukan lokasi
PBD. PL00.008U. 01
4. Membuat laporan
Menyiapkan wadah
1. Mengidentifikasi wadah
2. Menentukan wadah
3. Mengontrol proses penggunaan wadah
PBD. PL 00. 009U. 01
4. Membuat laporan
Mengidentifikasi hama dan penyakit ikan
1. Mengambil sampel di lapangan
2. Mengidentifikasi gejala serangan
3. Menentukan jenis parasit
PBD. PL 00. 010U. 01
4. Membuat laporan
Mengemas ikan
1. Menyiapkan teknik pengepakan
2. Menentukan jenis ikan yang dikemas
PBD. PL 00. 011U. 01 3. Melakukan pengepakan ikan
4. Membuat laporan
Memasarkan ikan
1. Mencari order pemasaran
2. Melaksanakan penjualan
3. Menyiapkan kuota/target
PBD. PL00.012U. 01
4. Mengontrol proses pemasaran
ix
Menentukan lokasi pembenihan ikan
1. Merencanakan tahapan kegiatan penentuan lokasi
pembenihan
2. Mengidentifikasi persyaratan lokasi pembenihan ikan
3. Memilih lokasi pembenihan ikan
PBD.PL 01.001I.01
4. Membuat laporan
Menyiapkan media pembenihan ikan
1. Merencanakan kegiatan persiapan media
pembenihan
2. Menyiapkan wadah pembenihan
3. Menyiapkan air untuk pembenihan
PBD.PL 01.002I.01
4. Membuat laporan
Mengelola induk ikan
1. Memelihara calon induk ikan
2. Menyeleksi calon induk jantan dan betina
3. Melakukan pematangan gonad induk ikan
PBD.PL 01.003I.01
4. Menyeleksi induk siap pijah
Memijahkan induk ikan
1. Melakukan proses pemijahan ikan
PBD.PL 01.004I.01 2. Menangani telur
3. Menetaskan telur
Mengkultur pakan alami
1. Mengidentifikasi jenis-jenis pakan alami
PBD.PL 01.005I.01 2. Menyiapkan media tempat tumbuhnya pakan alami
3. Menebar bibit pakan alami
Memelihara larva ikan
1. Merawat larva ikan
2. Memberi pakan larva
3. Mengamati perkembangan larva
4. Menangani hama dan penyakit pada pemeliharaan
larva
PBD.PL 01.006I.01
5. Memantau kualitas dan kuantitas air pada
pemeliharaan larva
Memanen hasil pembenihan ikan
1. Merencanakan kegiatan pemanenan hasil
pembenihan
2. Melakukan pemananen benih ikan
3. Mengemas benih ikan
PBD.PL.01.007I.01
4. Membuat laporan
x
Memasarkan hasil pembenihan ikan
1. Mengidentifikasi calon pembeli
2. Membuat kesepakatan
3. Melakukan transaksi
4. Melakukan perhitungan laba rugi
PBD.PL.01.008I.01
5. Membuat laporan
Menentukan lokasi pendederan ikan
1. Merencanakan tahapan kegiatan penentuan lokasi
pendederan ikan
2. Mengidentifikasi persyaratan lokasi pendederan ikan
3. Memilih lokasi pendederan
PBD.PL 02.009I.01
4. Membuat laporan
Menyiapkan media pendederan ikan
1. Merencanakan kegiatan persiapan pendederan ikan
2. Menyiapkan wadah pendederan ikan
3. Menyiapkan air untuk pendederan ikan
PBD.PL 02.010I.01
4. Membuat laporan
Menebar benih ikan pada pendederan
1. Merencanakan kegiatan penebaran benih ikan
2. Menebar benih ikan
PBD.PL 02.011I.01
3. Membuat laporan
Memantau pertumbuhan benih ikan pada pendederan
1. Merencanakan kegiatan pemantauan pertumbuhan
benih ikan
2. Mengambil sampel untuk menduga pertumbuhan
benih ikan
3. Melakukan sortasi
PBD.PL 02.012I.01
4. Membuat laporan
Mengelola pakan benih ikan pada pendederan
1. Mengidentifikasi jenis-jenis pakan untuk benih ikan
2. Merencanakan kegiatan pengelolaan pakan benih
ikan
3. Menentukan jumlah, waktu dan frekuensi pemberian
pakan
PBD.PL 02.013I.01
4. Membuat laporan
xi
Mengelola kualitas dan kuantitas air pada
pendederan ikan
1. Merencanakan kegiatan pengelolaan kualitas dan
kuantitas air
2. Mengidentifikasi kualitas dan kuantitas air pada
pendederan ikan
3. Mengelola kualitas dan kuantitas air pada
pendederan ikan
PBD.PL 02.014I.01
4. Membuat laporan
Mengendalikan hama dan penyakit pada pendederan
ikan
1. Merencanakan kegiatan monitoring hama dan
penyakit
2. Mengidentifikasi hama dan penyakit
3. Melakukan pengobatan ikan
4. Mencatat kejadian serangan penyakit
PBD.PL 02.015I.01
5. Membuat laporan
Memanen hasil pendederan ikan
1 Merencanakan kegiatan pemanenan hasil
pendederan ikan
2. Memanen benih ikan
PBD.PL 02.016I.01
3. Membuat laporan
Memasarkan hasil pendederan ikan
1. Mengidentifikasi calon pembeli
2. Membuat kesepakatan
3. Melakukan transaksi
4. Melakukan perhitungan laba rugi
PBD.PL 02.017I.01
5. Membuat laporan
Menentukan lokasi pembesaran ikan
1. Merencanakan tahapan kegiatan pemilihan lokasi
2. Mengidentifikasi persyaratan lokasi pembesaran
ikan
3. Memilih lokasi pembesaran ikan
PBD.PL 03.018I.01
4. Membuat laporan
Menyiapkan media pembesaran ikan
1. Merencanakan kegiatan persiapan pembesaran
ikan
2. Menyiapkan wadah pembesaran ikan
3. Menyiapkan media pembesaran ikan
PBD.PL 03.019I.01
4. Membuat laporan
xii
Menebar benih ikan pada pembesaran
1. Merencanakan kegiatan penebaran benih ikan
2. Menebar benih ikan
PBD.PL 03.020I.01
3. Membuat laporan
Memantau pertumbuhan ikan pada pembesaran
1. Merencanakan kegiatan pemantauan pertumbuhan
ikan
2. Mengambil sampel untuk menduga pertumbuhan
ikan
3. Melakukan sortasi
PBD.PL 03.021I.01
4. Membuat laporan
Mengelola pakan pembesaran ikan
1. Mengidentifikasi jenis-jenis pakan untuk
pembesaran ikan
2. Merencanakan kegiatan pengelolaan pakan
pembesaran ikan
3. Menentukan jumlah, waktu dan frekuensi pemberian
pakan
PBD.PL 03.022I.01
4. Membuat laporan
Mengendalikan hama dan penyakit pada pembesaran
ikan
1. Merencanakan kegiatan monitoring hama dan
penyakit
2. Mengidentifikasi hama dan penyakit pada
pembesaran ikan
3. Melakukan pengobatan ikan
4. Mencatat kejadian serangan penyakit
PBD.PL 03.023I.01
5. Membuat laporan
Memanen hasil pembesaran ikan
1. Merencanakan kegiatan pemanenan ikan hasil
pembesaran
2. Melakukan pemanenan
3. Mengemas ikan hasil pembesaran
PBD.PL 03.024I.01
4. Membuat laporan
Memasarkan hasil pembesaran ikan
1. Mengidentifikasi calon pembeli ikan
2. Melakukan kesepakatan
3. Melakukan transaksi
4. Melakukan penghitungan laba rugi
PBD.PL 03.025I.01
5. Membuat laporan
1
BAB I PENDAHULUAN
Indonesia merupakan salah satu
negara dengan luas perairan hampir
dua pertiga dari luas wilayahnya
yaitu sekitar 70%. Wilayah perairan
di Indonesia berdasarkan kandungan
kadar garamnya atau salinitas dapat
dikelompokkan menjadi tiga jenis
perairan yaitu perairan tawar,
perairan payau dan perairan laut.
Dari ketiga jenis perairan tersebut
dapat dihasilkan suatu produksi
perikanan yang memberikan nilai
tambah bagi pertumbuhan ekonomi
nasional yang dapat meningkatkan
kesejahteraan masyarakat Indonesia.
Potensi perikanan budidaya secara
nasional diperkirakan sebesar 15,59
juta hektar (Ha) yang terdiri dari
potensi air tawar 2,23 juta ha, air
payau 1,22 juta ha dan budidaya laut
12,14 juta ha. Pemanfaatannya
hingga saat ini masing-masing baru
10,1 persen untuk budidaya ikan air
tawar, 40 persen pada budidaya air
payau dan 0,01 persen untuk
budidaya laut, sehingga secara
nasional produksi perikanan
budidaya baru mencapai 1,48 juta
ton. Oleh karena itu, untuk tahun
2006 Departemen Kelautan dan
Perikanan Republik Indonesia,
menurut Freddy Numberi (2006),
akan menargetkan produksi
perikanan pada tahun 2006
mencapai 7,7 juta ton atau
meningkat sebesar 13%, yang terdiri
dari produksi perikanan tangkap
sebesar 5,1 juta ton dan produksi
perikanan budidaya sebesar 2,6 juta
ton, serta konsumsi ikan menjadi
28kg/kapita/tahun.
Berdasarkan target produksi
perikanan budidaya yang telah
ditetapkan oleh Departemen
Kelautan dan Perikanan maka
Departemen Pendidikan Nasional
sebagai departemen yang akan
menciptakan sumber daya manusia
yang bergelut dibidang kelautan dan
perikanan untuk membuat suatu
2
perangkat pendidikan agar dihasilkan
sumber daya manusia yang
kompeten sesuai dengan tuntutan
perkembangan ilmu pengetahuan
dan teknologi yang berkembang saat
ini.
Perikanan budidaya baik perikanan
air tawar, air payau dan air laut
sangat potensial untuk
dikembangkan di Indonesia. Sekolah
Menengah Kejuruan merupakan
salah satu jenjang pendidikan yang
akan menciptakan sumberdaya
manusia tingkat menengah yang
trampil dan kompenten sesuai
dengan bidang keahliannya masingmasing.
Salah satu bidang keahlian
yang ada pada SMK ini adalah
Budidaya Ikan/Budidaya Perairan.
Dalam bidang keahlian ini akan
dipelajari berbagai macam hal
tentang budidaya ikan dari berbagai
macam perairan baik tawar, payau
dan laut, yang dalam kegiatan
produksi akuakultur dikenal sebagai
budidaya air tawar (freshwater
culture), budidaya air payau
(brackishwater culture) dan budidaya
laut (mariculture). Salah satu alat
bantu yang dapat membantu dalam
kegiatan belajar mengajar di SMK
adalah buku. Saat ini ketersediaan
buku teks tentang budidaya ikan di
Indonesia masih sangat terbatas.
Oleh karena itu Departemen
Pendidikan Nasional melalui
Direktorat Pembinaan SMK, Dirjen
Mandikdasmen mengadakan
kegiatan penulisan buku teks yang
dapat digunakan bagi semua
kalangan pendidik dan tenaga
kependidikan yang ada di SMK.
Buku teks yang akan dipergunakan
untuk kegiatan pembelajaran di SMK
bagi bidang keahlian Budidaya Air
tawar, Budidaya Air Payau dan
Budidaya Air laut ini diberi judul
Budidaya Ikan. Dalam buku
Budidaya Ikan ini akan dibahas
tentang berbagai topik yang sangat
mendukung pemahaman tentang
bagaimana cara melakukan
budidaya ikan sesuai dengan kaidahkaidah
dalam melakukan kegiatan
produksi budidaya ikan. Topik-topik
pembelajaran ini dikelompokkan
dalam beberapa bab yaitu wadah
budidaya ikan, media budidaya ikan,
pengembangbiakan ikan, nutrisi ikan,
teknologi pakan buatan, teknologi
produksi pakan alami, hama penyakit
ikan dan genetika ikan.
Wadah budidaya ikan
Dalam bab ini akan dibahas tentang
berbagai macam wadah yang dapat
dipergunakan untuk melakukan
kegiatan budidaya ikan antara lain
adalah kolam/tambak, bak, akuarium
dan karamba jaring terapung. Selain
itu juga akan dibahas tentang
bagaimana konstruksi dari setiap
wadah yang akan dipergunakan
untuk melakukan kegiatan budidaya
ikan yang sesuai dengan
tingkat/level produksi yang
diterapkan. Dan juga akan dibahas
tentang bagaimana menyiapkan
wadah budidaya ikan yang akan
dipergunakan untuk kegiatan
budidaya sesuai dengan kaidahkaidah
dalam melakukan kegiatan
budidaya.
3
Dengan memahami berbagai macam
wadah budidaya, konstruksi wadah
budidaya dan persiapan wadah
budidaya ikan yang akan
dipergunakan untuk kegiatan
budidaya maka akan diperoleh
peningkatan produktivitas dalam
budidaya ikan. Berdasarkan
keberadaan dan lokasi perairan
yang ada di Indonesia maka kegiatan
budidaya ikan air tawar akan lebih
banyak dilakukan pada masyarakat
yang tinggal di daerah dataran
rendah atau dataran tinggi,
sedangkan budidaya ikan air payau
dapat dilakukan pada masyarakat
Indonesia yang tinggal di daerah
sekitar pantai, muara sungai atau
rawa payau.
Pada masyarakat yang hidup di
daerah pantai dimana pantainya
mempunyai perairan laut yang
terlindung dari ombak dan badai
seperti teluk, selat dan perairan
dangkal yang terlindung dapat
melakukan kegiatan budidaya ikan.
Berdasarkan lokasi budidaya ikan
tersebut dapat dilakukan pemilihan
terhadap wadah budidaya ikan yang
sesuai dengan karakteristik setiap
lokasi budidaya. Berdasarkan jenis
wadah budidaya ikan yang dipilih
oleh para pembudidaya ikan di
Indonesia,menurut Effendi (2004),
sistem budidaya ikan dan beberapa
komoditas yang sudah lazim
dibudidayakan di Indonesia dapat
dilihat pada Tabel 1.1. dan Gambar
1.1 – 1.20 Berbagai macam
komoditas ikan budidaya.
Tabel 1.1. Komoditas akuakultur yang sudah lazim dibudidayakan dalam
sistem budidaya di Indonesia.
Sistem Komoditas
Kolam air tenang
Kolam air deras
Tambak
Jaring apung
Ikan mas, nila, gurami, udang galah, patin, bawal,
tawes, ikan hias, tambakan, sepat, kowan, mola,
sidat, pakan alami
Ikan mas
Udang windu, bandeng, belanak, mujair, nila,
kakap putih, kerapu, rumput laut, kepiting bakau,
udang galah
Kerapu, kakap, udang windu, bandeng, samadar,
ikan hias laut, ikan mas, nila, mujair, gurami, patin,
4
Jaring tancap
Keramba
Kombongan
Akuarium/tangki/bak
bawal, sidat, ikan hias air tawar.
Kerapu, kakap, udang windu, bandeng, samadar,
ikan hias laut, ikan mas, nila, mujair, gurami, patin,
bawal, sidat, ikan hias air tawar
Ikan mas, nila, mujair, patin, gurami, betutu
Ikan mas, ikan nila
Ikan hias, benih ikan konsumsi, plankton pakan
alami
Gambar 1.1. Ikan Mas (Cyprinus carpio)
5
Gambar 1.2. Ikan Nila (Oreochromis
niloticus)
Gambar 1.3. Ikan Gurami
(Osphronemus Gouramy)
Gambar 1.4. Udang galah
(Macrobrachium rosenbergii)
Gambar 1.5. Ikan Patin (Pangasius
hiphothalamus)
6
Gambar 1.6. Ikan bawal (Colosoma
brachyponum)
Gambar 1.7. Ikan tawes ( Puntius
gonionotus)
Gambar 1.8. Ikan tambakan
(Helestoma temmincki)
Gambar 1.9. Ikan sepat
(Trichogaster pectolaris )
Gambar 1.10. Ikan kowan
(Ctenopharyngodon idella)
Gambar 1.11. Ikan lele (Clarias sp)
7
Gambar 1.12. Ikan sidat
(Anguilla sp.)
Gambar 1.13. Udang Vanamei
(Penaeus vannamei)
Gambar 1.14. Ikan bandeng (Chanos
chanos)
Gambar 1.15. Kerapu merah
(Plectropomus maculatus)
Gambar 1.16. Ikan kakap putih
(Lates calcariver)
Gambar 1.17. Ikan kerapu
(Chromileptes altivelis)
8
Gambar 1.18. Ikan betutu
(Oxyeleotris marmorata)
Gambar 1.19. Lobster Air tawar
(Cherax Quadricarinatus)
Gambar 1.20. Ikan Beronang Lada
(Siganus gutatus)
Berdasarkan sistem budidaya ikan
tersebut maka dapat dipilih beberapa
wadah budidaya ikan yang akan
dipergunakan untuk melakukan
kegiatan budidaya yaitu kolam yang
dapat dikelompokkan menjadi kolam
air deras dan kolam air tenang
berdasarkan sumber air yang
dipergunakan dalam kegiatan
budidaya. Sedangkan beberapa jenis
wadah budidaya ikan yang dapat
dipergunakan untuk kegiatan
budidaya ikan diperairan umum
antara lain adalah jaring apung,
jaring tancap, karamba dan
kombongan. Pada kegiatan budidaya
ikan air tawar, payau ataupun laut
dibutuhkan benih ikan dan induk ikan
yang dapat menggunakan jenis
wadah budidaya antara lain adalah
bak,tangki dari bahan serat fiber dan
akuarium. Oleh karena itu dalam
buku teks ini akan dibahas tentang
berbagai macam wadah budidaya
ikan antara lain adalah kolam/
tambak, bak, akuarium dan karamba
jaring terapung.
Media Budidaya Ikan
Ikan sebagai salah satu jenis
organisme yang hidup pada suatu
perairan, jika manusia melakukan
kegiatan budidaya yaitu
memproduksi organisme tersebut
dalam suatu lingkungan perairan
yang terbatas dan terkontrol dengan
baik maka manusia harus
memahami tentang lingkungan
perairan dimana ikan tersebut dapat
tumbuh dan berkembangbiak seperti
di habitat aslinya. Lingkungan
perairan tempat ikan yang
dibudidayakan tumbuh dan
berkembang biasa disebut dengan
media. Media yang dapat
dipergunakan untuk melakukan
kegiatan budidaya ikan ada
beberapa persyaratan-persyaratan
agar ikan dapat tumbuh dan
berkembangbiak pada wadah yang
terbatas tersebut. Dalam buku teks
ini akan dibahas tentang berbagai
9
macam sumber air yang dapat
dipergunakan untuk kegiatan
budidaya ikan, berbagai macam
parameter kualitas air yang akan
mendukung kegiatan budidaya ikan
dan bagaimana kita melakukan
pengukuran terhadap beberapa
parameter kualitas air yang sangat
diperlukan untuk kelangsungan hidup
oragnisme air yang akan
dibudidayakan.
Dalam bahasan sumber air berisi
tentang sumber air yang dapat
digunakan untuk kegiatan budidaya
ikan ada beberapa macam.
Berdasarkan asalnya sumber air
yang dapat digunakan untuk
kegiatan budidaya ikan dapat
dikelompokkan menjadi dua yaitu air
permukaan dan air tanah. Air
permukaan yaitu air hujan yang
mengalami limpasan/berakumulasi
sementara ditempat-tempat rendah
misalnya : air sungai, waduk, danau
dan rawa. Selain itu air permukaan
dapat juga didefenisikan sebagai air
yang berada disungai, danau, waduk,
rawa dan badan air lainnya yang
tidak mengalami infiltrasi kedalam.
Sumber air permukaan tersebut
sudah banyak dipergunakan untuk
kegiatan budidaya ikan. Sedangkan
air tanah yaitu air hujan yang
mengendap atau air yang berada
dibawah permukaan tanah. Air tanah
yang saat ini digunakan untuk
kegiatan budidaya dapat diperoleh
melalui cara pengeboran air tanah
dengan kedalaman tertentu sampai
diperoleh titik sumber air yang akan
keluar dan dapat dipergunakan untuk
kegiatan budidaya.
Pada topik tentang parameter
kualitas air akan dibahas tentang
beberapa parameter kualitas air dari
berbagai aspek antara lain adalah
aspek fisik, aspek kimia dan aspek
biologi. Dari aspek fisik akan dibahas
secara detail tentang beberapa
parameter fisik dari suatu perairan
yang sangat berpengaruh dalam
melakukan kegiatan budidaya ikan
antara lain adalah kepadatan/berat
jenis air, kekentalan/viscosity,
tegangan permukaan, suhu air,
kecerahan dan kekeruhan air serta
salinitas. Pada aspek secara kimia
akan dibahas secara detail tentang
beberapa parameter kimia yang
sangat berpengaruh pada media
budidaya ikan antara lain adalah
oksigen, karbondioksida, pH, bahan
organik dan garam mineral, nitrogen,
alkalinitas dan kesadahan.
Sedangkan pada aspek secara
biologi akan dibahas tentang
kepadatan dan kelimpahan plankton
pada suatu wadah budidaya ikan
yang sesuai untuk media budidaya
ikan.
Pada topik pengukuran parameter
kualitas air akan dibahas beberapa
parameter kualitas air dari aspek fisik,
kimia dan biologi dengan
menggunakan beberapa peralatan
pengukuran kualitas air yang sangat
mudah pengoperasionalan alatnya
dan tersedia dibeberapa tempat
budidaya. Dengan mengetahui nilai
parameter kualitas air pada suatu
media budidaya maka akan dapat
dicegah suatu kejadian yang dapat
merugikan bagi organisme air yang
dibudidayakan sehingga tidak
merugikan manusia. Seperti
diketahui bahwa organisme air yang
dipelihara dalam suatu wadah
budidaya mempunyai kemampuan
10
untuk beradaptasi dengan media
dimana ikan itu hidup, sehingga jika
terjadi fluktuasi terhadap beberapa
parameter kualitas air pada suatu
lingkungan budidaya segera
dilakukan penanganan dengan
memberikan perlakuan khusus pada
media budidaya.
Pengembangbiakan ikan
Ikan sebagai salah satu jenis
organisme perairan yang sudah
dapat dibudidayakan oleh manusia.
Dengan melakukan kegiatan
budidaya maka kebutuhan manusia
akan ikan akan selalu tersedia
sesuai dengan permintaan. Dalam
melakukan kegiatan budidaya ikan
untuk memperoleh hasil produksi
yang maksimal dilakukan suatu
program pengembangbiakan
terhadap ikan yang akan
dibudidayakan. Ilmu yang mendasari
dalam program pengembangbiakan
ikan adalah tentang biologi ikan,
fisiologi ikan, kebiasaan hidup ikan,
reproduksi ikan dan berbagai ilmu
tentang rekayasa siklus reproduksi
ikan. Ikan yang akan dibudidayakan
harus dikelola dengan baik tentang
persediaan induk ikan yang akan
dibudidayakan. Pengembangbiakan
ikan peliharaan akan berhasil jika
tersedia induk yang baik.
Ketersediaan induk ikan budidaya
harus dikelola dengan baik untuk
memperoleh benih ikan yang tepat
waktu, tepat jumlah, tepat kualitas,
tepat jenis dan tepat harga. Oleh
karena itu dalam buku ini akan
dibahas tentang beberapa hal yang
berperan penting dalam melakukan
program pengembangbiakan ikan
budidaya.
Ikan yang akan dibudidayakan
adalah ikan yang telah mengalami
domestikasi dalam lingkungan
budidaya. Domestikasi adalah
pemindahan suatu organisme dari
habitat lama ke habitat baru dalam
hal ini manusia biasa memperoleh
ikan dengan cara mengambil dari
alam kemudian dipelihara dalam
suatu lingkungan yang terbatas yaitu
kolam pemeliharaan. Suatu jenis
ikan dalam sistem budidaya ikan
dapat dikelompokkan berdasarkan
tingkat domestikasinya menjadi
empat tingkat yaitu :
1. Domestikasi sempurna, yaitu
apabila seluruh siklus hidup ikan
sudah dapat dipelihara di dalam
sistem budidaya. Contoh
beberapa jenis ikan asli
Indonesia yang sudah
terdomestikasi sempurna antara
lain adalah ikan gurame, ikan
baung dan bandeng.
2. Domestikasi dikatakan hampir
sempurna apabila seluruh siklus
hidupnya sudah dapat dipelihara
di dalam sistem budidaya, tetapi
keberhasilannya masih rendah.
Ikan asli Indonesia yang
terdomestikasi hampir sempurna
antara lain adalah ikan betutu,
balashark dan arwana.
3. Domestikasi belum sempurna
apabila baru sebagian siklus
hidupnya yang dapat dipelihara
di dalam sistem budidaya.
Contohnya antara lain adalah
ikan Napoleon, ikan hias laut,
ikan tuna.
4. Belum terdomestikasi apabila
seluruh siklus hidupnya belum
11
dapat dipelihara di dalam sistem
budidaya.
Jenis-jenis ikan yang sudah dapat
dibudidayakan di Indonesia sangat
banyak jumlahnya ada yang berasal
dari perairan Indonesia asli atau
diintroduksi dari negara lain.Jenis
ikan introduksi yang sudah
terdomestikasi secara sempurna di
Indonesia adalah ikan Mas dan ikan
Nila. Dengan banyaknya jenis ikan
yang sudah terdomestikasi secara
sempurna akan memudahkan
manusia untuk melakukan kegiatan
pengembangbiakan.
Pengembangbiakan ikan budidaya
dapat dilakukan dengan cara
tradisional, semi intensif ataupun
intensif. Dengan melakukan
pengembangbiakan ikan maka
ketersediaan benih ikan secara
kualitas dan kuantitas akan memadai.
Penyediaan benih ikan budidaya
saat ini dapat dilakukan oleh
masyarakat dengan cara menangkap
benih ikan dari alam (sungai, danau,
laut dan sebagainya) atau dengan
cara melakukan proses pemijahan
ikan di dalam wadah budidaya.
Pemijahan ikan budidaya di dalam
wadah budidaya dapat dilakukan
dengan tiga metode yaitu pemijahan
ikan secara alami, pemijahan ikan
secara semi buatan dan pemijahan
ikan secara buatan.
Pemijahan ikan secara alami adalah
pemijahan ikan tanpa campur
tangan manusia, terjadi secara
alamiah (tanpa pemberian
rangsangan hormon) di dalam wadah
budidaya. Jenis ikan yang sudah
dapat dilakukan pemijahan secara
alami didalam wadah budidaya
antara lain adalah ikan Mas, ikan
Nila, ikan Bandeng, ikan Kerapu,
ikan Kakap, ikan Gurame, ikan
Baung, ikan Lele. Pemijahan ikan
secara semi intensif adalah
pemijahan ikan yang terjadi dengan
memberikan rangsangan hormon
untuk mempercepat kematangan
gonad, tetapi proses ovulasinya
terjadi secara alamiah di kolam.
Jenis ikan yang sudah dapat
dilakukan pemijahan secara semi
buatan antara lain adalah ikan Bawal,
ikan Lele, ikan Kakap, ikan Kerapu.
Pemijahan ikan secara buatan
adalah pemijahan ikan yang terjadi
dengan memberikan rangsangan
hormon untuk mempercepat
kematangan gonad serta proses
ovulasinya dilakukan secara buatan
dengan teknik stripping/pengurutan.
Jenis ikan yang sudah dapat
dilakukan pemijahan secara buatan
antara lain adalah ikan Patin, ikan
Mas, ikan Lele.
Dalam buku ini akan dibahas tentang
bagaimana cara melakukan kegiatan
produksi budidaya ikan mulai dari
kegiatan pembenihan ikan, kegiatan
pendederan ikan, kegiatan
pembesaran ikan dan kegiatan
pemanenan ikan. Kegiatan
pembenihan ikan merupakan suatu
kegiatan budidaya yang
menghasilkan benih ikan. Benih ikan
dalam budidaya ikan diperoleh dari
induk ikan, oleh karena itu sebelum
melakukan kegiatan pembenihan
ikan harus dipahami terlebih dahulu
tentang teknik seleksi induk ikan,
karena benih ikan yang unggul
diperoleh dari induk yang unggul.
Jika dalam melakukan kegiatan
pembenihan ikan tidak
memperhatikan tentang seleksi induk
yang baik maka akan memperoleh
12
benih ikan yang tidak bermutu. Benih
ikan yang diperoleh dari hasil
pembenihan ikan akan dilakukan
tahapan pemeliharaan yang disebut
dengan kegiatan pendederan.
Pendederan adalah kegiatan
pemeliharaan ikan untuk
menghasilkan benih yang siap
ditebarkan pada kegiatan
pembesaran ikan. Pada beberapa
jenis ikan air tawar ada beberapa
tahapan kegiatan pendederan ikan
untuk mempercepat siklus
perputaran produksi, seperti pada
budidaya ikan mas ada beberapa
tahapan pendederan, misalnya
pendederan pertama menghasilkan
benih ikan berukuran 2 – 3 cm,
pendederan kedua menghasilkan
benih ikan berukuran 5 – 8 cm. Baru
kemudian berlanjut pada kegiatan
produksi selanjutnya yaitu
pembesaran ikan. Kegiatan
pembesaran ikan merupakan
kegiatan budidaya yang memelihara
benih ikan sampai berukuran
konsumsi. Dengan melakukan
seluruh kegiatan budidaya ikan mulai
dari pembenihan sampai
pembesaran ikan maka kegiatan
pengembangbiakan ikan budidaya
telah dilakukan untuk memenuhi
kebutuhan manusia akan sumber
pangan dan non pangan yang relatif
murah.
Nutrisi ikan
Kajian tentang nutrisi ikan sangat
diperlukan untuk memahami
kebutuhan ikan akan zat gizi yang
dibutuhkan ikan agar tumbuh dan
berkembang. Zat gizi yang
dibutuhkan oleh ikan agar dapat
tumbuh dan berkembang meliputi
tentang kandungan protein,
karbohidrat, lemak, vitamin dan
mineral. Zat gizi tersebut pada setiap
jenis ikan mempunyai kebutuhan
yang berbeda-beda. Oleh karena itu
sangat diperlukan pengetahuan
tentang kebutuhan zat gizi tersebut
bagi setiap jenis ikan yang akan
dibudidayakan. Dalam kegiatan
budidaya ikan biasanya para petani
ikan sangat membutuhkan pakan
yang akan diberikan pada ikan yang
dibudidayakan pada wadah budidaya.
Pakan yang diberikan ada dua jenis
yaitu pakan alami dan pakan buatan.
Pakan alami adalah jasad hidup
yang diberikan sebagai pakan pada
organisme air. Sedangkan pakan
buatan adalah pakan yang dibuat
dari berbagai macam bahan baku
hewani dan nabati dengan
memperhatikan kandungan gizi, sifat
dan ukuran ikan yang akan
mengkonsumsi pakan tersebut
dengan cara dibuat oleh manusia
dengan bantuan peralatan pakan.
Pada pakan alami dan pakan buatan
harus diperhatikan tentang
kandungan zat gizinya agar ikan
yang diberi pakan tersebut dapat
tumbuh dan berkembang.
Dengan memahami kebutuhan
nutrisi setiap ikan yang
dibudidayakan maka kebutuhan zat
gizi ikan akan terpenuhi. Seperti
diketahui pakan atau makanan yang
dikonsumsi oleh ikan melupakan
sumber energi utama dalam tubuh
ikan. Makanan yang masuk kedalam
tubuh ikan akan diubah menjadi
energi kimia dan disimpan oleh tubuh
dalam bentuk ATP (Adenosin
triphosphat). Energi yang diperoleh
dari makanan itu yang akan
13
digunakan oleh ikan untuk
kegiatannya. Dalam buku ini akan
dibahas tentang penggunaan energi
yang berasal dari pakan oleh ikan
dan bagaimana penyebarannya
dalam proses metabolisme ikan.
Energi yang diperoleh dari makanan
akan dapat memberikan
pertumbuhan dan perkembangan
ikan budidaya jika makanan yang
diberikan mempunyai kandungan
nutrisi yang cukup untuk setiap jenis
ikan. Oleh karena itu sangat penting
mengetahui kebutuhan energi untuk
setiap jenis ikan. Seperti diketahui
bahwa pakan buatan harus
mengandung energi lebih dari 3000
kilokalori agar dapat memberikan
pertumbuhan yang baik bagi ikan
budidaya.
Setelah memahami tentang energi
yang dibutuhkan oleh setiap jenis
ikan maka pengetahuan tentang
sumber nutrien utama sebagai
sumber energi yaitu protein, lemak
dan karbohidrat serta vitamin dan
mineral harus dipelajari agar
kebutuhan ikan akan nutrisi tercukupi.
Protein adalah suatu molekul
komplek yang besar (makromolekul),
yang terbentuk dari molekul asam
amino (20 macam), dimana asam
amino satu sama lain berhubungan
dengan ikatan peptida. Protein
merupakan nutrisi utama yang
mengandung nitrogen dan
merupakan unsur utama dari
jaringan dan organ tubuh hewan dan
juga senyawa nitrogen lainnya
seperti asam nukleat, enzim, hormon,
vitamin dan lain-lain. Protein
dibutuhkan sebagai sumber energi
utama karena protein ini terus
menerus diperlukan dalam makanan
untuk pertumbuhan dan perbaikan
jaringan yang rusak. Protein sangat
dibutuhkan oleh ikan sebagai sumber
utama energi dan pada ikan
kebutuhan protein ini bervariasi
bergantung pada jenis ikan yang
dibudidayakan. Kebutuhan ikan akan
protein ini berkisar antara 20 – 60%
dan kebutuhan protein ini sudah
sampai pada kebutuhan asam amino
setiap jenis ikan dimana setiap jenis
ikan kebutuhannnya akan asam
amino sangat spesifik. Protein yang
diberikan pada ikan budidaya tidak
boleh berlebih ataupun kekurangan
harus tepat karena kalau berlebih
ataupun kekurangan akan
memberikan pertumbuhan yang
negatif. Kelebihan protein dalam
pakan akan mengakibatkan ikan
memerlukan energi ekstra untuk
melakukan proses deaminasi dan
mengeluarkan amoniak sebagai
senyawa yang bersifat racun
sehingga energi yang digunakan
untuk pertumbuhan akan berkurang.
Kekurangan protein dalam pakan
jelas akan mengakibatkan
pertumbuhan yang negatif karena
protein yang disimpan didalam
jaringan otot akan dirombak menjadi
sumber energi sehingga
pertumbuhan menjadi terhambat.
Pengetahuan nutrisi ikan selanjutnya
adalah karbohidrat, karbohidrat
adalah senyawa organik yang terdiri
dari unsur karbon, hidrogen dan
oksigen dalam perbandingan yang
berbeda-beda. Karbohidrat adalah
sumber energi yang murah dan
dapat menggantikan protein yang
mahal sebagai sumber energi.
Karbohidrat pada manusia dan
hewan darat merupakan sumber
energi utama sedangkan pada ikan
karbohidrat merupakan sumber
14
energi yang disebut dengan Protein
Sparring Effect yaitu karbohidrat
dapat digunakan sebagai sumber
energi pengganti bagi protein ,
karbohidrat sebagai mitra protein jika
tubuh kekurangan protein maka
karbohidrat akan dipecah sebagai
pengganti energi yang berasal dari
protein. Dengan menggunakan
karbohidrat dan lemak sebagai
sumber bahan baku maka hal ini
dapat mengurangi harga pakan.
Pemanfaatan karbohidrat sebagai
sumber energi dalam tubuh dapat
juga dipengaruhi oleh aktivitas enzim
dan hormon. Enzim dan hormon ini
penting untuk proses metabolisme
karbohidrat dalam tubuh seperti
glikolisis, siklus asam trikarboksilat,
jalur pentosa fosfat, glukoneogenesis
dan glikogenesis. Selain itu dalam
aplikasi pembuatan pakan
karbohidrat seperti zat tepung, agaragar,
alga, dan getah dapat juga
digunakan sebagai pengikat
makanan (binder) untuk
meningkatkan kestabilan pakan
dalam air pada pakan ikan dan
udang.
Kemampuan setiap jenis ikan dalam
memanfaatkan karbohidrat berbedabeda,
kebutuhan karbohidrat bagi
ikan budidaya berkisar antara 20 –
40%. Hal ini dikarenakan enzim yang
mencerna karbohidrat yaitu amilase
pada ikan omnivora dan herbivora
aktivitasnya lebih tinggi dibandingkan
dengan ikan karnivora, oleh karena
itu pada pencernaan karbohidrat
pada ikan karnivora lebih rendah
dibandingkan dengan ikan herbivora
dan omnivora. Selain itu kemampuan
sel memanfaatkan glukosa sebagai
bentuk sederhana dari karbohidrat
dan sumber energi yang paling cepat
diserap didalam sel pada ikan
herbivora dan omnivora lebih besar
dibandingkan dengan ikan karnivora.
Pengetahuan tentang kebutuhan
karbohidrat pada komposisi nutrisi
pakan setiap jenis ikan perlu
dipelajari agar dapat menyusun
kebutuhan nutrisi ikan yang tepat
dan murah.
Kebutuhan nutrien ikan selanjutnya
adalah lemak. Lemak sebenarnya
adalah bagian dari lipid. Lipid adalah
senyawa organik yang tidak larut
dalam air tapi dapat diekstraksi
dengan pelarut nonpolar seperti
kloroform, eter dan benzena. Lipid itu
terdiri dari lemak, minyak, malam
dan senyawa-senyawa lain yang ada
hubungannya. Perbedaan lemak dan
minyak adalah pada titik cairnya
dimana lemak cenderung lebih tinggi
titik cairnya karena molekulnya lebih
berat dan rantai molekulnya lebih
panjang. Kebutuhan ikan akan lemak
juga bervariasi antara 4 – 18% dan
setiap jenis ikan mempunyai
kebutuhan yang spesifik.
Nutrien yang digunakan oleh ikan
sebagai katalisator (pemacu)
terjadinya proses metabolisme di
dalam tubuh ikan adalah vitamin.
Vitamin merupakan salah satu
nutrien yang bukan merupakan
sumber tenaga tetapi sangat
dibutuhkan untuk kelangsungan
semua proses di dalam tubuh.
Vitamin merupakan senyawa organik
dan biasa disebut dietary essensial
yaitu harus diberikan dari luar tubuh
karena tubuh tidak dapat mensintesis
sendiri, kecuali beberapa vitamin
misalnya vitamin C pada ayam dan
vitamin B pada ruminansia. Menurut
Steffens (1989) vitamin adalah
15
senyawa organik dengan berat
molekul rendah dengan komposisi
dan fungsi yang beragam dimana
sangat penting untuk kehidupan
tetapi tidak dapat disintesis (atau
hanya disintesis dalam kuantitas
yang tidak cukup/terbatas) oleh
hewan tingkat tinggi dan oleh sebab
itu harus disuplai dari makanan.
Vitamin dibutuhkan oleh ikan dalam
jumlah yang tidak banyak tetapi
kekurangan vitamin dalam komposisi
pakan akan membawa dampak
negatif bagi ikan budidaya. Pada
buku teks ini akan dibahas tentang
berbagai macam vitamin, fungsi dan
peranannya, kebutuhan berbagai
jenis ikan akan vitamin dan dampak
yang diakibatkan jika dalam
komposisi pakan kekurangan
vitamin. Vitamin berdasarkan
klasifikasinya dikelompokkan
menjadi dua yaitu vitamin yang larut
dalam air dan vitamin yang larut
dalam lemak. Vitamin yang larut
dalam air mempunyai sifat bergerak
bebas didalam badan, darah dan
limpa, mudah rusak dalam
pengolahan, mudah hilang karena
tercuci atau terlarut oleh air keluar
dari bahan, tidak stabil dalam
penyimpanan, kecuali vitamin B12
dapat disimpan dalam hati selama
beberapa tahun, berfungsi sebagai
koenzim atau kofaktor dalam reaksi
enzimatik, kecuali vitamin C dan
kelebihan vitamin ini di dalam tubuh
akan dieksresikan ke dalam urin.
Jenis vitamin yang larut dalam air
adalah vitamin B1 (Tiamin), vitamin
B2 (Riboflavin), vitamin B3 (Niasin),
vitamin B5 (Asam pantotenat),
vitamin B6 (Piridoksin), vitamin B12
(Kobalamin), biotin, asam folat,
inositol, kolin dan vitamin C.
Kelompok yang kedua adalah
vitamin yang larut dalam lemak.
Kelompok vitamin yang larut dalam
lemak mempunyai sifat dapat
disimpan dalam hati dan jaringanjaringan
lemak, tidak larut dalam air
maka vitamin ini tidak dapat
dikeluarkan atau dieksresikan
akibatnya vitamin ini dapat ditimbun
dalam tubuh jika dikonsumsi dalam
jumlah banyak. Kelompok vitamin ini
terdiri dari vitamin A, vitamin D,
vitamin E dan vitamin K.
Kebutuhan ikan akan vitamin sangat
ditentukan oleh ukuran atau umur
ikan, kandungan nutrien pakan, laju
pertumbuhan dan lingkungan dimana
ikan itu hidup. Vitamin merupakan
koenzim yang sangat diperlukan
dalam metabolisme tubuh. Bila
kekurangan vitamin maka ikan akan
memberikan gejala-gejala yang
spesifik untuk setiap jenis vitamin.
Penggunaan vitamin dalam pakan
ikan biasanya memakai vitamin yang
sintetik karena ikan tidak dapat
menggunakan bahan makanan yang
segar, kecuali pada beberapa jenis
ikan herbivora yang dapat
memanfaatkan vitamin dari daun.
Pada proses pembuatan pakan ikan,
kehilangan vitamin tidak dapat
dihindarkan karena sifat vitamin
tersebut. Oleh karena itu perlu
diperhitungkan kandungan vitamin
yang tepat pada waktu menyusun
formulasi pakan.
Nutrien selanjutnya yang bukan
merupakan sumber energi tetapi
berperan sebagai kofaktor dalam
setiap proses metabolisme adalah
mineral. Mineral merupakan unsur
anorganik yang dibutuhkan oleh
organisme perairan (ikan) untuk
proses hidupnya secara normal. Ikan
16
sebagai organisme air mempunyai
kemampuan untuk menyerap
beberapa unsur anorganik ini tidak
hanya dari makanannya saja tetapi
juga dari lingkungannya. Jumlah
mineral yang dibutuhkan oleh ikan
dalam jumlah yang sedikit tetapi
mempunyai fungsi yang sangat
penting. Dalam penyusunan pakan
buatan mineral mix biasanya
ditambahkan berkisar antara 2 – 5 %
dari total jumlah bahan dan
bergantung pada jenis ikan yang
akan mengkonsumsinya. Walaupun
sangat sedikit yang dibutuhkan oleh
ikan mineral mempunyai fungsi yang
sangat utama dalam tubuh ikan.
Dalam buku teks ini akan dijelaskan
secara detail tentang kebutuhan
mineral pada ikan yang
dibudidayakan serta dampak yang
diakibatkan jika ikan kekurangan
mineral dalam komposisi pakannya.
Mineral berdasarkan konsentrasinya
di dalam tubuh hewan dikelompokkan
menjadi dua kelompok,
kelompok pertama adalah mineral
makro yaitu mineral yang
konsentrasinya dalam tubuh
organisme dibutuhkan dalam jumlah
besar (lebih dari 100 mg/kg pakan
kering) terdiri dari Calsium (Ca),
Magnesium (Mg), Sodium (Na),
Potassium (K), Phosphorus (P),
Clorine (Cl) dan Sulphur (S).
Kelompok yang kedua adalah
mineral mikro yaitu mineral yang
konsentrasinya dalam tubuh setiap
organisme dibutuhkan dalam jumlah
sedikit (kurang dari 100 mg/kg pakan
kering) terdiri dari Besi (Fe),
Tembaga (Cu), Mangan (Mn), Seng
(Zn), Cobalt (Co), Molybdenum (Mo),
Cromium (Cr), Selenium (Se),
Fluorinr (F), Yodium (I), Nickel (Ni)
dan lain-lain.
Teknologi pakan buatan
Dalam buku teks ini akan diuraikan
secara jelas tentang berbagai kajian
yang mendukung dalam membuat
suatu rekayasa dalam membuat
pakan ikan. Beberapa subtopik akan
dibahas antara lain adalah jenis-jenis
bahan baku, bagaimana cara
menyusun formulasi pakan ikan dari
yang sangat sederhana sampai
teknologi komputer, bagaimana
prosedur pembuatan pakan dari
skala rumah tangga sampai pabrikasi,
dan bagaimana melakukan
pengelolaan terhadap pakan yang
sangat membutuhkan keahlian
tersendiri agar dalam melakukan
suatu usaha budidaya ikan
menguntungkan. Dimana kita tahu
bahwa pakan buatan merupakan
biaya operasional tertinggi kurang
lebih 60% dari total biaya produksi,
jika kita dapat mengelola dengan
baik penggunaan pakan buatan
dalam suatu uasaha budidaya ikan
maka biaya pakan akan dapat
dikurangi dan pertumbuhan ikan
terjadi secara optimal sehingga
keuntungan produksi meningkat.
Selain itu dalam proses pemberian
pakan pada ikan sebagai organisme
air yang hidup dalam media air maka
harus diketahui juga tentang kaitan
antara pakan ikan dan kualitas air,
sehingga pakan yang diberikan
selama proses budidaya ikan
berlangsung tidak memberikan
dampak negatif terhadap media
budidaya.
17
Jenis-jenis bahan baku yang dapat
digunakan untuk membuat pakan
ikan dapat dikelompokkan kedalam
bahan baku hewani yaitu jenis-jenis
bahan baku yang berasal dari hewan,
bahan baku nabati yaitu jenis-jenis
bahan baku yang berasal dari
tumbuh-tumbuhan dan bahan baku
limbah industri yaitu bahan baku
yang berasal dari hasil pengolahan
industri pertanian, perikanan yang
sudah tidak digunakan tetapi masih
dapat diolah untuk sumber bahan
baku pakan.
Penyusunan formulasi pakan
merupakan suatu kompetensi yang
harus dimiliki oleh para pembudidaya
ikan yang akan membuat pakan ikan
sendiri karena pakan ikan yang
dibuat sendiri mempunyai
keuntungan yang lebih baik
dibandingkan dengan membeli
dipasar. Pakan ikan yang dibuat
sendiri mempunyai formulasi sesuai
dengan kebutuhan ikan yang akan
mengkonsumsi pakan tersebut.
Karena setiap jenis ikan mempunyai
kebutuhan kandungan nutrien/zat
gizi yang spesifik. Oleh karena itu
dalam menyusun formulasi pakan
harus dibuat perencanaan yang tepat
tentang peruntukkannya jenis dan
umur ikan yang akan
mengkonsumsinya. Dalam
menyusun formulasi pakan ada
beberapa metode yang dapat
digunakan antara lain adalah metode
segiempat/square methods
merupakan metode penyusunan
formulasi pakan yang paling lama
sebagai dasar utama dalam
menyusun formulasi pakan,
selanjutnya adalah metode cobacoba/
trial and error yaitu metode
penyusunan formulasi pakan yang
dilakukan dengan cara mencoba
berbagai bahan dengan komposisi
disesuaikan dengan kandungan gizi
setiap bahan baku dan merupakan
kelanjutan dari metode segiempat.
Metode selanjutnya adalah metode
aljabar merupakan suatu metode
penyusunan formulasi pakan ikan
dengan menggunakan persamaan
matematika yaitu persamaan aljabar
dan keempat juga menggunakan
persamaan matematika yaitu
persamaan linier. Penyusunan
formulasi pakan dengan
menggunakan persamaan
matematika dapat menggunakan alat
bantu komputer apabila anda bisa
membuat program matematika
tersebut dalam komputer. Selain itu
ada juga yang menyusun formulasi
pakan ikan dengan metode
worksheet yang prinsipnya hampir
sama dengan persamaan
sebelumnya, perbedaannya hanya
menggunakan lembar kerja setiap
langkah untuk memudahkan dalam
penyusunan formulasi.
Pakan ikan dibuat oleh para
produsen untuk memenuhi
kebutuhan produksi budidaya ikan.
Jika para pembudidaya ikan dapat
membuat pakan ikan sendiri akan
sangat menguntungkan apabila
dipahami prosedur pembuatan pakan
ikan yang benar. Pakan ikan dapat
dibuat secara skala rumahtangga
maupun secara pabrikasi. Prinsip
dalam pembuatan pakan ikan yang
harus dipahami adalah bagaimana
prosedur yang benar dalam
membuat pakan ikan. Pakan ikan
berbeda dengan pakan ternak,
pakan ikan dibuat untuk dikonsumsi
oleh ikan yang hidup diair,
mempunyai ukuran lambung yang
18
pendek, dan tidak langsung dapat
dikonsumsi ikan tetapi berhubungan
dengan media air dimana ikan hidup.
Oleh karena itu dalam prosedur
pembuatan pakan harus diperhatikan
dengan benar tentang komposisi
bahan baku yang akan digunakan
dalam membuat pakan ikan, bentuk
bahan baku yang akan digunakan
harus dalam bentuk tepung. Oleh
karena itu tahapan pertama dalam
prosedur pembuatan pakan adalah
membuat tepung semua bahan baku
yang disebut dengan milling.
Peralatan yang dapat digunakan
untuk melakukan penepungan bahan
baku ada berbagai macam
bergantung pada kapasitas bahan
baku yang akan ditepung mulai dari
disc mill, hammer mill dan lain-lain.
Prosedur selanjutnya setelah bahan
baku ditepung adalah melakukan
penimbangan bahan baku jika
proses pembuatan pakan dilakukan
secara skala rumah tangga, tetapi
jika pembuatan pakan dilakukan
secara pabrikasi maka langkah
selanjutnya adalah pencampuran
atau mixing. Setelah dilakukan
pencampuran langkah selanjutnya
adalah pembuatan adonan sampai
benar-benar tercampur secara
sempurna, kemudian pencetakan
pakan buatan atau pelleting. Pakan
yang telah terbentuk sesuai dengan
keinginan pembuat jika dilakukan
secara skala rumah tangga maka
pakan tersebut harus dilakukan
pengeringan atau drying, tetapi jika
dilakukan secara pabrikasi dimana
peralatan pembuatan pakannya telah
dilengkapi dengan peralatan steam
untuk mengeringkan pakan sehingga
tidak dibutuhkan proses pengeringan
pakan. Langkah terakhir dalam
proses pembuatan pakan adalah
pengemasan dan pengangkutan
pakan kepada para konsumen.
Pakan dibutuhkan dalam suatu
usaha budidaya ikan dapat berasal
dari pakan alami dan pakan buatan.
Pada usaha budidaya ikan yang
intensif pakan yang digunakan dalam
usaha tersebut adalah pakan buatan.
Oleh karena itu harus dibuat suatu
manejemen pakan yang baik agar
pakan yang digunakan benar efisien
dan efektif. Penggunaan pakan yang
benar dalam proses budidaya akan
sangat menguntungkan para
pembudidaya.
Selain itu ikan sebagai organisme air
maka habitatnya selalu berada
didalam air. Oleh karena itu
bagaimana para pembudidaya ikan
harus memahami keterkaitan antara
pakan ikan dan kualitas air yang
sesuai dengan kebutuhan ikan. Saat
ini telah ditemukan tentang
formulasi pakan ikan yang ramah
lingkungan yang memperhatikan
kandungan gizi pakan dengan
dampaknya terhadap kualitas air
sebagai media budidaya ikan.
Teknologi pakan alami
Pada bab sebelumnya telah dibahas
tentang pakan buatan, pada bab ini
akan dibahas tentang jenis-jenis
pakan alami yang dapat digunakan
dalam budidaya ikan, bagaimana
melakukan budidaya berbagai jenis
pakan alami yang dapat dikonsumsi
oleh ikan terdiri dari phytoplankton,
zooplankton dan bentos. Plankton
adalah organisme renik yang hidup
melayang-layang mengikuti
pergerakan air. Plankton didalam
19
perairan dapat dikelompokkan
menjadi dua yaitu phytoplankton dan
zooplankton. Phytoplankton adalah
organisme renik yang hidup
melayang-layang mengikuti
pergerakan air yang berasal dari
jasad nabati sedangkan zooplankton
adalah organisme renik yang hidup
melayang-layang mengikuti
pergerakan air yang berasal dari
jasad hewani. Sedangkan bentos
adalah organisme air yang hidup
didasar perairan .
Jenis-jenis phytoplankton dan
zooplankton yang dapat
dibudidayakan dapat dikelompokkan
berdasarkan habitatnya adalah
plankton air tawar dan plankton air
laut. Plankton air tawar digunakan
untuk ikan-ikan air tawar dan
plankton air laut digunakan untuk
ikan-ikan air laut. Begitu juga dengan
benthos disesuaikan dengan
habitatnya tetapi benthos yang
sudah dapat dibudidayakan pada
umumnya adalah yang berasal dari
air tawar.
Untuk meningkatkan mutu dari pakan
alami saat ini sudah dapat dilakukan
tenkologi bioenkapsulasi yaitu proses
peningkatan mutu dari zooplankton
yang telah dibudidayakan untuk
meningkatkan kelangsungan hidup
larva yang mengkonsumsi pakan
alami tersebut. Ada berbagai macam
bahan yang dapat digunakan untuk
meningkatkan mutu dari zooplankton
tersebut. Dalam buku teks ini akan
dibahas berbagai cara dan bahan
yang dapat digunakan untuk
meningkatkan mutu dari pakan alami.
Hama dan penyakit ikan
Pada setiap kegiatan budidaya ikan
pasti akan terdapat kendala yang
dapat menyebabkan berkurangnya
produktivitas dalam suatu usaha.
Penyebab utama terjadinya
kegagalan produksi ikan budidaya
biasanya disebabkan oleh karena
adanya hama dan penyakit yang
menyerang dalam wadah budidaya
ikan. Karena ikan yang sakit tidak
akan mengalami pertumbuhan berat
badan yang optimal dan hal ini
sangat merugikan bagi para
pembudidaya. Agar tidak terjadi
serangan hama dan penyakit ikan
dalam wadah budidaya maka
sebelum dilakukan kegiatan
budidaya harus dilakukan treatment
pada wadah yang akan digunakan
seperti membersihkan wadah
budidaya, penggunaan air yang baik
secara kualitas dan kuantitas,
peralatan yang akan digunakan
untuk kegiatan budidaya telah
disucihamakan, jangan memelihara
ikan yang sakit dengan ikan yang
sehat secara bersamaan, membuang
segera ikan yang sakit. Jika ikan
telah terserang hama dan penyakit
ikan maka langkah yang harus
dilakukan adalah melakukan
pengobatan terhadap ikan yang sakit.
Dalam buku teks ini akan dibahas
tentang jenis-jenis hama dan
penyakit yang biasa menyerang ikan
budidaya, beberapa kegiatan
pengendalian terhadap serangan
hama dan penyakit ikan serta cara
melakukan pengobatan jika ikan
yang dibudidayakan telah terserang
hama dan penyakit ikan. Hama
adalah makhluk hidup yang
20
menyerang atau memangsa ikan
yang dipelihara sehingga ikan
tersebut mati. Jenis hama ada
beberapa macam ada hama yang
menyerang larva ikan, benih ikan
atau ikan ukuran besar. Penyakit
ikan adalah suatu akibat dari
interaksi tiga komponen yaitu
lingkungan, ikan itu sendiri dan agen
penyakit yang menyebabkan ikan
yang dibudidayakan menjadi sakit
dan dapat menyebabkan kematian.
Penyakit ikan ini dapat disebabkan
oleh berbagai hal diantaranya adalah
penyakit ikan yang disebabkan oleh
virus, bakteri, jamur, parasit dan
makanan. Pada bagian selanjutnya
akan dibahas secara detail jenisjenis
penyakit dan cara
penanggulangannya serta
pengobatannya.
Pemasaran
Pada bab ini akan dibahas tentang
pengertian pemasaran, ciri-ciri
pemasaran hasil perikanan,
perencanaan dan target penjualan,
estimasi harga jual, sistem penjualan
dan strategi promosi. Dengan
mempelajari materi pemasaran ini
diharapkan pembaca dapat
memahami tentang pemasaran hasil
produksi budidaya ikan dengan
berbagai karakteristik produk
perikanan yang laku jual
dimasyarakat.
Analisa Usaha Budidaya Ikan
Dalam suatu kegiatan budidaya
tujuan dilakukannya produksi adalah
untuk memenuhi kebutuhan
masyarakat akan produk hasil
budidaya ikan. Budidaya ikan
sebagai salah satu usaha yang
menghasilkan ikan untuk dijual yang
berarti akan mendapatkan suatu
nilah tambah bagi para
pembudidayanya. Dalam bab ini
akan dibahas tentang persyaratan
yang harus dipenuhi agar suatu
usaha budidaya ikan
menguntungkan dikaji dari aspek
ekonomi. Oleh karena itu akan
dibahas tentang pengertian studi
kelayakan, Net Present Value (NPV),
Net Benefit Cost Ratio (NBC Ratio),
Internal Rate of return, Analisis break
Event Point (BEP), dan aplikasi
analisa usaha. Dalam melakukan
usaha budidaya ikan diharapkan
produk yang dihasilkan akan terjual
semua dan mempunyai harga yang
sesuai dengan keinginan penjual
sehingga akan diperoleh keuntungan.
Jika dalam melakukan suatu usaha
tidak mendapatkan keuntungan
sebagai upah dari mengelola usaha
budidaya ikan maka para
pembudidaya ikan tidak akan tertarik
untuk membudidayakan komoditas
perikanan. Seperti kita ketahui
budidaya ikan pada kondisi lahan
yang semakin lama semakin terbatas
karena bertambahnya populasi
manusia di bumi harus selalau
dibudidayakan dan memberikan nilai
tambah bagi para pembudidaya.
Kesehatan dan keselamatan kerja
Pelaksanaan kesehatan dan
keselamatan kerja pada suatu usaha
budidaya ikan harus dapat
diaplikasikan. Dengan melaksanakan
Kesehatan dan keselamatan kerja
merupakan suatu upaya untuk
menciptakan tempat kerja yang
21
aman, sehat, bebas dari pencemaran
lingkungaan, sehingga dapat
mengurangi dan atau bebas dari
kecelakaan kerja yang pada akhirnya
dapat meningkatkan efisiensi dan
produktivitas kerja.
Peraturan tentang kesehatan dan
keselamatan kerja pada dunia usaha
dan dunia industri telah diatur oleh
negara yang tertuang dalam
Undang-Undang Nomor 1 Tahun
1970 tentang keselamatan kerja.
Usaha budidaya ikan merupakan
suatu kegiatan yang dapat dilakukan
ditempat tertutup atau terbuka
seperti kolam, tambak, jaring
terapung. Oleh karena itu harus
diperhatikan tentang kesehatan dan
keselamatan kerja selama
melakukan kegiatan budidaya
diberbagai tempat kerja. Tempat
kerja merupakan suatu ruangan atau
lapangan, tertutup atau terbuka,
bergerak atau tetap dimana tenaga
kerja bekerja atausering dimasuki
tempat kerja untuk keperluan usaha
dimana terdapat sumber atau
sumber-sumber bahaya. Dengan
melakukan budidaya ikan secara
intensif untuk memperoleh target
produksi yang telah ditetapkan maka
kesehatan dan keselamatan kerja
harus selalu diperhatikan agar tidak
terjadi kecelakaan kerja yang
diakibatkan oleh kecerobohan atau
kelalaian manusia.
22
23
BAB II WADAH BUDIDAYA IKAN
2.1. Jenis-Jenis Wadah
Budidaya Ikan
Dalam budidaya ikan air tawar dan
laut, ada beberapa jenis wadah yang
dapat digunakan antara lain adalah
kolam, bak, akuarium, jaring
terapung/ karamba jaring apung.
Kolam dapat digunakan sebagai
wadah untuk budidaya ikan air tawar
sedangkan bak, akuarium, jaring
terapung dapat digunakan untuk
melakukan budidaya ikan air tawar
dan laut. Kolam dan bak
berdasarkan defenisinya dibedakan
karena kolam dalam bahasa
Inggrisnya pond adalah suatu wadah
yang dapat menampung air dalam
luasan yang terbatas, sengaja dibuat
oleh manusia dengan cara
melakukan penggalian tanah pada
lahan tertentu dengan kedalaman
rata-rata berkisar antara 1,5 – 2,0 m
dan sumber air bermacam-macam.
Sedangkan bak atau tanki adalah
suatu wadah budidaya ikan yang
sengaja dibuat oleh manusia yang
berada diatas permukaan tanah yang
dapat menampung air dengan bahan
baku yang digunakan untuk
membuat bak tersebut disesuaikan
dengan kebutuhan manusia.
Jenis-jenis kolam dapat dibedakan
berdasarkan sistem budidaya yang
akan diterapkan dan sumber air yang
digunakan. Sedangkan jenis-jenis
bak atau tanki ini biasanya
dikelompokkan berdasarkan bahan
baku pembuatannya yaitu yang
terbuat dari beton disebut bak beton,
yang terbuat dari kayu dilapisi
dengan plastik disebut bak plastik,
yang terbuat dari serat fiber disebut
bak fiber. Akuarium merupakan salah
satu wadah yang digunakan untuk
budidaya ikan yang terbuat dari kaca
dan mempunyai ukuran tertentu.
Jaring terapung merupakan suatu
wadah budidaya ikan air tawar dan
laut yang sengaja dibuat oleh
manusia untuk membatasi air yang
berada dalam suatu perairan umum
(danau, laut, waduk, sungai) agar
dapat digunakan untuk
membudidayakan ikan.
24
2.1.1. Kolam
Jenis-jenis kolam yang akan
digunakan sangat tergantung kepada
sistem budidaya yang akan
diterapkan. Ada tiga sistem budidaya
ikan air yang biasa dilakukan yaitu :
1. Tradisional/ekstensif, kolam yang
digunakan adalah kolam tanah
yaitu kolam yang keseluruhan
bagian kolamnya terbuat dari
tanah (Gambar 2.1).
2. Semi intensif, kolam yang
digunakan adalah kolam yang
bagian kolamnya(dinding
pematang) terbuat dari tembok
sedangkan dasar kolamnya
terbuat dari tanah (Gambar 2.2).
3. Intensif, kolam yang digunakan
adalah kolam yang keseluruhan
bagian kolam terdiri dari tembok
(Gambar 2.3).
Jenis-jenis kolam berdasarkan
sumber air yang digunakan adalah
kolam air mengalir/running water
dengan sumber air berasal dari
sungai atau saluran irigasi dimana
pada kolam tersebut selalu terjadi
aliran air yang debitnya cukup besar
(50 l/detik) dan kolam air tenang/
stagnant water dengan sumber air
yang digunakan untuk kegiatan
budidaya adalah sungai, saluran
irigasi, mata air, hujan dan lain-lain
tetapi aliran air yang masuk ke dalam
kolam sangat sedikit debit airnya (0,5
– 5 l/detik) dan hanya berfungsi
menggantikan air yang meresap dan
menguap.
Gambar 2.1. Kolam tanah
Gambar 2.2. Kolam semiintensif
Gambar 2.3. Kolam Intensif
Jenis-jenis kolam yang dibutuhkan
untuk membudidayakan ikan
berdasarkan proses budidaya dan
fungsinya dapat dikelompokkan
menjadi beberapa kolam antara lain
adalah kolam pemijahan, kolam
25
penetasan, kolam pemeliharaan/
pembesaran, kolam pemberokan
induk.
Kolam pemijahan adalah kolam yang
sengaja dibuat sebagai tempat
perkawinan induk-induk ikan
budidaya. Ukuran kolam pemijahan
ikan bergantung kepada ukuran
besar usaha, yaitu jumlah induk ikan
yang akan dipijahkan dalam setiap
kali pemijahan. Bentuk kolam
pemijahan biasanya empat persegi
panjang dan lebar kolam pemijahan
misalnya untuk kolam pemijahan
ikan mas sebaiknya tidak terlalu
berbeda dengan panjang kakaban.
Sebagai patokan untuk 1 kg induk
ikan mas membutuhkan ukuran
kolam pemijahan 3 x 1,5 m dengan
kedalaman air 0,75 – 1,00 m.
Kolam pemijahan sebaiknya dibuat
dengan sistem pengairan yang baik
yaitu mudah dikeringkan dan pada
lokasi yang mempunyai air yang
mengalir serta bersih. Selain itu
kolam pemijahan harus tidak bocor
dan bersih dari kotoran atau rumputrumput
liar (Gambar 2.4).
Gambar 2.4. Kolam Pemijahan
Kolam penetasan adalah kolam yang
khusus dibuat untuk menetaskan
telur ikan , sebaiknya dasar kolam
penetasan terbuat dari semen atau
tanah yang keras agar tidak ada
lumpur yang dapat mengotori telur
ikan sehingga telur menjadi buruk
atau rusak. Ukuran kolam
penetasan disesuaikan juga dengan
skala usaha. Biasanya untuk
memudahkan perawatan dan
pemeliharaan larva, ukurannya
adalah 3 x 2 m atau 4 x 3 m (Gambar
2.5).
Gambar 2.5. Kolam Penetasan
Kolam pemeliharaan benih adalah
kolam yang digunakan untuk
memelihara benih ikan sampai
ukuran siap jual (dapat berupa benih
atau ukuran konsumsi). Kolam
pemeliharaan biasanya dapat
dibedakan menjadi kolam
pendederan dan kolam pembesaran
ikan. Pada kolam semi intensif atau
tradisional sebaiknya tanah dasar
kolam adalah tanah yang subur jika
dipupuk dapat tumbuh pakan alami
yang sangat dibutuhkan oleh benih
ikan (Gambar 2.6).
26
Gambar 2.6. Kolam Pemeliharaan
Kolam pemberokan adalah kolam
yang digunakan untuk menyimpan
induk-induk ikan yang akan
dipijahkan atau ikan yang akan
dijual/angkut ke tempat jauh
(Gambar 2.7)
Gambar 2.7. Kolam Pemberokan
2.1.2. Bak
Wadah budidaya ikan selanjutnya
adalah bak atau tanki yang dapat
digunakan untuk melakukan
budidaya ikan. Berdasarkan proses
budidaya ikan, jenis bak yang akan
digunakan disesuaikan dengan skala
produksi budidaya dan hampir sama
dengan kolam dimana dapat
dikelompokkan menjadi bak
pemijahan, bak penetasan, bak
pemeliharaan dan bak pemberokan.
Bak yang digunakan untuk
melakukan pemijahan ikan biasanya
adalah bak yang terbuat dari beton
(Gambar 2.8) atau fiber (Gambar
2.9) sedangkan bak plastik (Gambar
2.10) biasanya digunakan untuk
melakukan pemeliharaan larva ikan.
Gambar 2.8. Bak Beton
Gambar 2.9. Bak fiber
Gambar 2.10. Bak Plastik
2.1.3. Akuarium
27
Akuarium merupakan salah satu
wadah pemeliharaan ikan yang relatif
sangat mudah dalam perawatannya.
Akuarium dapat digunakan untuk
budidaya ikan tawar dan air laut
biasanya pada proses kegiatan
pembenihan ikan atau untuk
pemeliharaan ikan hias. Akuarium ini
terbuat dari bahan kaca dimana
penamaan akuarium ini berasal dari
bahasa latin yaitu aqua yang berarti
air dan area yang berarti ruang. Jadi
akuarium ini adalah ruangan yang
terbatas untuk tempat air yang
berpenghuni, yang dapat diawasi
dan dinikmati.
Akuarium yang digunakan untuk
budidaya ikan ini dapat dibuat sendiri
atau membeli langsung dari toko.
Fungsi akuarium sebagai wadah
untuk budidaya ikan juga dapat
berfungsi sebagai penghias ruangan
dimana akuarium tersebut dapat
dinikmati keindahannya oleh
penggemarnya. Berdasarkan
fungsinya, akuarium dapat
dibedakan antara lain adalah :
2.1.3.1. Akuarium Umum
Akuarium ini diisi dengan berbagai
jenis ikan dan tanaman air yang
bertujuan untuk penghias ruangan.
Syarat akuarium umum :
a. Akuarium akan diletakkan sesuai
dan serasi dengan ruangan.
b. Alat perlengkapan akuarium
meliputi aerator, kabel listrik, pipa
pvc, dan lain-lain yang diletakkan
tersembunyi supaya nampak
alami.
c. Usahakan dasar akuarium
tampak alami
d. Tanaman disusun dengan
estetika
e. Jenis ikan yang dipelihara harus
harmonis
Jenis akuarium ini biasanya
digunakan sebagai hiasan bagi
berbagai jenis ikan yang dapat
dinikmati keindahan warna tubuh
ikan baik ikan air tawar maupun ikan
air laut dari jenis ikan hias maupun
ikan konsumsi.
2.1.3.2. Akuarium Kelompok
Ikan-ikan yang dipelihara di dalam
akuarium kelompok harus ikan
sejenis/sekeluarga serta ditanami
oleh tanaman air yang tanaman air
yang diperlukan oleh kelompok ikan
yang dipelihara.
Syarat akuarium kelompok :
a. Jenis ikan yang dipelihara harus
masih sekarabat
b. Susunan tanaman air
disesuaikan dengan ikan yang
dipelihara.
Jenis akuarium ini biasanya
digunakan untuk memelihara ikan
dalam satu kelompok baik ikan hias
maupun ikan konsumsi dari ikan air
tawar dan laut (Gambar 2.11).
28
Gambar 2.11. Akuarium Kelompok
2.1.3.3. Akuarium Sejenis
Dalam akuarium ini, estetika dan
dekorasi dikesampingkan, karena
tujuan dari akuarium sejenis untuk
mengembang-biakan ikan. Jenis
akuarium ini yang biasa digunakan
untuk membudidayakan ikan air
tawar dan laut (Gambar 2.12).
Gambar 2.12. Akuarium sejenis
2.1.3.4. Akuarium Tanaman
Dalam akuarium ini yang memegang
peranan adalah tanaman air. Ikan
dimasukan kedalam akuarium untuk
penghias dan pemelihara tanaman.
Gambar 2.12. Akuarium Tanaman
2.1.4. Keramba Jaring Apung
(KJA)
Wadah budidaya ikan selanjutnya
yang dapat digunakan oleh
masyarakat yang tidak memiliki
lahan darat dalam bentuk kolam,
masyarakat dapat melakukan
budidaya ikan di perairan umum.
Budidaya ikan dengan menggunakan
karamba merupakan alternatif wadah
budidaya ikan yang sangat potensial
untuk dikembangkan karena seperti
diketahui wilayah Indonesia ini terdiri
dari 70% perairan baik air tawar
maupun air laut. Dengan
menggunakan wadah budidaya
karamba dapat diterapkan beberapa
sistem budidaya ikan yaitu secara
ekstensif, semi intensif maupun
intensif disesuaikan dengan
kemampuan para pembudidaya ikan.
Jenis-jenis wadah yang dapat
digunakan dalam membudidayakan
ikan dengan karamba ada beberapa
antara lain adalah karamba jaring
terapung, karamba bambu tradisional
dengan berbagai bentuk bergantung
pada kebiasaan masyarakat sekitar.
Teknologi yang digunakan dalam
membudidayakan ikan dengan
karamba ini relatif tidak mahal dan
sederhana, tidak memerlukan lahan
daratan menjadi badan air yang baru
serta dapat meningkatkan produksi
perikanan budidaya. Jenis karamba
jaring apung yang digunakan untuk
membudidayakan ikan dapat dilihat
pada Gambar 2.14 dan 2.15.
29
Gambar 2.14. Kolam jaring terapung
tampak atas
Gambar 2.15. Kolam jaring terapung
tampak depan
2.2. Konstruksi Wadah
Budidaya
Dari beberapa jenis wadah budidaya
ikan yang telah dijelaskan
sebelumnya dapat digunakan untuk
menentukan jenis wadah yang akan
digunakan untuk membudidayakan
ikan. Langkah selanjutnya adalah
memahami konstruksi wadah
budidaya agar wadah budidaya yang
akan dibuat sesuai dengan kaidah
budidaya.
2.2.1. Konstruksi kolam
Konstruksi kolam yang akan
digunakan untuk budidaya ikan
sangat dipengaruhi oleh pemilihan
lokasi yang tepat. Untuk membuat
kolam maka tanah yang akan
dijadikan kolam harus mampu
menyimpan air atau kedap air
sehingga kolam yang akan di buat
tidak bocor. Bentuk kolam yang akan
digunakan untuk membudidayakan
ikan ada beberapa macam antara
lain adalah kolam berbentuk segi
empat/empat persegipanjang,
berbentuk bujur sangkar, berbentuk
lingkaran atau berbentuk segitiga.
Dari berbagai bentuk kolam ini yang
harus diperhatikan adalah tentang
persyaratan teknis konstruksi kolam.
Persyaratan teknis konstruksi suatu
kolam yang akan digunakan untuk
membudidayakan ikan sebaiknya
mempunyai :
2.2.1.1. Pematang kolam.
Pematang kolam dibuat untuk
menahan massa air didalam kolam
agar tidak keluar dari dalam kolam.
Oleh karena itu jenis tanah yang
akan digunakan untuk membuat
pematang kolam harus kompak dan
kedap air serta tidak mudah bocor.
Jenis tanah yang baik untuk
pematang kolam adalah tanah liat
atau liat berpasir. Kedua jenis tanah
ini dapat diidentifikasi dengan
memperhatikan tanah yang ciricirinya
antara lain memiliki sifat
lengket, tidak poros, tidak mudah
pecah dan mampu menahan air.
Ukuran pematang disesuaikan
dengan ukuran kolam. Tinggi
pematang ditentukan oleh
kedalaman air kolam, sebaiknya
dasar pematang kolam ini ditanam
30
sedalam 20 cm dari permukaan
dasar kolam.
Bentuk pematang yang biasa dibuat
dalam kolam budidaya ikan ada dua
bentuk yaitu berbentuk trapesium
sama kaki dan bentuk trapesium
tidak sama kaki. Bentuk pematang
trapesium sama kaki artinya
perbandingan antara kemiringan
pematang 1 : 1 (Gambar 2.16),
Gambar 2.16. Bentuk pematang trapesium sama kaki
sedangkan bentuk pematang
trapesium tidak sama kaki artinya
perbandingan antara kemiringan
pematang 1 : 1,5 (Gambar 2.17).
Gambar 2.17. Bentuk pematang
trapesium tidak sama
kaki
Sebagai acuan dalam membuat
pematang kolam untuk kolam yang
berukuran 200 m2 lebar pematang
dibagian atas adalah 1 m maka lebar
pematang pada bagian bawahnya
adalah 3 m untuk pematang bentuk
trapesium sama kaki pada
kedalaman kolam 1m, jika kolam
tersebut dibuat dengan pematang
trapesium tidak sama kaki maka
lebar pematang pada bagian atas
adalah 1 m maka lebar pematang
pada bagian bawahnya adalah 4 m
pada kedalaman kolam 1 m.
2.2.1.2. Dasar kolam dan saluran
Dasar kolam untuk budidaya ikan ini
dibuat miring ke arah pembuangan
air, kemiringan dasar kolam berkisar
antara 1-2% yang artinya dalam
setiap seratus meter panjang dasar
31
kolam ada perbedaan tinggi
sepanjang 1-2 meter (Gambar 2.18).
Gambar 2.18. Kemiringan dasar
kolam
Cara pengukuran yang mudah untuk
mengetahui kemiringan dasar kolam
adalah dengan menggunakan selang
air yang kecil. Pada masing-masing
ujung pintu pemasukan dan pintu
pengeluaran air ditempatkan
sebatang kayu atau bambu yang
sudah diberi ukuran, yang paling
bagus meteran, kemudian selang
kecil yang telah berisi air
direntangkan dan ditempatkan pada
bambu, kayu atau meteran.
Perbedaan tinggi air pada ujungujung
selang itu menunjukkan
perbedaan tinggi tanah/ kemiringan
dasar kolam.
Saluran didalam kolam budidaya ada
dua macam yaitu saluran keliling
atau caren dan saluran tengah atau
kemalir. Saluran didalam kolam ini
dibuat miring ke arah pintu
pengeluaran air. Hal ini untuk
memudahkan di dalam pengeringan
kolam dan pemanenan ikan (Gambar
2.19).
Gambar 2.19. Saluran tengah atau
kemalir
2.2.1.3. Pintu air
Kolam yang baik harus memiliki pintu
pemasukan air dan pintu
pengeluaran air secara terpisah.
Letak pintu pemasukkan dan
pengeluaran air sebaiknya berada di
tengah-tengah sisi kolam terpendek
agar air dalam kolam dapat berganti
seluruhnya (Gambar 2.20).
Gambar 2.20. Pintu pemasukkan
air dan pengeluaran
air ditengah
Ada juga letak pintu pengeluaran dan
pemasukan air berada disudut
secara diagonal (Gambar 2.21).
Letak pintu air tersebut ada
kelemahannya yaitu air dikedua
sudut yang lain tidak berganti dan
memperpanjang saluran
pengeringan sehingga penangkapan
ikan relatif berlangsung agak lama.
32
Gambar 2.21. Pintu pengeluaran
dan pemasukan
air berada disudut
Pada kolam tanah pintu
pemasukan dan pengeluaran air
dibuat dari bambu atau pipa
paralon. Bentuk pintu pemasukan
diletakkan sejajar dengan
permukaan tanggul sedangkan
pintu pengeluaran dapat dibuat
dua model yaitu pertama sama
dengan pintu pemasukkan
dengan ketinggian sesuai
dengan tinggi air kolam dan
kedua dibuat dengan model huruf
L (Gambar 2.22).
Gambar 2.22. Pintu pemasukan
dan pengeluaran
air bentuk L
Pada kolam beton pintu pemasukan
dan pengeluaran air menggunakan
sistem monik. Pada pintu air sistem
monik ini ada celah penyekatnya dan
dapat dibuat lebih dari satu. Celah
penyekat ini berfungsi untuk
menempatkan papan-papan kayu
yang disusun bertumpuk. Papanpapan
kayu ini dapat dibuka dan
diatur yang pengaturannya
disesuaikan dengan kebutuhan.
Pada pintu air ini papan penyekatnya
dapat diganti dengan saringan
(Gambar 2.23).
Gambar 2.23. Pintu pemasukan
dan pengeluaran
air menggunakan
sistem monik
Persyaratan konstruksi teknik dalam
membuat bak yang akan digunakan
untuk budidaya ikan secara prinsip
hampir sama dengan kolam dimana
harus mempunyai pintu pemasukan
dan pengeluaran air tetapi dasar bak
pada umumnya adalah rata.
Konstruksi pintu dan pemasukan air
pada bak dapat dibuat dengan model
pembuatan instalasi air untuk
pemasukan air dan pengeluaran
airnya menggunakan pipa paralon
(PVC) dengan bentuk huruf L
(Gambar 2.24).
33
Gambar 2.24 Pemasukan dan
pengeluaran air pipa
paralon (PVC)
2.2.2. Konstruksi Akuarium
Konstruksi wadah akuarium sangat
bergantung pada desain yang akan
dikerjakan berdasarkan bentuk
akuarium yang diinginkan. Bentuk
akuarium yang biasa digunakan
sebagai wadah budidaya ikan antara
lain adalah akuarium segiempat,
akuarium trapesium, akuarium
segidelapan, akuarium segienam,
akuarium botol dan akuarium ellips.
Setelah merencanakan bentuk
akuarium kaca yang akan dibuat,
langkah selanjutnya menentukan
ukuran kaca yang akan
dipergunakan untuk membuat
akuarium. Ukuran kaca yang akan
digunakan biasanya berkisar antara
3 mm – 16 mm. Sebagai acuan
dalam membuat akuarium, ukuran
kaca yang akan digunakan dapat
dilihat pada Tabel 1. Untuk kaca
yang akan digunakan sebagai dasar
akuarium sebaiknya ketebalannya
ditambah 1 – 2 mm.
Tabel 2.1. Perbandingan antara ukuran akuarium dengan ketebalan kaca
Tebal kaca (mm)
Panjang
akuarium (cm)
Lebar
akuarium
(cm)
Tinggi
akuarium
(cm)
3335566
10
10
10
12
16
30
40
50
70
80
90
120
150
150
180
190
200
20
20
30
35
40
45
50
45
45
45
50
70
20
30
30
35
40
45
50
50
60
60
60
65
Setelah menentukan bentuk dan
ukuran kaca yang akan
dipergunakan untuk membuat
akuarium maka langkah selanjutnya
adalah memotong kaca. Kaca yang
dipergunakan untuk membuat
akuarium masih dalam bentuk
lembaran kaca. Ada beberapa
34
langkah yang harus diperhatikan
dalam memotong kaca antara lain
adalah :
1. Letakkan lembaran kaca pada
meja kerja, meja kerja harus
dalam keadaan datar dan bersih.
Hal ini untuk menghindari
terjadinya keretakan kaca yang
akan dipergunakan.
Gambar 2.25. Meletakan lembaran
kaca
2. Ukuran kaca yang akan dipotong
ini disesuaikan dengan bentuk
akuarium yang akan dibuat.
Dalam membuat potonganpotongan
kaca, lembaran kaca
dibuat polanya terlebih dahulu
dengan menggunakan spidol dan
penggaris besi. Pola yang sudah
dibentuk dapat langsung
dipotong.
Gambar 2.26. Mengukur kaca
3. Untuk memotong kaca gunakan
alat pemotong kaca yang banyak
dijual di toko besi.
Gambar 2.27. Memotong kaca
4. Setelah kaca terpotong, bagian
pinggir dari potongan-potongan
kaca harus dihaluskan dengan
gerinda atau batu asahan
karborondum.
35
Gambar 2.28. Menghaluskan bagian
pinggir kaca
Setelah kaca yang dibutuhkan untuk
membuat akuarium tersebut
disiapkan langkah selanjutnya
adalah melakukan perakitan
akuarium. Dalam merakit akuarium
dibutuhkan ketelitian dan ketepatan
dalam merangkainya. Kaca sebagai
bahan utama dalam pembuatan
akuarium dapat diperoleh dengan
cara membeli lembaran kaca atau
membeli potongan kaca sesuai
dengan ukuran yang tepat.
Akuarium sebagai salah satu wadah
yang dapat digunakan untuk
membudidayakan ikan baik ikan hias
maupun ikan konsumsi yang berasal
dari perairan tawar dan laut dapat
diperoleh dengan cara membeli
langsung ditoko atau membuatnya
sendiri. Dengan membuat akuarium
sendiri akan diperoleh keuntungan
antara lain adalah harganya relatif
lebih murah, ukuran sesuai dengan
kebutuhan dan kaca yang digunakan
mempunyai ketebalan sesuai dengan
luasan akuarium yang dibuat.
Dalam membuat akuarium, ada
beberapa hal yang harus dikuasai
agar akuarium yang dibuat tidak
bocor dan tahan lama, yaitu
merancang/mendesain akuarium,
memotong kaca, merakit akuarium
dan melakukan uji coba terhadap
akuarium tersebut.Akuarium yang
akan dirakit sendiri, langkah awal
yang harus dilakukan adalah
menyiapkan kaca sebagai dasar
utama pembuatan akuarium. Kaca
yang akan dirakit menjadi akuarium
ini sudah dalam bentuk potonganpotongan
kaca yang ukurannya
disesuaikan dengan ukuran
akuarium yang akan dibuat. Sebelum
dirakit kaca-kaca tersebut sebaiknya
dilakukan penggosokan dengan
menggunakan batu asahan
karborundum atau gerinda. Hal ini
bertujuan agar akuarium yang dibuat
tidak berbahaya bagi pemakainya.
Kaca-kaca yang telah dihaluskan
seluruh bagian pinggirnya dengan
gerinda ini telah siap untuk dirakit.
Langkah selanjutnya adalah
menyiapkan alat dan bahan lainnya
yaitu lem kaca silikon, alat tembak
lem, lakban besar dan cutter.
Lem kaca yang digunakan adalah
lem silikon yaitu lem khusus untuk
merekatkan kaca agar melekat
dengan baik dan tidak bocor. Alat
tembak lem silikon ini berfungsi
untuk memudahkan si pembuat
akuarium dalam merakit akuarium,
bentuk alat tembak ini seperti pistol
sehingga disebut alat tembak.
36
Gambar 2.29. Lem silikon dan alat
tembak lem
Gambar 2.30. Penggunaan alat
tembak lem
Sedangkan lakban yang digunakan
dalam merakit akuarium sebaiknya
lakban plastik yang berwarna colklat
atau hitam dengan ukuran lebar
lakbannya adalah 5 cm. Lakban ini
berfungsi untuk membantu berdirinya
kaca dengan kaca lainnya agar tidak
bergeser yang memudahkan dalam
pemberian lem kaca.
Gambar 2.31. Plakban pada kaca
Pada saat menempelkan lem silikon
ke kaca sebaiknya ketebalan lem
pada seluruh permukaan kaca sama.
Hal ini akan membuat ketebalan lem
sama pada setiap sudut . Setelah
seluruh kaca terakit menjadi
akuarium, langkah selanjutnya
adalah mengeringkan akuarium
tersebut minimal selama 24 jam agar
lem silikon tersebut benar-benar
kering.
Gambar 2.31. Mengeringkan
akuarium
Langkah terakhir dalam merakit
akuarium adalah melakukan uji coba
terhadap akuarium tersebut. Ujicoba
tersebut dilakukan dengan mengisi
air ke dalam akuarium selama 24
jam dan perhatikan apakah ada
bagian yang bocor. Untuk
37
memperoleh akuarium yang rapih
setelah diuji coba bersihkan lem
yang tidak rapih dengan
menggunakan cutter.
2.2.3. Konstruksi Keramba Jaring
Apung
Wadah budidaya ikan selanjutnya
yang sangat potensial dikembangkan
di Indonesia adalah karamba jaring
terapung. Agar dapat melakukan
budidaya ikan dijaring terapung yang
menguntungkan maka konstruksi
wadah tersebut harus sesuai dengan
persyaratan teknis. Konstruksi
wadah jaring terapung pada
dasarnya terdiri dari dua bagian yaitu
kerangka dan kantong jaring.
Kerangka berfungsi sebagai tempat
pemasangan kantong jaring dan
tempat lalu lalang orang pada waktu
memberi pakan dan saat panen.
Kantong jaring merupakan tempat
pemeliharaan ikan yang akan
dibudidayakan. Dengan memperhitungkan
konstruksi wadah secara
baik dan benar akan diperoleh suatu
wadah budidaya ikan yang
mempunyai masa pakai yang lama.
Dalam mendesain konstruksi wadah
budidaya ikan disesuaikan dengan
lokasi yang dipilih untuk membuat
budidaya ikan dijaring terapung.
Budidaya ikan dijaring terapung
dapat dilakukan untuk komoditas
ikan air tawar dan ikan air laut.
Sebelum membuat konstruksi wadah
karamba jaring terapung pemilihan
lokasi yang tepat dari aspek sosial
ekonomis dan teknis benar. Sama
seperti wadah budidaya ikan
sebelumnya persyaratan secara
teknis dan sosial ekonomis dalam
memilih lahan yang akan digunakan
untuk melakukan budidaya ikan
harus diperhatikan. Aspek sosial
ekonomis yang sangat umum yang
harus dipertimbangkan adalah lokasi
tersebut dekat dengan pusat
kegiatan yang mendukung
operasionalisasi suatu usaha seperti
tempat penjualan pakan, pembeli
ikan dan lokasi yang dipilih
merupakan daerah pengembangan
budidaya ikan sehingga mempunyai
prasarana jalan yang baik serta
keamanan terjamin. Persyaratan
teknis yang harus diperhatikan dalam
memilih lokasi usaha budidaya ikan
di karamba jaring terapung antara
lain adalah :
1. Arus air.
Arus air pada lokasi yang dipilih
diusahakan tidak terlalu kuat
namun tetap ada arusnya agar
tetap terjadi pergantian air
dengan baik dan kandungan
oksigen terlarut dalam wadah
budidaya ikan tercukupi, selain
itu dengan adanya arus maka
dapat menghanyutkan sisa-sisa
pakan dan kotoran ikan yang
terjatuh di dasar perairan.
Dengan tidak terlalu kuatnya arus
juga berpengaruh terhadap
keamanan jaring dari kerusakan
sehingga masa pakai jaring lebih
lama. Bila pada perairan yang
akan dipilih ternyata tidak ada
arusnya (kondisi air tidak
mengalir), disarankan agar unit
budidaya atau jaring dapat
diusahakan di perairan tersebut,
tetapi jumlahnya tidak boleh lebih
dari 1% dari luas perairan. Pada
kondisi perairan yang tidak
mengalir, unit budidaya
sebaiknya diletakkan ditengah
38
perairan sejajar dengan garis
pantai.
2. Tingkat kesuburan.
Pada perairan umum dan waduk
ditinjau dari tingkat kesuburannya
dapat dikelompokkan menjadi
perairan dengan tingkat
kesuburan rendah (oligotropik),
sedang (mesotropik) dan tinggi
(eutropik). Jenis perairan yang
sangat baik untuk digunakan
dalam budidaya ikan di jaring
terapung dengan sistem intensif
adalah perairan dengan tingkat
kesuburan rendah hingga
sedang.Jika perairan dengan
tingkat kesuburan tinggi
digunakan dalam budidaya ikan
di jaring terapung maka hal ini
sangat beresiko tinggi karena
pada perairan eutropik
kandungan oksigen terlarut pada
malam hari sangat rendah dan
berpengaruh buruk terhadap ikan
yang dipelihara dengan
kepadatan tinggi.
3. Bebas dari pencemaran.
Dalam dunia perikanan, yang
dimaksud dengan pencemaran
perairan adalah penambahan
sesuatu berupa bahan atau
energi ke dalam perairan yang
menyebabkan perubahan
kualitas air sehingga mengurangi
atau merusak nilai guna air dan
sumber air perairan tersebut.
Bahan pencemar yang biasa
masuk kedalam suatu badan
perairan pada prinsipnya dapat
dikelompokkan menjadi dua yaitu
bahan pencemar yang sulit
terurai dan bahan pencemar
yang mudah terurai. Contoh
bahan pencemar yang sulit
terurai berupa persenyawaan
logam berat, sianida, DDT atau
bahan organik sintetis. Contoh
bahan pencemar yang mudah
terurai berupa limbah rumah
tangga, bakteri, limbah panas
atau limbah organik. Kedua jenis
bahan pencemar tersebut
umumnya disebabkan oleh
kegiatan manusia, baik secara
langsung maupun tidak langsung.
Penyebab kedua adalah keadaan
alam seperti : banjir atau gunung
meletus. Jika lokasi budidaya
mengandung bahan pencemar
maka akan berpengaruh
terhadap kehidupan ikan yang
dipelihara didalam wadah
budidaya ikan tersebut.
4. Kualitas air.
Dalam budidaya ikan, secara
umum kualitas air dapat diartikan
sebagai setiap perubahan
(variabel) yang mempengaruhi
pengelolaan, kelangsungan
hidup dan produktivitas ikan yang
dibudidayakan. Jadi perairan
yang dipilih harus berkualitas air
yang memenuhi persyaratan bagi
kehidupan dan pertumbuhan ikan
yang akan dibudidayakan.
Kualitas air meliputi sifat fisika,
kimia dan biologi. Secara detail
tentang kualitas air ini akan
dibahas pada Bab 2.
Setelah mendapatkan lokasi yang
memenuhi persyaratan teknis
maupun sosial ekonomis maka harus
dilakukan perencanaan selanjutnya.
Perencanaan disesuaikan dengan
data yang diperoleh pada waktu
melakukan survey lokasi.
Perencanaan tersebut dapat dibuat
dengan membuat gambar dari
39
konstruksi wadah budidaya yang
akan dibuat. Konstruksi wadah jaring
terapung terdiri dari beberapa bagian,
antara lain :
1. Kerangka
Kerangka (bingkai) jaring
terapung dapat dibuat dari bahan
kayu, bambu atau besi yang
dilapisi bahan anti karat (cat besi).
Memilih bahan untuk kerangka,
sebaiknya disesuai-kan dengan
ketersediaan bahan di lokasi
budidaya dan nilai ekonomis dari
bahan tersebut.
Kayu atau bambu secara
ekonomis memang lebih murah
dibandingkan dengan besi anti
karat, tetapi jika dilihat dari masa
pakai dengan menggunakan
kayu atau bambu jangka waktu
(usia teknisnya) hanya 1,5–2
tahun. Sesudah 1,5–2 tahun
masa pakai, kerangka yang
terbuat dari kayu atau bambu ini
sudah tidak layak pakai dan
harus direnofasi kembali. Jika
akan memakai besi anti karat
sebagai kerangka jaring pada
umumnya usia ekonomis/ angka
waktu pemakaiannya relatif lebih
lama, yaitu antara 4–5 tahun.
Pada umumnya petani ikan di
jaring terapung menggunakan
bambu sebagai bahan utama
pembuatan kerangka, karena
selain harganya relatif murah
juga ketersediaannya di lokasi
budidaya sangat banyak.
Bambu yang digunakan untuk
kerangka sebaiknya mempunyai
garis tengah 5 – 7 cm di bagian
pangkalnya, dan bagian
ujungnya berukuran antara 3 – 5
cm. Jenis bambu yang digunakan
adalah bambu tali. Ada juga
jenis bambu gombong yang
mempunyai diameter 12 -15 cm
tetapi jenis bambu ini kurang baik
digunakan untuk kerangka
karena cepat lapuk.
Ukuran kerangka jaring terapung
berkisar antara 5 X 5 meter
sampai 10 X 10 meter. Petani
ikan jaring terapung di perairan
cirata pada umumnya
menggunakan kerangka dari
bambu dengan ukuran 7 X 7
meter. Kerangka dari jaring
apung umumnya dibuat tidak
hanya satu petak/kantong tetapi
satu unit. Satu unit jaring
terapung terdiri dari empat buah
petak/kantong. Untuk lebih
jelasnya dapat dilihat pada
Gambar 2.32.
Gambar 2.32. Kerangka Jaring
Apung
2. Pelampung
Pelampung berfungsi untuk
mengapungkan kerangka/ jaring
terapung. Bahan yang digunakan
sebagai pelampung berupa drum
(besi atau plastik) yang
berkapasitas 200 liter, busa
40
plastik (stryrofoam) atau
fiberglass. Jenis pelampung yang
akan digunakan biasanya dilihat
berdasarkan lama pemakaian.
Hal ini dapat dilihat pada Tabel
2.2
Tabel 2.2. Jenis pelampung dan
lama pemakaian
No.
Jenis
pelampung
Lama
pemakaian
(bulan)
1.
2.
3.
Drum besi
Styrofoam
Fiberglass
12 – 15
36 – 75
50 – 75
Jika akan menggunakan
pelampung dari drum maka drum
harus terlebih dahulu dicat
dengan menggunakan cat yang
mengandung bahan anti karat.
Jumlah pelampung yang akan
digunakan disesuaikan dengan
besarnya kerangka jaring apung
yang akan dibuat. Jaring
terapung berukuran 7 X 7 meter,
dalam satu unit jaring terapung
membutuhkan pelampung antara
33 – 35 buah. Untuk lebih
jelasnya dapat dilihat pada
Gambar 2.33.
Gambar 2.33. Pelampung drum besi
3. Pengikat
Tali pengikat sebaiknya terbuat
dari bahan yang kuat, seperti
tambang plastik, kawat ukuran 5
mm, besi beton ukuran 8 mm
atau 10 mm. Tali pengikat ini
digunakan untuk mengikat
kerangka jaring terapung,
pelampung atau jaring.
4. Jangkar
Jangkar berfungsi sebagai
penahan jaring terapung agar
rakit jaring terapung tidak hanyut
terbawa oleh arus air dan angin
yang kencang. Jangkar terbuat
dari bahan batu, semen atau besi.
Pemberat diberi tali pemberat/tali
jangkar yang terbuat dari
tambang plastik yang
41
berdiameter sekitar 10 mm – 15
mm. Jumlah pemberat untuk satu
unit jaring terapung empat
petak/kantong adalah sebanyak
4 buah. Pemberat diikatkan pada
masing-masing sudut dari
kerangka jaring terapung. Berat
jangkar berkisar antara 50 – 75
kg. Untuk lebih jelasnya dapat
dilihat pada Gambar 2.34.
Gambar 2.34. Jangkar
5. Jaring
Jaring yang digunakan untuk
budidaya ikan di perairan umum,
biasanya terbuat dari bahan
polyethylene atau disebut jaring
trawl. Ukuran mata jaring yang
digunakan tergantung dari
besarnya ikan yang akan
dibudidayakan. Kantong jaring
terapung ini mempunyai ukuran
bervariasi disesuaikan dengan
jenis ikan yang dibudidayakan,
untuk ikan air laut ukuran
kantong jaring yang biasa
digunakan berukuran mulai 2 X 2
X 2 m sampai 5 X 5 x 5 m.
Sedangkan untuk jenis ikan air
tawar berkisar antara 3 X 3 X 3 m
sampai 7 X 7 X 2,5 m. Untuk
mengurangi resiko kebocoran
akibat gigitan binatang lain,
biasanya kantong jaring terapung
dipasang rangkap (doubel) yaitu
kantong jaring luar dan kantong
jaring dalam. Ukuran jaring
bagian luar biasanya mempunyai
mata jaring (mesh size) yang
lebih besar.
Salah satu contohnya adalah
sebagai berikut :
a. Jaring polyethylene no. 380
D/9 dengan ukuran mata
jaring (mesh size) sebesar 2
inch (5,08 cm) yang
dipergunakan sebagai
kantong jaring luar.
b. Jaring polyethylene no. 280
D/12 dengan ukuran mata
jaring 1 inch (2,5 cm) atau 1,5
inch (3,81 cm) dipergunakan
sebagai kantong jaring dalam.
Jaring yang mempunyai ukuran
mata jaring lebih kecil dari 1 inch
biasanya digunakan untuk
memelihara ikan yang berukuran
lebih kecil. Di perairan umum,
khususnya dalam budidaya ikan
di jaring terapung ukuran jaring
yang digunakan adalah ukuran ¾
- 1 inch. Untuk lebih jelasnya
dapat dilihat pada Tabel 2.3.
Tabel 2.3. Ukuran mata jaring yang
digunakan berdasarkan
ukuran ikan yang
dibudidayakan.
No. Ukuran mata
jaring
Ukuran ikan
42
1.
2.
3.
4.
0,5 cm
1,0 cm
2,5 cm
> 2,5 cm
1 – 2 cm
5 – 10 cm
20 – 30 cm
> 30 cm
Kantong jaring yang digunakan
untuk memelihara ikan dapat
diperoleh dengan membeli jaring
utuh. Dalam hal ini biasanya
jaring trawl dijual dipasaran
berupa lembaran atau gulungan.
Langkah awal yang harus
dilakukan untuk membuat
kantong jaring adalah membuat
desain/rancangan kantong jaring
yang akan dipergunakan. Ukuran
kantong jaring yang akan
dipergunakan berkisar antara 2
X 2 m sampai dengan 10 X 10 m.
Setelah ukuran kantong jaring
yang akan dipergunakan,
misalnya akan dibuat kantong
jaring dengan ukuran 7 X 7 X 2 m,
langkah selanjutnya adalah
memotong jaring.
Untuk memotong jaring harus
dilakukan dengan benar
berdasarkan pada ukuran mata
jaring dan tingkat
perenggangannya saat
terpasang di perairan. Menurut
hasil penelitian, jaring dalam
keadaan terpasang atau sudah
berupa kantong jaring akan
mengalami perenggangan atau
mata jaring dalam keadaan
tertarik/terbuka (”Hang In Ratio”).
Nilai ”Hang In Ratio” dalam
membuat kantong jaring terapung
adalah 30%. Adapun perhitungan
yang digunakan untuk memotong
jaring ada dua cara, yaitu : (1)
menggunakan rumus tertentu
dan (2) melakukan perhitungan
cara di lapangan.
Rumus berdasarkan ”Hang In
Ratio” adalah sebagai berikut :
i
1. L = -----------
1 - S
2. d = D 2S – S2
Keterangan :
S : Hang In Ratio
L : Panjang jaring sebelum
Hang In atau dalam
keadaan tertarik
i : Panjang tali ris
D : dalam kantong jaring
(jumlah mata jaring
dikalikan ukuran mata jaring
dalam keadaan tertarik)
D : dalam kantong jaring
sesudah
Contoh penggunaan rumus
dalam menghitung jaring yang
akan dipotong dengan ukuran 7
X 7 X 2 m adalah sebagai
berikut:
Misalnya, kantong jaring yang
akan dibuat 7 X 7 X 2 m dengan
ukuran mata jaring (mesh size) 2
inch (5,08 cm). Diketahui Hang In
Ratio (S) adalah 30% = 0,3,
Panjang tali ris (i) = 4 X 7 m = 28
m. Maka untuk mencari panjang
jaring sebelum Hang In adalah :
i
L = ------
1 – S
28 28
L = ------- = ------- = 40 m
1 – 0,3 0,7
43
Jadi panjang tiap sisi adalah 40
m : 4 = 10 m
Jumlah mata jaring 10 m = 1000
cm : 5,08 cm = 197,04 mata
jaring dibulatkan 197 mata jaring.
Diketahui dalam jaring sesudah
Hang In (d) adalah 2 m, maka
dalam kantong jaring sebelum
dipotong (D) adalah :
d = D 2S – S2
d
D = ------------
2S – S2
2
D = --------------------
2 (0,3) – 0,32
2
= ---------------
0,6 – 0,09
2
= ----------
0,51
2
= --------- = 2,8 m
0,7141
Jadi jumlah mata jaring 2,8 m =
280 cm : 5,08 cm = 55,1 mata
jaring dibulatkan menjadi 55 mata
jaring.
Dari hasil perhitungan tersebut
diperoleh ukuran lembaran jaring
yang akan dipotong untuk
kantong jaring berukuran 7 X 7 X
2 m adalah 197 X 197 X 55 mata
jaring.
Sedangkan para petani ikan
dilapangan biasanya menghitung
jaring yang akan digunakan
untuk membuat kantong jaring
menggunakan perhitungan
sebagai berikut :
Misalnya kantong jaring yang
akan dibuat berukuran 7 X 7 X 2
m dengan ukuran mata jaring
(mesh size) 2 inch (5,08 cm).
Berdasarkan hasil penelitian
panjang jaring akan berkurang
sebesar 30% dari semula. Maka
secara praktis dilapangan
diperhitungkan jumlah mata
jaring dalam setiap meter adalah:
100
------------------------------ =
(100% - 30%) X 2,54
100
------------------ =
0,7 X 2,54
100
--------- = 56,2 = 56
1,778
Jadi dalam satu meter jaring
yang berukuran 1 inch terdapat
56 mata jaring, sehingga jika
akan membuat jaring dengan
ukuran 7 X 7 X 2 m, jumlah mata
jaringnya adalah 392 X 392 X
112 mata jaring. Sedangkan
ukuran mata jaring yang akan
digunakan adalah 2 inch maka
jumlah mata jaring yang akan
dipotong adalah 196 X 196 X 56.
Angka-angka ini diperoleh dari
hasil perkalian antara ukuran
kantong jaring dengan jumlah
44
mata jaring. Berdasarkan hasil
kedua perhitungan tersebut
memperoleh nilai yang tidak jauh
berbeda. Langkah selanjutnya
yang harus dilakukan adalah
memindahkan pola yang telah
dibuat langsung kejaring. Jaring
tersebut dibentangkan dan dibuat
pola seperti Gambar 2.35.
Gambar 2.35. Pola jaring
Sebagai acuan untuk
melakukan pemotongan jaring
yang akan dipergunakan untuk
membuat kantong jaring
terapung dapat dilihat pada
Tabel 2.4.
Tabel 2.4. Perhitungan jumlah mata jaring yang harus dipotong dalam
berbagai ukuran kantong jaring dan mata jaring.
Ukuran kantong
jaring (p X l X t)
(meter)
Ukuran mata
jaring (inch)
Ukuran kantong jaring
(p X lX t) dalam jumlah mata
jaring
2 X 2 X2
3 X 3 X 2
4 X 4 X 2
5 X 5 X 2
6 X 6 X 2
12
12
12
12
12 112 X
112 X
112
56 X 56 X 56
168 X 168 X 112
84 X 84 X 56
224 X 224 X 112
112 X 112 X 56
280 X 280 X 112
140 X 140 X 56
336 X 336 X 112
168 X 168 X 56
45
7 X 7 X 2
8 X 8 X 2
9 X 9 X 2
10 X 10 X 2
12
12
12
12
392 X 392 X 112
196 X 196 X 56
448 X 448 X 112
224 X 224 X 56
504 X 504 X 112
252 X 252 X 56
560 X 560 X 112
280 X 280 X 56
6. Pemberat
Pemberat yang digunakan
biasanya terbuat dari batu atau
timah yang masing-masing
beratnya antara 2–5 kg. Fungsi
pemberat ini agar jaring tetap
simetris dan pemberat ini
diletakkan pada setiap sudut
kantong jaring terapung.
7. Tali/tambang
Tali/tambang yang digunakan
biasanya disesuaikan dengan
kondisi perairan pada perairan
tawar adalah tali plastik yang
mempunyai diameter 5–10 mm,
sedangkan pada perairan laut
tali/tambang yang digunakan
terbuat dari nilon atau tambang
yang kuat terhadap salinitas.
Tali/tambang ini dipergunakan
sebagai penahan jaring pada
bagian atas dan bawah. Tali
tambang ini mempunyai istilah
lain yang disebut dengan tali ris.
Panjang tali ris adalah sekeliling
dari kantong jaring terapung.
Misalnya, kantong jaring terapung
berukuran 7X7X2m maka
tali risnya adalah 7m X 4 =28 m.
Dengan dikalikan empat karena
kantong sisi jaring terapung
adalah empat sisi. Khusus untuk
tali ris pada bagian atas
sebaiknya dilebihkan 0,5 m untuk
setiap sudut. Jadi tali risnya
mempunyai panjang 28 m +( 4 X
0,5 m) = 30 m. Hal ini untuk
memudahkan dalam melakukan
aktivitas kegiatan operasional
pada saat melakukan budidaya
ikan.
2.3. PERSIAPAN WADAH
BUDIDAYA
Setelah mengetahui bermacammacam
wadah budidaya ikan dan
mengetahui konstruksi wadah
tersebut maka langkah selanjutnya
adalah menyiapkan segalanya agar
wadah budidaya ikan tersebut dapat
dipergunakan untuk kegiatan
budidaya. Dalam membudidayakan
ikan dengan menggunakan kolam
yang biasanya dilakukan untuk
melakukan budidaya ikan air tawar,
harus dilakukan persiapan kolam
agar dapat dipergunakan untuk
membudidayakan ikan. Persiapan
46
kolam meliputi pengeringan kolam,
perbaikan pematang, pengolahan
dasar kolam, perbaikan saluran
pemasukan dan pengeluaran air,
pemupukan dan pengapuran.
Untuk lebih jelasnya akan diuraikan
tahapan-tahapan yang harus
dilakukan meliputi :
1. Pengeringan
Pengeringan dasar kolam sangat
dibutuhkan oleh ikan agar bakteri
pembusuk yang dapat
menyebabkan ikan sakit, racun
sisa dekomposisi selama
budidaya terbuang. Pada kolam
pemijahan pengeringan dasar
kolam bertujuan agar ikan dapat
memijah karena tanah yang
dikeringkan dan diairi akan
melepaskan bau tertentu yang
disebut petrichor, selain itu
pengeringan dasar kolam dapat
membunuh hama dan penyakit
yang ada di dalam kolam
Gambar 2.36.
Gambar 2.36. Pengeringan dasar
kolam
2. Perbaikan pematang
Perbaikan pematang bertujuan
untuk mencegah kebocoran
kolam. Kebocoran kolam dapat
diakibatkan oleh binatang air
seperti belut, kepiting dan hewan
air lainnya. Pematang bocor
mengakibatkan air kolam tidak
stabil dan benih ikan banyak
yang keluar kolam. Perbaikan
pematang ini hanya dilakukan
pada kolam tanah, sedangkan
pada kolam tembok dilakukan
perawatan dan pengecekan
kebocoran pada setiap bagian
pematang.
3. Pengolahan dasar kolam
Pengolahan dasar kolam
dilakukan pada kolam tradisional
dan kolam semi intensif dimana
dasar kolam berupa tanah.
Pengolahan dasar kolam
dilakukan dengan mencangkul
dasar kolam sedalam 10 – 20 cm.
Tanah tersebut dibalik dan
dibiarkan kering sampai 3-5 hari.
Tujuan pengolahan dasar kolam
adalah mempercepat
berlangsungnya proses
dekomposisi (penguraian)
senyawa-senyawa organik dalam
tanah sehingga senyawasenyawa
yang beracun yang
terdapat di dasar kolam akan
menguap. Tanah yang baru
dicangkul diratakan. Setelah
dasar kolam rata, lalu dibuat
saluran ditengah kolam. Saluran
ini disebut kemalir. Kemalir
berfungsi untuk memudahkan
pemanenan dan sebagai tempat
berlindung benih ikan pada siang
hari. Saluran pemasukan dan
pengeluaran air dilengkapi
dengan saringan. Tujuannya
untuk menjaga agar tidak ada
hama yang masuk ke dalam
kolam dan benih ikan budidaya
yang ditebarkan tidak kabur atau
keluar kolam (Gambar 2.37).
47
Gambar 2.37. Pengolahan tanah
dasar kolam
4. Pengapuran.
Pengapuran dasar kolam
sebaiknya dilakukan setelah
pengolahan tanah. Pada saat
tanah dibalikkan dan sambil
menunggu kering tanah dasar,
penebaran kapur dapat dilakukan.
Pengapuran merupakan salah
satu upaya untuk
mempertahankan kestabilan
keasaman (pH) tanah dan air,
sekaligus memberantas hama
penyakit. Jenis kapur yang
digunakan untuk pengapuran
kolam ada beberapa macam
diantaranya adalah kapur
pertanian, yaitu kapur carbonat :
CaCO3 atau [CaMg(CO3)]2, dan
kapur tohor/kapur aktif (CaO).
Kapur pertanian yang biasa
digunakan adalah kapur karbonat
yaitu kapur yang bahannya dari
batuan kapur tanpa lewat proses
pembakaran tapi langsung
digiling. Kapur pertanian ada dua
yaitu Kalsit dan Dolomit. Kalsit
bahan bakunya lebih banyak
mengandung karbonat,
magnesiumnya sedikit (CaCO3),
sedangkan dolomit bahan
bakunya banyak mengandung
kalsium karbonat dan magnesium
karbonat [CaMg(CO3)]2, Dolomit
merupakan kapur karbonat yang
dimanfaatkan untuk mengapur
lahan bertanah masam. Kapur
tohor adalah kapur yang
pembuatannya lewat proses
pembakaran. Kapur ini dikenal
dengan nama kapur sirih,
bahannya adalah batuan tohor
dari gunung dan kulit kerang.
Dosis kapur yang akan
ditebarkan harus tepat ukurannya
karena jika berlebihan kapur
akan menyebabkan kolam tidak
subur, sedangkan bila
kekurangan kapur dalam kolam
akan menyebabkan tanah dasar
kolam menjadi masam. Sebagai
acuan dalam memberikan kapur
pada kolam budidaya ikan dapat
dilihat pada Tabel 2.5. Tetapi ada
juga para petani menggunakan
dosis kapur berkisar antara 100-
200gram/m2 hal ini dilakukan
bergantung kepada keasaman
tanah kolam.
48
Tabel 2.5. Dosis kapur Tohor (CaO) menurut jenis tanah dan macam
kolam dengan luas 100 meterpersegi
Macam kolam
Jenis tanah
berpasir
Jenis tanah
pasir
berlumpur
Jenis tanah
lumpur
berpasir
Jenis tanah
berlumpur
Kolam baru
Kolam lama
25 kg
15 kg
30 kg
20 kg
40 kg
30 kg
60 kg
40 kg
5. Pemupukan.
Pemupukan tanah dasar kolam
bertujuan untuk meningkatkan
kesuburan kolam, memperbaiki
struktur tanah dan menghambat
peresapan air pada tanah-tanah
yang porous serta menumbuhkan
phytoplankton dan zooplankton
yang digunakan sebagai pakan
alami benih ikan. Jenis pupuk
yang biasa digunakan adalah
pupuk kandang dan pupuk
buatan. Pupuk kandang adalah
pupuk yang berasal dari kotoran
ternak besar (sapi, kerbau, kuda
dan lain-lain) atau kotoran
unggas (ayam, itik dan lain-lain)
yang telah dikeringkan.
Sedangkan pupuk buatan berupa
bahan-bahan kimia yang dibuat
manusia dipabrik pupuk yang
berguna untuk menyuburkan
tanah. Jenis pupuk buatan yang
dapat digunakan antara lain
adalah pupuk nitrogen (urea, ZA),
pupuk phosphor (TSP), pupuk
kalium (KCl) dan pupuk NPK
yang merupakan gabungan dari
ketiga hara tunggal.
Dosis pupuk kandang juga
bergantung kepada kesuburan
kolam ikan, biasanya berkisar
antara 100-150 gram/m2
sedangkan untuk kolam yang
kurang kesuburannya dapat
ditebarkan kotoran ayam
sebanyak 300 – 500 gr/m2 . Dosis
yang digunakan untuk pupuk
buatan biasanya berkisar antara
200-300 gram/m2. Kolam dapat
juga dipupuk menggunakan, TSP
dan Urea masing-masing
sebanyak 10 gr/m2 dan kapur
pertanian sebanyak 25 – 30 gr/
m2 atau disesuaikan dengan
tingkat kesuburan lahan.
6. Pengairan
Kolam yang telah dikeringkan,
dikapur dan di pupuk tersebut
lalu diairi agar pakan alami di
kolam tersebut tumbuh dengan
subur. Pengairan ini harus
dilakukan minimal 4 –7 hari
sebelum larva/benih ikan di tebar
ke dalam kolam pemeliharaan
agar pakan alami tumbuh dengan
sempurna.
Ketinggian air di kolam ikan ini
bergantung pada jenis kolam,
untuk kolam pemijahan
ketinggian air 0,75-1,00 m, kolam
pemeliharaan 1-1,25 m (Gambar
2.38).
49
Gambar 2.38. Mengairi kolam
Wadah budidaya ikan (kolam) yang
sudah dipersiapkan dan siap untuk
dipergunakan sebagai wadah untuk
kegiatan budidaya. Agar kolam yang
dipergunakan senantiasa baik untuk
kegiatan budidaya maka harus selalu
dilakukan pengelolaan terhadap
kolam budidaya baik kolam
pemeliharaan, pemijahan, penetasan
telur dan lain sebagainya. Pada
pengelolaan kolam yang akan
dipergunakan sebagai wadah
pemeliharaan induk/calon induk
sebaiknya mempunyai persyaratan
yang sesuai dengan lingkungan yang
layak bagi kehidupan induk.
Hal-hal yang harus dilaksanakan
dalam pengelolaan kolam induk ikan
ini adalah :
1. Persiapan wadah
Wadah mempunyai pematang
kokoh dan tidak bocor, pintu
pemasukan, serta pintu
pengeluaran yang dipasang
saringan. Adanya saringan air ini
baik pada pintu pemasukan
maupun pada pintu pengeluaran,
untuk menghindari masuknya
ikan liar, terutama ikan predator
yang dapat mengganggu proses
pemijahan bahkan dapat
memangsa induk maupun larva
yang dihasilkan.
Pengolahan dasar kolam dengan
cara membalik tanah bagian
dasar kolam yang di lanjutkan
dengan pengapuran dan
pemupukan. Pengolahan dasar
kolam bertujuan untuk
meningkatkan kesuburan dasar
dan perairan kolam sebagai stok
pakan alami bagi calon induk.
Pemberian kapur selain dapat
membunuh hama dan parasit
ikan juga dapat menaikan pH
dasar kolam. Sedangkan
pemupukan bertujuan untuk
memenuhi kebutuhan unsur hara
yang diperlukan fitoplankton
sebagai makanan zooplankton
maupun ikan. Pemupukan dasar
kolam dapat digunakan pupuk
kandang, pupuk hijau atau pupuk
buatan. Pemberian pupuk dapat
dilakukan dengan cara
menyebarkan pupuk ke dasar
kolam dan dilanjutkan dengan
pemupukan susulan setelah 15
hari dengan cara memberikan
pupuk yang dibungkus dari
karung plastik yang diberi lubang
keci-kecil sehingga pupuk akan
terurai secara perlahan.
2. Pengairan
Pengairan dimaksudkan untuk
menjaga kondisi lingkungan bagi
induk sesuai dengan persyaratan
yang dibutuhkan yaitu perairan
subur, cukup tersedia oksigen
terlarut ( 5 ppm), CO2 (<10 ppm),
NH3 ( <1 ppm). Untuk
mendapatkan lingkungan yang
demikian, maka air kolam harus
terus menerus mengalir sehingga
tidak ada lagi penimbunan
kotoran air akibat dari sisa pakan
atau sampah lainnya.
50
3. Pengendalian gulma air
Tanaman air yang dapat
mengganggu lingkungan hidup
ikan antara lain adalah eceng
gondok dan kiambang, bila
populasinya banyak sampai
menutupi permukaan air, maka
proses difusi oksigen ke dalam
air dan proses fotosintesis
phytoplankton dapat terganggu
sehingga Oksigen terlarut akan
menurun. Pengendalian gulma
air ini dapat dilakukan dengan
cara memberi saringan pada
pintu pemasukan air dan
pengendalian gulma secara
mekanis, yaitu dengan cara
mengambil /mencabut gulma
yang ada di kolam.
Setelah semua langkah persiapan
dilakukan maka kolam tersebut dapat
digunakan untuk melakukan kegiatan
budidaya.
Wadah budidaya ikan yang lainnya
adalah bak tembok atau bak beton,
bak yang akan digunakan untuk
budidaya ikan harus dilakukan
persiapan wadah sebelum
dipergunakan untuk melakukan
kegiatan budidaya. Persiapan wadah
bertujuan untuk mengkondisikan
wadah agar dapat digunakan secara
efesien dan memenuhi persyaratan
lingkungan yang optimal, sehingga
ikan dapat hidup dengan laju
pertumbuhan yang optimum.
Persiapan bak budidaya ikan
meliputi:
1. Sanitasi wadah
Wadah yang akan digunakan
untuk budidaya ikan (bak)
sebelum digunakan dibersihkan
dari kotoran yang menempel,
agar tidak terdapat sisa-sisa
kotoran yang dapat
menyebabkan pembawa penyakit
Gambar 2.31). Bahan yang
digunakan untuk membersihkan
wadah dan merupakan
desinfektan antara lain lain
adalah Chlorin 200 ppm,
Malachite green 100 ppm,
Formalin 25 ppm dan alkohol
70%. Wadah yang akan
dipergunakan setelah disikat,
dibersihkan dan diberi
desinfektan kemudian
dibersihkan kembali dan wadah
tersebut dibiarkan kering udara
agar bahan beracun tersebut
telah hilang menguap. Setelah
dilakukan sanitasi diisi dengan air
untuk memeriksa kebocoran bak.
Gambar 2.39. Sanitasi bak
budidaya
2. Perbaikan wadah
Sebelum wadah digunakan
dilakukan pemeriksaan apakah
bak tersebut siap untuk
digunakan untuk budidaya ikan.
Pemeriksaan bertujuan untuk
mengetahui apakah bak yang
akan digunakan mengalami
kerusakan baik karena
kebocoran dasar dan dinding bak
51
maupun karena adanya
kebocoran pada pipa
pengeluaran dan pemasukan.
Oleh karena itu kerusakan
tersebut harus diperbaiki dahulu
sebelum digunakan. Bahan untuk
memperbaiki kebocoran bak
dapat berupa resin serat kaca
untuk bak yang terbuat dari serat
fiber, semen atau lem khusus
untuk beton untuk bak yang
terbuat dari beton, bila bak yang
akan digunakan terbuat dari
plastik maka dapat digunakan
selotip tahan air untuk menutupi
kebocoran wadah budidaya.
Setelah kerusakan diperbaiki
maka bak harus dibiarkan
beberapa hari agar bahan
tersebut telah kering dan tidak
membahayakan ikan yang akan
dibudidayakan.
3. Perbaikan instalasi udara
Pada wadah budidaya ikan yang
menggunakan bak biasanya
menggunakan alat bantu untuk
meningkatkan kelarutan oksigen
didalam wadah budidaya dengan
menggunakan aerator ataupun
blower. Oleh karena itu harus
dilakukan pemeriksaan terhadap
peralatan tersebut. Instalasi
udara terdiri dari pompa udara,
penyaring udara, pipa penyalur,
batu aerasi dan alat pengatur
banyaknya aliran udara (kran).
Peralatan ini sering mengalami
kebocoran pada pipa dan
penyumbatan pada batu aerasi.
Ganti atau perbaiki peralatan
yang rusak dan tidak berfungsi
lagi. Pompa udara merupakan
alat yang paling penting pada
proses budidaya ikan di bak
karena banyaknya pengudaraan
pada air media tergantung dari
kekuatan pompa yang ada. Oleh
karena itu pompa yang yang
telah lemah harus segera
diperbaiki, karena dapat
berakibat fatal bagi ikan bila
terhentinya aliran udara dalam
waktu lama.
4. Perbaikan instalasi air
Pada budidaya ikan
menggunakan wadah bak
biasanya tidak mempunyai pipa
pemasukan air seperti dikolam,
pada bak pintu pemasukkan air
merupakan kran air yang
dimasukkan kedalam bak
budidaya. Sumber air yang
digunakan dapat berasal dari
mata air atau dari sumur yang
dipompakan ke bak-bak melalui
pipa pengaturan. Kebocoran
sering terjadi pada pipa
penyaluran dan kran pengatur
aliran. Air harus tetap tersedia
karena untuk keperluan
pergantian air pada media
pemeliharaan ikan. Sedangkan
pintu pengeluarannya berupa
pipa yang terbuat dari pipa PVC
dalam bentuk L atau lurus. Pintu
pengeluaran air ini harus
diperiksa apakah terjadi
penyumbatan pada saluran
pembuangannya.
Persiapan wadah budidaya ikan
yang menggunakan akuarium
tidak jauh berbeda dengan
penggunaan bak.
Pada wadah budidaya karamba
jaring terapung wadah tersebut
harus disiapkan sebelum
digunakan dengan beberapa
tahap antara lain adalah :
52
1. Perbaikan kerangka
Pemeriksaan terhadap kerangka
yang digunakan dalam budidaya
ikan di karamba jaring terapung
harus dilakukan, karena masa
pakai kerangka ini tidak bisa
sepanjang tahun. Masa pakai
kerangka ini sangat bergantung
pada bahan yang digunakannya,
ada beberapa macam bahan
yang digunakan sebagai
kerangka antara lain adalah
bambu, besi, stainless steel atau
papan. Setiap bahan tersebut
mempunyai masa pakai yang
berbeda oleh karena itu harus
dilakukan perbaikan pada
kerangka jarring apung yang
sudah mengalami kerusakan
agar wadah tersebut dapat
dipergunakan untuk budidaya
ikan.
2. Perbaikan jaring
Jaring yang akan digunakan
untuk budidaya ikan harus
dilakukan perbaikan dan
pergantian jika telah mengalami
kerusakan. Perbaikan jaring
dapat dilakukan dengan
melakukan perajutan pada
bagian jarring yang rusak
sedangkan pada jaring yang
sudah lapuk harus diganti
dengan jaring yang baru. Hal ini
dilakukan agar ikan yang
dibudidayakan tidak keluar dari
wadah budidaya. Pada kantong
jaring yang di pergunakan untuk
budidaya ikan sebelumnya
biasanya banyak terdapat
hewan-hewan kecil yang
menempel pada kantong jaring,
oleh karena itu harus dilakukan
pembersihan dengan cara
menyikat kantong jaring dan
menjemurnya kembali setelah
dibersihkan agar hewan-hewan
kecil tersebut bersih dari jaring.
51
BAB III MEDIA BUDIDAYA IKAN
Media budidaya ikan merupakan
suatu tempat hidup bagi ikan untuk
tumbuh dan berkembang yaitu air.
Air yang dapat digunakan sebagai
budidaya ikan harus mempunyai
standar kuantitas dan kualitas yang
sesuai dengan persyaratan hidup
ikan. Air yang dapat digunakan
sebagai media hidup ikan harus
dipelajari agar ikan sebagai
organisme air dapat dibudidayakan
sesuai kebutuhan manusia sebagai
sumber bahan pangan yang bergizi
dan relatif harganya murah. Air yang
dapat memenuhi kriteria yang baik
untuk hewan dan tumbuhan tingkat
rendah yaitu plankton sebagai
indikator paling mudah bahwa air
tersebut dapat digunakan untuk
budidaya ikan. Hal ini dikarenakan
organisme ini merupakan produsen
primer sebagai pendukung
kesuburan perairan. Oleh karena itu
kondisi perairan/ air harus mampu
menyiapkan kondisi yang baik,
terutama untuk tumbuhan tingkat
rendah (Fitoplankton) dalam proses
asimilasi sebagai sumber makanan
hewan terutama ikan.
Secara umum air sebagai lingkungan
hidup mempunyai sifat fisik, sifat
kimia dan sifat biologi. Agar dapat
melakukan pengelolaan kualitas air
dalam budidaya ikan maka harus
dipahami ketiga parameter kualitas
air yang sangat menentukan
keberhasilan suatu budidaya ikan.
Dalam bab ini akan dibahas tentang
kuantitas air dalam hal ini sumber air
yang dapat digunakan untuk
kegiatan budidaya, parameter
52
kualitas air yang akan sangat
menentukan keberhasilan suatu
usaha budidaya ikan dan bagaimana
cara melakukan pengukuran
terhadap parameter kualitas air
tersebut agar dapat selalu dipantau
perubahan kualitas air dalam wadah
budidaya ikan.
3.1. Sumber air
Sumber air yang dapat digunakan
untuk kegiatan budidaya ikan ada
beberapa macam. Berdasarkan
asalnya sumber air yang dapat
digunakan untuk kegiatan budidaya
ikan dapat dikelompokkan menjadi
dua yaitu air permukaan dan air
tanah. Air permukaan yaitu air hujan
yang mengalami limpasan/
berakumulasi sementara ditempattempat
rendah misalnya : air sungai,
waduk, danau dan rawa. Selain itu
air permukaan dapat juga
didefenisikan sebagai air yang
berada disungai, danau, waduk,
rawa dan badan air lainnya yang
tidak mengalami infiltrasi kedalam.
Sumber air permukaan tersebut
sudah banyak dipergunakan untuk
kegiatan budidaya ikan. Sedangkan
air tanah yaitu air hujan yang
mengendap atau air yang berada
dibawah permukaan tanah. Air tanah
yang saat ini digunakan untuk
kegiatan budidaya dapat diperoleh
melalui cara pengeboran air tanah
dengan kedalaman tertentu sampai
diperoleh titik sumber air yang akan
keluar dan dapat dipergunakan untuk
kegiatan budidaya.
Air tanah memiliki kelebihan airnya
bersih, kekurangannya air tanah
mempunyai kandungan oksigen yang
rendah, kadar karbondioksida yang
tinggi dan kandungan besi yang
relatif tinggi. Solusinya dengan
menggunakan aerator/kincir air
/blower pada air pemeliharaan dan
yang utama air tanah tersebut harus
diinapkan minimal semalam (12 jam)
untuk meningkatkan kadar oksigen
terlarut, selain itu jika air tanah
mengalami kontak dengan udara
akan mengalami proses oksigenasi
sehingga ion feri(besi) yang terdapat
pada air tanah akan segera
mengalami pengendapan dan akan
membentuk warna kemerahan pada
air. Air tanah mempunyai kandungan
oksigen yang rendah karena air ini
pergerakannya didalam tanah sangat
lambat dan sangat dipengaruhi oleh
porositas, permeabilitas dari lapisan
tanah dan pengisian kembali air. Jika
sumber air tanah ini dieksploitasi
secara besar-besaran maka jumlah
air tanah akan semakin berkurang.
Air tanah berdasarkan kandungan
salinitasnya merupakan air tawar
yang akan dipergunakan untuk
budidaya ikan air tawar. Saat ini
dibeberapa kota besar yang telah
banyak sekali terjadi pengeboran air
tanah secara besar-besaran maka
kadar salinitas dari air tanah ini
mengalami perubahan karena telah
tercemar dengan air laut. Oleh
karena itu sumber air yang biasa
digunakan di kota besar adalah air
yang berasal dari PAM. Air PAM ini
berasal dari sumber air permukaan
dan mengalami proses tertentu
sampai diperoleh kualitas air sesuai
baku mutu yang diinginkan. Sumber
air tersebut dapat dipergunakan
untuk budidaya ikan air tawar karena
memiliki kandungan oksigen yang
cukup dan pH yang stabil.
53
Kekurangan air PAM ini biasanya
mengandung klorin/kaporit yang
cukup tinggi dan solusinya sama
seperti pada air tanah cukup
dilakukan pengendapan air pada
wadah terpisah minimal semalam
yaitu 12 jam.
Air permukaan yang dapat
digunakan untuk kegiatan budidaya
ikan berdasarkan kadar garamnya
(salinitas) dibagi menjadi tiga yaitu
air tawar, air payau dan air laut. Air
tawar adalah air yang memiliki kadar
garam (salinitas) antara 0 – 5 ppt. Air
payau adalah air yang memiliki kadar
garam (salinitas) antara 6 – 29 ppt.
Air laut adalah air yang memiliki
kadar garam (salinitas) antara 30 –
35 ppt. Ketiga air ini dapat
dipergunakan untuk kegiatan
budidaya ikan, pada air tawar
dipergunakan untuk membudidayakan
ikan air tawar, pada air
payau dipergunakan untuk
membudidayakan ikan air payau dan
air laut untuk membudidayakan ikan
air laut. Air permukaan ini dapat
diklasifikasikan berdasarkan lamanya
terakumulasi dalam suatu tempat
dibagi menjadi dua yaitu perairan
tergenang (Lentik) antara lain adalah
danau, waduk dan situ , yang kedua
adalah perairan mengalir (Lotik)
antara lain adalah sungai, saluran
irigasi, air laut.
Air yang berasal dari danau, waduk
dan situ merupakan sumber air tawar
yang banyak digunakan oleh
kegiatan budidaya ikan dengan
metode budidaya di perairan umum
yaitu karamba jaring apung. Pada
perairan tergenang yang perlu
diperhatikan adalah terjadinya
stratifikasi secara vertikal yang
diakibatkan oleh perbedaan
intensitas cahaya dan perbedaan
suhu secara vertikal pada kolom air.
Air yang digunakan untuk kegiatan
budidaya ikan yang berasal dari air
mengalir dan banyak dipergunakan
oleh masyarakat adalah air sungai
untuk budidaya ikan air tawar dan air
laut untuk budidaya ikan air laut. Air
sungai merupakan sumber air yang
murah dan tidak memerlukan biaya
tetapi sumber air ini memiliki
kandungan lumpur yang cukup tinggi,
sehingga dalam pemakaiannya
sebaiknya dimasukkan terlebih
dahulu pada bak pengendapan.
Keuntungan sumber air ini adalah
mempunyai kandungan oksigen yang
cukup tinggi.
Pemilihan dari berbagai macam
sumber air tersebut sangat
bergantung kepada lokasi dimana
budidaya ikan tawar akan dilakukan ,
kuantitas dan kualitas air yang
terdapat pada sumber air tersebut.
Walaupun sumber air tersebut
berasal dari alam harus diperhatikan
juga tentang kontinuitas ketersediaan
air tersebut untuk kegiatan budidaya.
Pada kegiatan budidaya ikan jumlah
air yang dibutuhkan tidak sedikit
harus tersedia secara terus menerus.
Jumlah air yang diperlukan untuk
mengairi wadah budidaya ikan harus
cukup dan tersedia sepanjang tahun
karena dengan melakukan budidaya
bertujuan untuk memenuhi
kebutuhan pangan manusia. Untuk
mengetahui kebutuhan air pada
wadah budidaya ikan dapat
dilakukan perhitungan jumlah
persediaan air sumber. Salah satu
cara untuk mengetahui jumlah air
yang diperlukan pada kegiatan
budidaya adalah dengan mengetahui
54
jumlah air pada saluran sepanjang
tahun. Jumlah air yang dapat
dipergunakan untuk kegiatan
budidaya dapat diketahui dengan
mengukur debit air saluran. Debit air
saluran merupakan jumlah air yang
mengalir dalam saluran yang
dinyatakan dengan ukuran liter
perdetik. Debit air saluran dapat
diukur dengan cara langsung
maupun secara tidak langsung.
Pengukuran debit air secara
langsung dilakukan dengan
menggunakan sekat ukur.
Sedangkan pengukuran debit air
secara tidak langsung dilakukan
dengan cara menentukan rata-rata
luas penampang basah saluran
dikalikan dengan kecepatan aliran air
rata-rata. Pengukuran secara tidak
langsung inilah yang banyak
digunakan oleh para pembudidaya
ikan dilapangan karena relatif mudah
dilakukan.
3.2. Parameter kualitas air
3.2.1. Sifat Fisik
3.2.1.1. Kepadatan (density/berat
jenis)
Pada suhu 4 C (3,95 C ) air murni
mempunyai kepadatan yang
maksimum yaitu 1 (satu), sehingga
kalau suhu air naik, lebih tinggi dari
4 C kepadatan/berat jenisnya akan
turun, demikian juga kalau suhunya
lebih rendah dari 4 C. Sifat air yang
demikian itu, maka akan terjadi
pelapisan-pelapisan suhu air pada
danau atau perairan dalam, yaitu
pada lapisan dalam suatu perairan
suhu air makin rendah dibanding
pada permukaan air. Akan tetapi bila
air membeku jadi es, es tersebut
akan terapung. Akibat dari sifat
tersebut akan menimbulkan
pergolakan/perpindahan massa air
dalam perairan tersebut, baik secara
vertikal maupun horizontal. Sifat air
ini mengakibatkan pada perairan
didaerah yang beriklim dingin yang
membeku perairannya hanya pada
bagian atasnya saja sedangkan pada
bagian bawahnya masih berupa
cairan sehingga kehidupan
organisme akuatik masih tetap
berlangsung. Selain itu keuntungan
adanya gerakan air ini dapat
mendistribusikan/ menyebarkan
berbagai zat ke seluruh perairan,
sebagai sumber mineral bagi
fitoplankton dan fitoplankton sebagai
makanan ikan maupun hewan air
lainnya. Dasar perairan adalah
merupakan akumulasi pengendapan
mineral-mineral yang merupakan
persediaan “nutrient” yang akan
dimanfaatkan oleh mahluk hidup
(yang pada umumnya tinggal
didaerah permukaan air karena
mendapatkan sinar matahari yang
cukup). Pada perairan yang oligotrof
(cukup banyak mengandung mineral),
aliran vertikal tidak banyak
membawa keberuntungan, justru
sebaliknya dapat mengendapkan
mineral-mineral yang datang dari
tempat lain kedasar perairan,
mineral-mineral tersebut akan di
absorbsi oleh dasar perairan .
Sedangkan kerugian adanya aliran
air ini adalah terutama aliran air yang
vertikal sering menimbulkan
“upwalling” pada danau-danau,
sehingga menyebabkan keracunan
dan kematian ikan secara masal. Hal
ini disebabkan kondisi air yang
anaerob (oksigen rendah) dan zat55
zat beracun dari dasar perairan akan
naik kepermukaan air.
3.2.1.2. Kekentalan ( Viscosity )
Molekul-molekul air mempunyai daya
saling tarik menarik, kalau daya
saling tarik menarik tersebut
mengalami gangguan karena adanya
benda yang bergerak dalam air
seperti benda tenggelam, maka akan
timbul gesekan-gesekan yang
disebut dengan “gesekan intern
dalam air“/ Viscosity.
Menurut kesepakatan para ahli fisika,
pada suhu 0 C, kekentalan air murni
mempunyai nilai yang terbesar, dan
ditandai dengan angka 100. Makin
naik suhunya, makin berkurang
kekentalannya. Setiap kenaikan suhu
1 C terjadi penurunan viscosity 2%,
hingga pada suhu 25 C viscositas
turun menjadi setengahnya dari nilai
viscosity pada suhu 0 C. Viscosity
ini akan berpengaruh terhadap
proses pengendapan jasad renik
(plankton), zat-zat dan benda-benda
yang melayang didalam air.
3.2.1.3. Tegangan Permukaan
Molekul-molekul air mempunyai daya
saling tarik menarik terhadap
molekul-molekul yang ada. Dalam
fase cair daya tarik menarik masih
sedemikian besarnya, sehingga
molekul-molekul zat cair masih
mempunyai daya “Kohesi “.
Daya tarik menarik molekul air ini
terjadi kesegala penjuru, sedang
dipermukaan hanya terjadi gaya tarik
menarik kesamping dan kedalam
saja dan sifat itu yang menyebabkan
timbulnya tegangan permukaan.
Akibat adanya tegangan permukaan,
maka binatang dan tumbuhan yang
ringan, seperti kimbung akar dapat
berjalan diatas permukaan air, ada
juga plankton yang menggantung
dibawah permukaan air.
3.2.1.4. Suhu Air
Air sebagai lingkungan hidup
organisme air relatif tidak begitu
banyak mengalami fluktuasi suhu
dibandingkan dengan udara, hal ini
disebabkan panas jenis air lebih
tinggi daripada udara. Artinya untuk
naik 1 C, setiap satuan volume air
memerlukan sejumlah panas yang
lebih banyak dari pada udara. Pada
perairan dangkal akan menunjukkan
fluktuasi suhu air yang lebih besar
dari pada perairan yang dalam.
Sedangkan organisme memerlukan
suhu yang stabil atau fluktuasi suhu
yang rendah. Agar suhu air suatu
perairan berfluktuasi rendah maka
perlu adanya penyebaran suhu. Hal
tersebut tercapai secara sifat alam
antara lain;
Penyerapan (absorbsi) panas
matahari pada bagian
permukaan air.
Angin, sebagai penggerak
permindahan massa air.
Aliran vertikal dari air itu sendiri,
terjadi bila disuatu perairan
(danau) terdapat lapisan suhu air
yaitu lapisan air yang bersuhu
rendah akan turun mendesak
lapisan air yang bersuhu tinggi
naik kepermukaan perairan.
56
Selain itu suhu air sangat
berpengaruh terhadap jumlah
oksigen terlarut didalam air. Jika
suhu tinggi, air akan lebih lekas
jenuh dengan oksigen dibanding
dengan suhunya rendah. Suhu air
pada suatu perairan dapat
dipengaruhi oleh musim, lintang
(latitude), ketinggian dari permukaan
laut (altitude), waktu dalam satu hari,
penutupan awan, aliran dan
kedalaman air. Peningkatan suhu air
mengakibatkan peningkatan
viskositas, reaksi kimia, evaporasi
dan volatisasi serta penurunan
kelarutan gas dalam air seperti O2,
CO2, N2, CH4 dan sebagainya.
Kisaran suhu air yang sangat
diperlukan agar pertumbuhan ikanikan
pada perairan tropis dapat
berlangsung berkisar antara 25 C -
32 C. Kisaran suhu tersebut
biasanya berlaku di Indonesia
sebagai salah satu negara tropis
sehingga sangat menguntungkan
untuk melakukan kegiatan budidaya
ikan. Suhu air sangat berpengaruh
terhadap proses kimia, fisika dan
biologi di dalam perairan, sehingga
dengan perubahan suhu pada suatu
perairan akan mengakibatkan
berubahnya semua proses didalam
perairan. Hal ini dilihat dari
peningkatan suhu air maka kelarutan
oksigen akan berkurang. Dari hasil
penelitian diketahui bahwa
peningkatan 10 C suhu perairan
mengakibatkan meningkatnya
konsumsi oksigen oleh organisme
akuatik sekitar 2 – 3 kali lipat,
sehingga kebutuhan oksigen oleh
organisme akuatik itu berkurang.
Suhu air yang ideal bagi organisme
air yang dibudidayakan sebaiknya
adalah tidak terjadi perbedaan suhu
yang mencolok antara siang dan
malam (tidak lebih dari 5 C) .
Pada perairan yang tergenang yang
mempunyai kedalaman air minimal
1,5 meter biasanya akan terjadi
pelapisan (stratifikasi) suhu.
Pelapisan ini terjadi karena suhu
permukaan air lebih tinggi dibanding
dengan suhu air dibagian bawahnya.
Stratifikasi suhu pada kolom air
dikelompokkan menjadi tiga yaitu
pertama lapisan epilimnion yaitu
lapisan sebelah atas perairan yang
hangat dengan penurunan suhu
relatif kecil (dari 32 C menjadi 28
C). Lapisan kedua disebut dengan
lapisan termoklin yaitu lapisan
tengah yang mempunyai penurunan
suhu sangat tajam (dari 28 C
menjadi 21 C ). Lapisan ketiga
disebut lapisan hipolimnion yaitu
lapisan paling bawah dimana pada
lapisan ini perbedaan suhu sangat
kecil relatif konstan. Stratifikasi suhu
ini terjadi karena masuknya panas
dari cahaya matahari kedalam kolom
air yang mengakibatkan terjadinya
gradien suhu yang vertikal. Pada
kolam yang kedalaman airnya
kurang dari 2 meter biasanya terjadi
stratifikasi suhu yang tidak stabil.
Oleh karena itu bagi para
pembudidaya ikan yang melakukan
kegiatan budidaya ikan kedalaman
air tidak boleh lebih dari 2 meter.
Selain itu untuk memecah stratifikasi
suhu pada wadah budidaya ikan
diperlukan suatu alat bantu dengan
menggunakan aerator/blower/ kincir
air.
Berdasarkan hasil penelitian suhu air
sangat berpengaruh terhadap respon
ikan dalam mengkonsumsi pakan
57
yang diberikan selama berlangsung
kegiatan budidaya. Respon tersebut
dapat dilihat pada Tabel 3.1
Tabel 3.1. Pengaruh suhu air terhadap respon konsumsi pakan pada ikan
Suhu air (C) Respon konsumsi pakan
Mendekati 0
8 – 10
15
22
28 – 30
33
35
36 – 38
38 – 42
Kondisi kritis minimal
Tidak ada respon terhadap pemberian pakan
Pemberian pakan berkurang
50% optimum
Pemberian pakan optimum
50% optimum
Pemberian pakan berkurang
Tidak respon terhadap pemberian pakan
Kondisi kritis minimal
Sumber : Tucker and Hargreaves (2004)
3.2.1.5. Kecerahan dan kekeruhan
air
Kecerahan dan kekeruhan air dalam
suatu perairan dipengaruhi oleh
jumlah cahaya matahari yang masuk
kedalam perairan atau disebut juga
dengan intensitas cahaya matahari.
Cahaya matahari didalam air
berfungsi terutama untuk kegiatan
asimilasi fito/tanaman didalam air,.
Oleh karena itu daya tembus cahaya
kedalam air sangat menentukan
tingkat kesuburan air. Dengan
diketahuinya intensitas cahaya pada
berbagai kedalaman tertentu, kita
dapat mengetahui sampai
dimanakah masih ada kemungkinan
terjadinya proses asimilasi didalam
air.
Kecerahan merupakan ukuran
transparansi perairan dan
pengukuran cahaya sinar matahari
didalam air dapat dilakukan dengan
menggunakan lempengan/kepingan
Secchi disk. Satuan untuk nilai
kecerahan dari suatu perairan
dengan alat tersebut adalah satuan
meter. Jumlah cahaya yang diterima
oleh phytoplankton diperairan asli
bergantung pada intensitas cahaya
58
matahari yang masuk kedalam
permukaan air dan daya perambatan
cahaya didalam air. Masuknya
cahaya matahari kedalam air
dipengaruhi juga oleh kekeruhan air
(turbidity). Sedangkan kekeruhan
menggambarkan tentang sifat optik
yang ditentukan berdasarkan
banyaknya cahaya yang diserap dan
dipancarkan oleh bahan-bahan yang
terdapat didalam perairan. Definisi
yang sangat mudah adalah
kekeruhan merupakan banyaknya
zat yang tersuspensi pada suatu
perairan. Hal ini menyebabkan
hamburan dan absorbsi cahaya yang
datang sehingga kekeruhan
menyebabkan terhalangnya cahaya
yang menembus air. Faktor-faktor
kekeruhan air ditentukan oleh:
a. Benda-benda halus yang
disuspensikan (seperti lumpur
dsb)
b. Jasad-jasad renik yang
merupakan plankton
c. Warna air (yang antara lain
ditimbulkan oleh zat-zat koloid
berasal dari daun-daun
tumbuhan yang terektrak)
Faktor-faktor ini dapat menimbulkan
warna dalam air. Pengukuran
kekeruhan suatu perairan dapat
dilakukan dengan menggunakan alat
yang disebut dengan Jackson
Candler Turbidimeter dengan satuan
unit turbiditas setara dengan 1 mg/l
SiO2. Satu unit turbiditas Jackson
Candler Turbidimeter dinyatakan
dengan satuan 1 JTU (Jackson
Turbidity Unit).
Air yang dapat digunakan untuk
budidaya ikan selain harus jernih
tetapi tetap terdapat plankton. Air
yang sangat keruh tidak dapat
digunakan untuk kegiatan budidaya
ikan, karena air yang keruh dapat
menyebabkan :
a. Rendahnya kemampuan daya
ikat oksigen
b. Berkurangnya batas pandang
ikan
c. Selera makan ikan berkurang,
sehingga efisiensi pakan rendah
d. Ikan sulit bernafas karena
insangnya tertutup oleh partikelpartikel
lumpur
3.2.1.6. Salinitas
Salinitas adalah konsentrasi dari total
ion yang terdapat didalam perairan.
Pengertian salinitas yang sangat
mudah dipahami adalah jumlah
kadar garam yang terdapat pada
suatu perairan. Hal ini dikarenakan
salinitas ini merupakan gambaran
tentang padatan total didalam air
setelah semua karbonat dikonversi
menjadi oksida, semua bromida dan
iodida digantikan oleh chlorida dan
semua bahan organik telah
dioksidasi. Pengertian salinitas yang
lainnya adalah jumlah segala macam
garam yang terdapat dalam 1000 gr
air contoh. Garam-garam yang ada
di air payau atau air laut pada
umumnya adalah Na, Cl, NaCl,
MgSO4 yang menyebabkan rasa
pahit pada air laut, KNO3 dan lainlain.
Salinitas dapat dilakukan
pengukuran dengan menggunakan
alat yang disebut dengan
Refraktometer atau salinometer.
Satuan untuk pengukuran salinitas
adalah satuan gram per kilogram
(ppt) atau promil (o/oo). Nilai salinitas
untuk perairan tawar biasanya
berkisar antara 0–5 ppt, perairan
payau biasanya berkisar antara 6–29
59
ppt dan perairan laut berkisar antara
30–35 ppt.
3.2.2. Sifat Kimia
3.2.2.1. Oksigen
Semua makhluk hidup untuk hidup
sangat membutuhkan oksigen
sebagai faktor penting bagi
pernafasan. Ikan sebagai salah satu
jenis organisme air juga
membutuhkan oksigen agar proses
metabolisme dalam tubuhnya
berlangsung. Oksigen yang
dibutuhkan oleh ikan disebut dengan
oksigen terlarut. Oksigen terlarut
adalah oksigen dalam bentuk terlarut
didalam air karena ikan tidak dapat
mengambil oksigen dalam perairan
dari difusi langsung dengan udara.
Satuan pengukuran oksigen terlarut
adalah mg/l yang berarti jumlah mg/l
gas oksigen yang terlarut dalam air
atau dalam satuan internasional
dinyatakan ppm (part per million). Air
mengandung oksigen dalam jumlah
yang tertentu, tergantung dari kondisi
air itu sendiri, beberapa proses yang
menyebabkan masuknya oksigen ke
dalam air yaitu:
1. Diffusi oksigen dari udara ke
dalam air melalui permukannya,
yang terjadi karena adanya
gerakan molekul-molekul udara
yang tidak berurutan karena
terjadi benturan dengan molekul
air sehingga O2 terikat didalam
air. Proses diffusi ini akan selalu
terjadi bila pergerakan air yang
mampu mengguncang oksigen,
karena kandungan O2 didalam
udara jauh lebih banyak. Menurut
penelitian, air murni 1000 cc
pada suhu kamar mengandung 7
cc O2, sedangkan udara murni
suhu pada kamar mengundang
210 cc O2. Dari gambaran
tersebut, maka air relatif mudah
melepaskan O2 ke udara. Dari
imbangan tersebut di atas dapat
di tarik kesimpulan sebagai
berikut:
Tercapainya imbangan O2 di
air dan di udara, tergantung
dari jumlah molekul-molekul
zat (garam-garam) yang larut
di dalam air (dalam satuansatuan
tertentu), sebab
jumlah tersebut yang
menentukan kemungkinan
terbentuknya molekul-molekul
dan menentukan pula jumlah
banyaknya molekul-molekul
gas yang meninggalkan air
lagi. Air yang mengandung
garam-garam pada kadar O2
yang rendah saja sudah
dapat seimbang dengan
udara lebih cepat, bila di
bandingkan dengan air suling.
Kemungkinan bertubrukan
molekul air di tentukan oleh
suhu air. Makin tinggi suhu
air,makin rendah jumlah
oksigen yang dapat di
kandung/ di ikat oleh air.
Artinya; jika suhu air tinggi,
maka air itu dengan kadar
oksigen yang rendah saja
sudah dapat seimbang
dengan udara, sehingga
penambahan oksigen lebih
lanjut tidak akan
meningkatkan oksigen
terlarut dalam air. Dalam
kegiatan budidaya ikan sifat
tersebut penting artinya,
terutama dalam
pengangkutan ikan hidup,
pemeliharaan ikan di
60
akuarium, atau pemeliharaan
ikan secara tertutup pada
Recyle Sistem. Pada
pengangkutan ikan sebaiknya
dilakukan pada pagi/sore hari
waktu suhu udara masih
relatif rendah, sehingga
goncangan airnya yang
terjadi akan mampu
meningkatkan difusi 02
kedalam air. Pada
pemeliharaan ikan
diakuarium atau pada tempat
yang terbatas, pemberian
lampu, yang mengakibatkan
suhu air meningkat, akan
menurunkan kemampuan air
mengikat.
2. Diperairan umum, pemasukan
oksigen ke dalam air terjadi
karena air yang masuk sudah
mengandung oksigen, kecuali itu
dengan aliran air, mengakibatkan
gerakan air yang mampu
mendorong terjadinya proses
difusi oksigen dari udara ke
dalam air.
3. Hujan yang jatuh,secara tidak
langsung akan meningkatkan O2
di dalam air, pertama suhu air
akan turun, sehingga
kemampuan air mengikat oksigen
meningkat, selanjutnya bila
volume air bertambah dari
gerakan air, akibat jatuhnya air
hujan akan mampu
meningkatkan O2 di dalam air.
4. Proses Asimilasi tumbuhtumbuhan.
Tanaman air yang seluruh
batangnya ada didalam air di
waktu siang akan melakukan
proses asimilasi, dan akan
menambah O2 didalam air.
Sedangkan pada malam hari
tanaman tersebut menggunakan
O2 yang ada didalam air.
Pengambilan air O2 didalam air
disebabkan oleh:
Proses pernafasan binatang
dan tanaman air.
Proses pembongkaran
(menetralisasi) bahan-bahan
organik.
Dasar perairan yang bersifat
mereduksi, dasar demikian
hanya dapat di tumbuhi
bakteri yang anaerob saja,
yang dapat menimbulkan
hasil pembakaran.
Menurut Brown (1987)
peningkatan suhu 1o C akan
meningkatkan konsumsi oksigen
sekitar 10%. Hubungan antara
oksigen terlarut dan suhu dapat
dilihat pada Tabel 3.2. yang
menggambarkan bahwa semakin
tinggi suhu, kelarutan oksigen
semakin berkurang.
61
Tabel 3.2. Hubungan antara kadar oksigen terlarut jenuh dan suhu pada
tekanan udara 760 mm Hg (Cole, 1983)
Suhu (oC)
Kadar
Oksigen
terlarut
(mg/l)
Suhu (oC)
Kadar
Oksigen
terlarut
(mg/l)
Suhu (oC)
Kadar
Oksigen
terlarut
(mg/l)
0123456789
10
11
12
13
14,62
14,22
13,83
13,46
13,11
12,77
12,45
12,14
11,84
11,56
11,29
11,03
10,78
10,54
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
10,31
10,08
9,87
9,66
9,47
9,28
9,09
8,91
8,74
8,58
8,42
8,26
8,11
7,97
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
7,83
7,69
7,56
7,43
7,30
7,18
7,06
6,95
6,84
6,73
6,62
6,51
6,41
Kadar oksigen terlarut dalam suatu
wadah budidaya ikan sebaiknya
berkisar antara 7 – 9 ppm.
Konsentrasi oksigen terlarut ini
sangat menentukan dalam
akuakultur. Kadar oksigen terlarut
dalam wadah budidaya ikan dapat
ditentukan dengan dua cara yaitu
dengan cara titrasi atau dengan
menggunakan alat ukur yang disebut
dengan DO meter (Dissolved
Oxygen).
3.2.2.2. Karbondioksida
Karbondioksida merupakan salah
satu parameter kimia yang sangat
menentukan dalam kegiatan
budidaya ikan. Karbondioksida yang
dianalisis dalam kegiatan budidaya
adalah karbondioksida dalam bentuk
gas yang terkandung di dalam air.
Gas CO2 memegang peranan
sebagai unsur makanan bagi semua
tumbuhan yang mempunyai
chlorophil, baik tumbuh-tumbuhan
renik maupun tumbuhan tingkat
tinggi. Sumber gas CO2 didalam air
adalah hasil pernafasan oleh
binatang-binatang air dan tumbuhtumbuhan
serta pembakaran bahan
organik didalam air oleh jasad renik.
Bagian air yang banyak mengandung
CO2 adalah didasar perairan, karena
ditempat itu terjadi proses
pembakaran bahan organik yang
cukup banyak. Untuk kegiatan
asimilasi bagi tumbuh-tumbuhan,
jumlah CO2 harus cukup, tetapi bila
jumlah CO2 melampaui batas akan
kritis bagi kehidupan binatang62
binatang air. Pengaruh CO2 yang
terlalu banyak tidak saja terhadap
perubahan pH air, tetapi juga bersifat
racun. Dengan meningkatnya CO2,
maka O2 dalam air juga ikut menurun,
sehingga pada level tertentu akan
berbahaya bagi kehidupan binatang
air. Kadar CO2 yang bebas didalam
air tidak boleh mencapai batas yang
mematikan (lethal), pada kadar 20
ppm sudah merupakan racun bagi
ikan dan mematikan ikan jika
kelarutan oksigen didalam air kurang
dari 5 ppm (5 mg/l).
CO2 yang digunakan oleh organisme
dalam air, mula-mula adalah CO2
bebas, bila yang bebas sudah habis,
air akan melepaskan CO2 yang
terikat dalam bentuk Calsium
bikarbonat maupun Magnesium
bikarbonat. Air yang banyak
mengandung persediaan Calsium
atau Magnesium bikarbonat dalam
jumlah yang cukup, mempunyai
kapasitas produksi yang baik.
3.2.2.3. pH Air
pH (singkatan dari “ puisance negatif
de H “ ), yaitu logaritma negatif dari
kepekatan ion-ion H yang terlepas
dalam suatu perairan dan
mempunyai pengaruh besar
terhadap kehidupan organisme
perairan, sehingga pH perairan
dipakai sebagai salah satu untuk
menyatakan baik buruknya sesuatu
perairan.
Pada perairan perkolaman pH air
mempunyai arti yang cukup penting
untuk mendeteksi potensi
produktifitas kolam. Air yang agak
basa, dapat mendorong proses
pembongkaran bahan organik dalam
air menjadi mineral-mineral yang
dapat diasimilasikan oleh tumbuhtumbuhan
(garam amonia dan nitrat).
Pada perairan yang tidak
mengandung bahan organik dengan
cukup, maka mineral dalam air tidak
akan ditemukan. Andaikata kedalam
kolam itu kemudian kita bubuhkan
bahan organik seperti pupuk
kandang, pupuk hijau dsb dengan
cukup, tetapi kurang mengandung
garam-garam bikarbonat yang dapat
melepaskan kationnya, maka
mineral-mineral yang mungkin
terlepas juga tidak akan lama berada
didalam air itu. Untuk menciptakan
lingkungan air yang bagus, pH air itu
sendiri harus mantap dulu (tidak
banyak terjadi pergoncangan pH air).
Ikan rawa seperti sepat siam
(Tricogaster pectoralis), sepat jawa
(Tricogaster tericopterus ) dan ikan
gabus dapat hidup pada lingkungan
pH air 4-9, untuk ikan lunjar kesan
pH 5-8 ,ikan karper (Cyprinus carpio)
dan gurami, tidak dapat hidup pada
pH 4-6, tapi pH idealnya 7,2.
Klasifikasi nilai pH dapat
dikelompokkan menjadi tiga yaitu :
Netral : pH = 7
Alkalis (basa) : 7 < pH < 14
Asam : 0 < pH < 7
Derajat keasaman suatu kolam ikan
sangat dipengaruhi oleh keadaan
tanahnya yang dapat menentukan
kesuburan suatu perairan. Nilai pH
asam tidak baik untuk budidaya ikan
dimana produksi ikan dalam suatu
perairan akan rendah. Pada pH
netral sangat baik untuk kegiatan
budidaya ikan, biasanya berkisar
antara 7 – 8, sedangkan pada pH
basa juga tidak baik untuk kegiatan
budidaya. Pengaruh pH pada
perairan dapat berakibat terhadap
63
komunitas biologi perairan, untuk jelasnya dapat dilihat pada Tabel 3.3.
Tabel 3.3. Pengaruh pH terhadap komunitas biologi perairan (Effendi, 2000)
Nilai pH Pengaruh Umum
6,0 – 6,5
Keanekaragaman plankton dan benthos mengalami
sedikit penurunan
Kelimpahan total, biomassa dan produktivitas tak
mengalami perubahan
5,5 – 6,0
Penurunan nilai keanekaragaman plankton dan
benthos semakin nampak
Kelimpahan total, biomassa dan produktivitas masih
belum mengalami perubahan berarti
Algae hijau berfilamen mulai nampak pada zona
literal
5,0 – 5,5
Penurunan keanekaragaman dan komposisi jenis
plankton, perifiton dan benthos semakin besar
Penurunan kelimpahan total dan biomassa
zooplankton dan benthos
Algae hijau berfilamen semakin banyak
Proses nitrifikasi terhambat
4,5 – 5,0
Penurunan keanekaragaman dan komposisi jenis
plankton, perifiton dan benthos semakin besar
Penurunan kelimpahan total dan biomassa
zooplankton dan benthos
Algae hijau berfilamen semakin banyak
Proses nitrifikasi terhambat
Air kolam yang pH nya bergoncang
antara 4,5-6,5 masih dapat diperbaiki
dengan menambahkan kapur dalam
jumlah yang cukup. Agar pH nya
dapat dinaikan menjadi 8,0 supaya
pengaruh OH yang rendah bisa
ditiadakan. Pada umumnya pada
pagi hari, waktu air banyak
mengandung CO2, pH air rendah,
pada waktu sore hari air kehabisan
CO2 untuk asimilasi pH air menjadi
tinggi. Kondisi pH ini akan sangat
penting artinya pada pengangkutan
ikan hidup secara tertutup dengan
pemberian gas O2. Pada
pengangkutan ikan hidup secara
terbuka, kelebihan CO2 hasil
pernafasan ikan yang diangkut tidak
jadi masalah, sebab CO2 itu
senantiasa masih berkesempatan
menjadi seimbang dengan udara
terbuka diatasnya, sehingga
penurunan pH air tidak akan terlalu
buruk bagi ikan. Pada pengangkutan
tertutup upaya mencegah
penurunan pH air dapat ditambahkan
larutan buffer seperti Na2HPO4 ,
sehingga pH yang sedianya akan
turun dapat dicegah. Dengan
demikian waktu pengangkutan ikan
dapat diupayakan lebih panjang.
Metode penentuan pH air dapat
64
menggunakan alat pH meter atau
dengan menggunakan kertas
indikator pH.
Diperairan asli, pergoncangan pH
dari yang tinggi ke pH rendah dapat
disanggah oleh unsur calsium yang
terdapat dalam air asli itu sendiri.
Apabila suatu perairan kadar calsium
dalam bentuk Ca(HCO3)2 cukup
tinggi, maka daya menyanggah air
terhadap pergoncangan pH menjadi
besar.
Unsur Ca didalam air membentuk
dua macam senyawa yaitu:
1. Senyawa kalsium carbonat
(CaCO3) yang tidak dapat larut
2. Senyawa kalsium bicarbonat atau
kalsium hidrogen karbonat
(Ca(HCO3)2) yang dapat larut
dalam air.
Faktor yang menentukan besar
kecilnya kemampuan penyanggah
pergoncangan asam (pH) adalah
banyaknya Ca (HCO3)2 di dalam air.
Proses terjadinya penyanggahan
asam didalam air adalah sbb:
Kalau dalam suatu perairan, CO2
terambil, maka mula-mula pH air
akan naik, akan tetapi pada saat
yang bersamaan Ca(HCO3)2 yang
larut dalam air itu akan pecah
menurut persamaan sebagai berikut:
Ca (HCO3)2 Ca CO3 + H2O + CO2
Sehingga dalam air itu terjadi
pembentukan CO2 yang baru,
selanjutnya pH air mempunyai
kecenderungan untuk turun lagi.
Berdasarkan proses tersebut diatas,
kadar Ca yang terkandung dalam air
menjadi berkurang. Kalcium
bikarbonat yang terbentuk pada
pemecahan itu akan mengendap
berupa endapan putih didasar
perairan, pada daun-daun tanaman
air dsb. Sebaliknya, apabila
terbentuk gas CO2 yang banyak
didalam air maka mula-mula pH air
mempunyai kecenderungan untuk
turun akan tetapi dengan segera gas
CO2 yang berkeliaran bebas itu akan
diikat oleh CaC03 yang sulit larut
dalam air tadi. Menurut persamaan
reaksi:
CaCO + CO2 + H2O Ca (HCO3)2.
Sehingga jumlah CO2 bebasnya
akan berkurang, akibatnya pH air
mempunyai kecenderungan untuk
naik, sehingga kecenderungan pH
untuk turun dapat disanggah.
Proses imbangan pH dapat dituliskan
dengan reaksi sebagai berikut :
Ca (HCO3)2 CaCO3 + CO2 + H2O
Jadi jumlah Ca (HCO3 )2 dalam air
merupakan salah satu unsur dari
baik buruknya perairan sebagai
lingkungan hidup.
3.2.2.4. Bahan Organik dan garam
mineral dalam air
Mineral merupakan salah satu unsur
kimia yang selalu ada dalam suatu
perairan, beberapa jenis mineral
antara lain adalah Kalsium (Ca),
Pospor (P), Magnesium (Mg),
Potassium (K), Sodium (Na), Sulphur
(S), zat besi (Fe), Tembaga (Cu),
Mangan (Mn), Seng (Zn), Florin (F),
Yodium (I) dan Nikel (Ni). Diperairan
umum mineral yang diperlukan oleh
phytoplakton senantiasa diperoleh
65
dari pembongkaran bahan-bahan
organik sisa dari tumbuhan dan
binatang yang sudah mati. Di alam
mineral tersebut berasal dari air yang
masuk, atau adanya penambahan
pupuk buatan. Pembongkaran bahan
organik dilakukan oleh jasad renik
yang terdapat didalam air. Pada
umumnya jasad renik ini
menghendaki perairan yang pHnya 7
sedikit mendekati basa.
Pembongkaran bahan organik ada
yang dilakukan secara anaerob
(tidak memerlukan oksigen). Proses
pembongkaran itu juga dipengaruhi
oleh suhu air.
Bahan organik yang larut didalam air
belum dapat dimanfaatkan oleh
binatang air secara langsung.
Bahan-bahan organik yang
mengendap di dasar perairan yang
dangkal dapat dimakan secara
langsung oleh berbagai macam
binatang benthos (binatang yaang
hidup didasar perairan) seperti siput
vivipar javanica, cacing tubifex, larva
chironomaus dan sebagainya.
Bagian-bagian dari pada lumpur
organik demikian yang tidak dapat
dicernakan, menyisa sebagai detritus
di dasar perairan. Jumlah bahan
organik yang terdapat dalam suatu
perairan dapat digunakan sebagai
salah satu indikator banyak tidaknya
mineral yang dapat dibongkar kelak.
Bila suasana perairan anaerob,
maka protein-protein yang menang
mengandung belerang dapat
dibongkar oleh bakteri anaerob
(diantaranya adalah Bakterium
vulgare). Hasil pembongkaran
tersebut adalah gas hidrogen sulfida
(H2S) dan ditandai bau busuk, air
berwarna kehitaman. Gas itu
merupakan limiting factor/ faktor
pembatas bagi kesuburan perairan.
Kandungan H2S - 6 mg/ l sudah
dapat membunuh ikan Cyprinus
carpio dalam beberapa jam saja.
Untuk mencegah timbulnya H2S
dalam kolam biasanya kolam yang
akan digunakan untuk budidaya ikan
harus dilakukan pengolahan tanah
dasar dan pengeringan. Jenis gas
beracun lainnya yang berasal dari
pembongkaran bahan organik adalah
gas metana.
Gas Metana ( CH4 ) adalah gas yang
bersifat mereduksi dan dikenal
sebagai gas rawa. Metana itu timbul
pada proses pembongkaran hidrat
arang dari bahan organik yang
tertimbun dalam perairan. Hidrat
arang dalam suasana anaerob mulamula
dibongkar menjadi asam-asam
karboksilat. Bila suasana air tetap
anaerob maka asam-asam
karboksilat direduksikan lebih lanjut
menjadi Metana. Bila gas Metana ini
berhubungan dengan O2 dalam air
sekelilingnya, maka air itu akan
berkurang O2, dan sebagai hasilnya
timbullah gas CO2. Pembongkaran
dalam suasana anaerob juga dapat
dilakukan oleh ragi (Saccharomyces),
hasil pembongkaran itu adalah
alkohol dan lebih lanjut lagi menjadi
asam cuka (asam asetat ) oleh
bakterium aceti. Kandungan bahan
organik dalam air sangat sulit untuk
ditentukan yang biasa disebut
dengan kandungan total bahan
organik (Total Organic Matter/TOM).
3.2.2.5. Nitrogen
66
Nitrogen didalam perairan dapat
berupa nitrogen organik dan nitrogen
anorganik. Nitrogen anorganik dapat
berupa ammonia (NH3), ammonium
(NH4), Nitrit (NO2), Nitrat (NO3) dan
molekul Nitrogen (N2) dalam bentuk
gas. Sedangkan nitrogen organik
adalah nitrogen yang berasal bahan
berupa protein, asam amino dan
urea. Bahan organik yang berasal
dari binatang yang telah mati akan
mengalami pembusukan mineral
yang terlepas dan utama adalah
garam-garam nitrogen (berasal dari
asam amino penyusun protein).
Proses pembusukan tadi mula-mula
terbentuk amoniak (NH3) sebagai
hasil perombakan asam amino oleh
berbagai jenis bakteri aerob dan
anaerob. Pembongkaran itu akan
menghasilkan suatu gas CO2 bebas,
menurut persamaan reaksinya
adalah:
R. CH.NH2. COOH +O2
R. COOH + NH3 + CO2
Berdasarkan reaksi kimia tersebut
dapat diperlihatkan bahwa kolam
yang dipupuk dengan pupuk
kandang/hijau yang masih baru
dalam jumlah banyak dan langsung
ditebarkan benih ikan kedalam kolam,
biasanya akan terjadi mortalitas yang
tinggi pada ikan karena kebanyakan
gas CO2 . Bila keadaan perairan
semakin buruk, sehingga O2 dalam
air sampai habis, maka secara
perlahan proses pembongkaran
bahan organik akan diambil oleh
bakteri lain yang terkenal ialah
Nitrosomonas menjadi senyawa nitrit.
Reaksi tersebut sebagai berikut:
2NH3 + 3O2 2HNO2 + H2O
Bila perairan tersebut cukup
mengandung kation-kation maka
asam nitrit yang terbentuk itu dengan
segera dapat dirubah menjadi
garam-garam nitrit, oleh bakteri
Nitrobacter atau Nitrosomonas,
garam-garam nitrit itu selanjutnya
dikerjakan lebih lanjut menjadi
garam-garam nitrit, reaksinya
sebagai berikut:
2NaNO2+O2 2NaNO3
Garam-garam nitrit itu penting
sebagai mineral yang diasimilasikan
oleh tumbuh-tumbuhan hijau untuk
menyusun asam amino kembali
dalam tubuhnya, untuk menbentuk
protoplasma itu selanjutnya
tergantung pada nitrit, phitoplankton
itu selanjutnya menjadi bahan
makanan bagi organisme yang lebih
tinggi. Nitrit tersebut pada suatu saat
dapat dibongkar lebih lanjut oleh
bakteri denitrifikasi (yang terkenal
yaitu Micrococcus denitrifikan),
bakterium nitroxus menjadi nitrogennitrogen
bebas, reaksinya sebagai
berikut:
5 C6H12O0 + 24 HNO3
24 H2 CO3 + 6 CO3 +18 H2O +12 N2
Agar supaya phitoplankton dapat
tumbuh dan berkembang biak
dengan subur dalam suatu perairan,
paling sedikit dalam air itu harus
tersedia 4 mg/l nitrogen (yang
diperhitungkan dari kadar N dalam
bentuk nitrat), bersama dengan 1
mg/l P dan 1 mg/l K.
Bila kadar NH3 hasil pembongkaran
bahan organik di dalam air terdapat
dalam jumlah besar, yang
disebabkan proses pembongkaran
67
protein terhenti sehingga tidak
terbentuk nitrat sebagai hasil akhir,
maka air tersebut disebut “sedang
mengalami pengotoran (Pollution)”.
Kadar N dalam bentuk NH3 dipakai
juga sebagai indikator untuk
menyatakan derajat polusi. Kadar 0,5
mg/l merupakan batas maksimum
yang lazim dianggap sebagai batas
untuk menyatakan bahan air itu
“unpolluted”. Ikan masih dapat hidup
pada air yang mengandung N 2 mg/l.
Batas letal akan tercapai pada kadar
5 mg/l. Di perairan kolam nitrogen
dalam bentuk amonia sangat
beracun bagi ikan budidaya, tetapi
jika dalam bentuk amonium tidak
begitu berbahaya pada media
akuakultur. Amonia yang ada dalam
wadah budidaya dapat diukur dan
biasanya dalam bentuk ammonia
total. Menurut Boyd (1988), terdapat
hubungan antara kadar ammonia
total dengan ammonia bebas pada
berbagai pH dan suhu yang dapat
dilihat pada Tabel 3.4. Pada tabel
tersebut memperlihatkan daya racun
ammonia yang akan meningkat
dengan meningkatnya kadar pH dan
suhu terhadap organisme perairan
termasuk ikan.
Tabel 3.4. Persentase (%) ammonia bebas (NH3) terhadap ammonia total
(Boyd, 1988)
pH 26oC 28oC 30oC 32oC
7,0
7,2
7,4
7,6
7,8
8,0
8,2
8,4
8,6
8,8
9,0
9,2
9,4
9,6
9,8
10,0
10,2
0,60
0,95
1,50
2,35
3,68
5,71
8,75
13,20
19,42
27,64
37,71
48,96
60,33
70,67
79,25
85,82
90,56
0,70
1,10
1,73
2,72
4,24
6,55
10,00
14,98
21,83
30,68
41,23
52,65
63,79
73,63
81,57
87,52
91,75
0,81
1,27
2,00
3,13
4,88
7,52
11,41
16,96
24,45
33,90
44,84
56,30
67,12
76,39
83,68
89,05
92,80
0,95
1,50
2,36
3,69
5,72
8,77
13,22
19,46
27,68
37,76
49,02
60,38
70,72
79,29
85,85
90,58
93,84
Kadar amonia yang dapat
mematikan ikan budidaya jika dalam
wadah budidaya mengandung 0,1 –
0,3 ppm. Oleh karena itu sebaiknya
kadar amonia didalam wadah
68
budidaya ikan tidak lebih dari 0,2
mg/l (ppm). Kadar amonia yang
tinggi ini diakibatkan adanya
pencemaran bahan organik yang
berasal dari limbah domestik, industri
dan limpasan pupuk pertanian.
3.2.2.6. Alkalinitas dan
kesadahan
Alkalinitas menggambarkan jumlah
basa (alkali) yang terkandung dalam
air, sedangkan alkalinitas total
adalah konsentrasi total dari basa
yang terkandung dalam air yang
dinyatakan dalam ppm setara
dengan kalsium karbonat. Total
alkalinitas biasanya selalu dikaitkan
dengan pH karena pH air ini akan
menunjukkan apakah suatu perairan
itu asam atau basa. Alkalinitas juga
disebut dengan Daya Menggabung
Asam (DMA) atau buffer/penyangga
suatu perairan yang dapat
menunjukkan kesuburan suatu
perairan tersebut. Sedangkan
kesadahan menggambarkan
kandungan Ca, Mg dan ion-ion yang
terlarut dalam air. Berdasarkan
Effendi (2000) Nilai alkalinitas
berkaitan jenis perairan yaitu
perairan dengan nilai alkalinitas
kurang dari 40 mg/l CaCO3 disebut
sebagai perairan lunak (Soft water),
sedangkan perairan yang nilai
alkalinatasnya lebih dari 40 mg/l
CaCO3 disebut sebagai perairan
keras (Hard water). Perairan dengan
nilai alkalinitas yang tinggi lebih
produkstif daripada dengan perairan
yang nilai alkalinitasnya rendah.
Menurut Schimittou (1991), perairan
dengan alkalinitas yang rendah
(misal kurang dari 15 mg/l) tidak
diinginkan dalam akuakultur karena :
Perairan tersebut sangat asam
sehingga performansi produksi
ikan (Kesehatan umum dan
kelangsungan hidup,
pertumbuhan, hasil dan efisiensi
pakan) dipengaruhi secara
negatif.
Produksi phytoplankton dibatasi
oleh ketidakcukupan CO2 dan
HCO3 yang cenderung
menyebabkan rendahnya
kelarutan oksigen dan bisa
mengakibatkan kematian
plankton.
Pada tanah-tanah asam dapat
menyerap fosfor yang akan
mereduksi efek pemupukan pada
tingkat produksi akuakultur
sistem ekstensif, tingkat
pemupukan ekstensif dan
pemupukan intensif.
Fluktuasi pada pH dan faktorfaktor
yang berhubungan dapat
menyebabkan ketidakstabilan
mutu air yang dapat
menyebabkan ikan stres.
Pada tingkat pH yang ekstrem
dapat menyebabkan kondisikondisi
stres masam pada pagi
hari dan kondisi stres alkalin
pada senja hari.
Untuk meningkatkan kandungan
alkalinitas total pada kolam
pemeliharaan ikan dapat digunakan
kapur pertanian. Oleh karena itu
dalam kolam pemeliharaan ikan
sebelum digunakan dilakukan proses
pengapuran dengan menggunakan
beberapa jenis batu kapur yang
disesuaikan dengan kualitas tanah
dasar kolam pemeliharaan.
69
3.2.3. Sifat Biologi
Parameter biologi dari kualitas air
yang biasa dilakukan pengukuran
untuk kegiatan budidaya ikan adalah
tentang kelimpahan plankton,
benthos dan perifiton sebagai
organisme air yang hidup di perairan
dan dapat digunakan sebagai pakan
alami bagi ikan budidaya. Kajian
secara detail dari ketiga aspek
tersebut akan dibahas pada Bab 6.
Kelimpahan plankton yang terdiri dari
phytoplankton dan zooplankton
sangat diperlukan untuk mengetahui
kesuburan suatu perairan yang akan
dipergunakan untuk kegiatan
budidaya. Plankton sebagai
organisme perairan tingkat rendah
yang melayang-layang di air dalam
waktu yang relatif lama mengikuti
pergerakan air. Plankton pada
umumnya sangat peka terhadap
perubahan lingkungan hidupnya
(suhu, pH, salinitas, gerakan air,
cahaya matahari dll) baik untuk
mempercepat perkembangan atau
yang mematikan.
Berdasarkan ukurannya, plankton
dapat dibedakan sebagai berikut :
1. Macroplankton (masih dapat
dilihat dengan mata telanjang/
biasa/tanpa pertolongan
mikroskop).
2. Netplankton atau mesoplankton
(yang masih dapat disaring oleh
plankton net yang mata netnya
0,03 - 0,04 mm).
3. Nannoplankton atau
microplankton (dapat lolos
dengan plankton net diatas).
Berdasarkan tempat hidupnya dan
daerah penyebarannya, plankton
dapat merupakan :
Limnoplankton (plankton air
tawar/danau)
Haliplankton (hidup dalam air
asin)
Hypalmyroplankton (khusus
hidup di air payau)
Heleoplankton (khusus hidup
dalam kolam-kolam)
Petamoplankton atau
rheoplankton (hidup dalam air
mengalir, sungai)
3.3. Pengukuran Kualitas
air Budidaya Ikan
Parameter kualitas air yang dapat
digunakan untuk keperluan
perikanan dan peternakan di
Indonesia sudah dibuat Peraturan
Pemerintah Republik Indonesia
Nomor 20 Tahun 1990, tanggal 5
Juni 1990 tentang Pengendalian
Pencemaran Air. Dalam peraturan
tersebut dibuat kriteria kualitas air
berdasarkan golongan yaitu
Golongan A adalah kriteria kualitas
air yang dapat digunakan sebagai air
minum secara langsung tanpa
pengolahan terlebih dahulu,
Golongan B adalah kriteria kualitas
air yang dapat digunakan sebagai air
baku air minum, Golongan C adalah
kriteria kualitas air yang dapat
digunakan untuk keperluan
Perikanan dan Peternakan,
Golongan D adalah kriteria kualitas
air yang dapat digunakan untuk
keperluan pertanian, dapat
dimanfaatkan untuk usaha perkotaan,
industri dan pembangkit listrik tenaga
air. Berdasarkan peraturan tersebut
70
kriteria kualitas air untuk perikanan dapat dilihat pada Tabel 3.5.
Tabel 3.5. Kriteria kualitas air Golongan C
No. Parameter Satuan Kadar
maksimum Ket.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
16.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
1.
2.
Kimia Anorganik
Air raksa
Ammoniak bebas
Arsen
Fluorida
Kadmium
Klorin bebas
Kromium, valensi 6
Nitrit, sebagai N
Oksigen terlarut (DO)
pH
Selenium
Seng
Sianida
Sulfida sebagai H2S
Tembaga
Timbal
Kimia organik
BHC
DDT
Endrin
Fenol
Minyak dan lemak
Organofosfat dan karbonat
Senyawa aktif biru metilen
(Surfaktan)
Radioaktivitas
Aktivitas Alfa (Gross Alpha Activity)
Aktivitas beta (Gross Beta Activity)
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
-
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
mg/l
Bq/l
Bq/l
0.002
0,02
1
1,5
0,01
0,003
0,05
0,06
-
6 – 9
0,05
0,02
0,02
0,002
0,02
0,03
0,21
0,002
0,004
0,001
1
0,1
0,2
0,1
1,0
> 3
Keterangan : Bq : Bequerel
Berdasarkan Tabel 3.6 diatas
tersebut jika akan melakukan
kegiatan budidaya ikan maka harus
dilakukan pengukuran beberapa
parameter kualitas air pada air yang
akan digunakan untuk budidaya.
71
Parameter kualitas air itu dapat
dilakukan pengukuran dengan
menggunakan beberapa peralatan
pengukuran. Untuk lebih jelasnya
dapat dilihat pada Tabel 3.6.
Tabel 3.6. Parameter kualitas air untuk budidaya ikan dan peralatan
pengukuran yang dapat digunakan.
No. Parameter Nilai kisaran untuk
Budidaya Ikan Peralatan Pengukuran
1.
2.
3.
4.
5.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
1.
2.
3.
Aspek Fisik
Suhu
Kecerahan
Kekeruhan
Salinitas
Debit air
Aspek Kimia
Oksigen terlarut
Karbondioksida
pH
Alkalinitas
Kesadahan
Ammonia
H2S
Nitrit
Nitrat
Phosphat
Aspek Biologi
Kelimpahan Plankton
Kelimpahan Benthos
Kelimpahan Perifiton
20 – 30 oC
> 10 cm
25 – 400 JTU
Air tawar 0 – 5 o/oo
Air payau 6 – 29 o/oo
Air tawar 30 – 35 o/oo
Air deras 50 l/dt
Air tenang 0,5 – 5 l/dt
5 – 6 ppm
Max 25 ppm
6,5 – 8
50 – 500 ppm CaCO3
3 – 15 dH
< 1,5 ppm
< 0,1 ppm
< 0,2 ppm
0 – 1,5 ppm
< 0,02 ppm
Sesuai kebutuhan
Termometer
Secchi Disc
Turbiditymeter
Salinometer/
Refraktometer
Current meter
DO meter/Metode Winkler
CO meter/Metode Titrasi
pH meter/Kertas Lakmus
dH meter
Spektrofotometer
Spektrofotometer
Spektrofotometer
Spektrofotometer
Spektrofotometer
Planktonnet/
Haemocytometer
Ekman Dredge
Peralatan-peralatan yang dapat
digunakan untuk mengukur
parameter kualitas air dapat dilihat
pada Gambar . 3.1 sampai dengan
Gambar 3.12.
72
Gambar 3.1. Termometer Gambar 3.2. Secchi disc
Gambar 3.3. Salinometer Gambar 3.4. Refraktometer
Gambar 3.5. Flow meter Gambar 3.6. DO meter
73
Gambar 3.7. pH meter Gambar 3.8. Kertas lakmus
Gambar 3.9. Planktonnet Gambar 3.10. Haemocytometer
Gambar 3.11 Ekman dredge Gambar 3.12. Spektrofotometer
74
75
BAB IV. PENGEMBANGBIAKAN IKAN
Pengembangbiakan ikan merupakan
salah satu kegiatan dari
proses budidaya ikan. Ikan yang
akan dibudidayakan harus dapat
tumbuh dan berkembang biak agar
kontinuitas produksi budidaya dapat
berkelanjutan. Dalam bab ini akan
dibahas beberapa materi yang terkait
dalam proses pengembangbiakan
ikan antara lain adalah seleksi induk,
pemijahan, penetasan telur, pemeliharaan
larva dan benih ikan,
pembesaran ikan dan pemanenan.
4.1. SELEKSI INDUK
Seleksi induk merupakan tahap awal
dalam kegiatan budidaya ikan yang
sangat menentukan keberhasilan
produksi. Dengan melakukan seleksi
induk yang benar akan diperoleh
induk yang sesuai dengan kebutuhan
sehingga produktivitas usaha
budidaya ikan optimal. Seleksi induk
ikan budidaya dapat dilakukan
secara mudah dengan
memperhatikan karakter fenotipenya
atau dengan melakukan program
breeding untuk meningkatkan nilai
pemuliabiakan ikan budidaya.
Induk ikan yang unggul akan
menghasilkan benih ikan yang
unggul. Di Indonesia saat ini belum
ada tempat sebagai pusat induk ikan
yang menjamin keunggulan setiap
jenis ikan. Induk ikan yang unggul
pada setiap kegiatan usaha budidaya
ikan dapat berasal dari hasil
budidaya atau menangkap ikan di
alam. Karakteristik induk yang
unggul untuk setiap jenis ikan sangat
berbeda. Hal-hal yang sangat
penting untuk diperhatikan oleh para
pembudidaya ikan dalam melakukan
seleksi induk agar tidak terjadi
penurunan mutu induk antara lain
adalah :
Mengetahui asal usul induk
Melakukan pencatatan data
tentang umur induk, masa
reproduksi dan waktu pertama
kali dilakukan pemijahan sampai
usia produktif.
Melakukan seleksi induk
berdasarkan kaidah genetik
Melakukan pemeliharaan calon
induk sesuai dengan proses
budidaya sehingga kebutuhan
nutrisi induk terpenuhi.
Mengurangi kemungkinan
perkawinan sedarah
Untuk meningkatkan mutu induk
yang akan digunakan dalam proses
budidaya maka induk yang akan
digunakan harus dilakukan seleksi.
Seleksi ikan bertujuan untuk
memperbaiki genetik dari induk ikan
yang akan digunakan. Oleh karena
itu dengan melakukan seleksi ikan
yang benar akan dapat memperbaiki
genetik ikan tersebut sehingga dapat
melakukan pemuliaan ikan. Tujuan
76
dari pemuliaan ikan ini adalah
menghasilkan benih yang unggul
dimana benih yang unggul tersebut
diperoleh dari induk ikan hasil seleksi
agar dapat meningkatkan
produktivitas.
Produktivitas dalam budidaya ikan
dapat ditingkatkan dengan beberapa
cara yaitu :
1. Ekstensifikasi yaitu meningkatkan
produktivitas hasil
budidaya dengan memperluas
lahan budidaya.
2. Intensifikasi yaitu meningkatkan
produktivitas hasil dengan
meningkatkan hasil persatuan
luas dengan melakukan
manipulasi terhadap faktor
internal dan eksternal.
Dengan bertambahnya jumlah
penduduk sepanjang tahun dan
jumlah lahan budidaya yang tidak
akan bertambah jumlahnya, maka
untuk meningkatkan produktivitas
budidaya masa yang akan datang
lebih baik menerapkan budidaya ikan
yang intensif dengan memperhatikan
aspek ramah lingkungan. Program
intensifikasi dalam bidang budidaya
ikan dapat dilakukan antara lain
adalah :
1. Rekayasa faktor eksternal yaitu
lingkungan hidup ikan dan pakan,
contoh yang sudah dapat
diaplikasikan adalah budidaya
ikan pada kolam air deras dan
membuat pakan ikan ramah
lingkungan.
2. Rekayasa faktor internal yaitu
melakukan rekayasa terhadap
genetik ikan pada level gen
misalnya transgenik, level
kromosom misalnya
Gynogenesis, Androgenesis,
Poliploidisasi, level sel misalnya
dengan melakukan transplantasi
sel.
3. Rekayasa faktor eksternal dan
internal yaitu menggabungkan
antara kedua rekayasa eksternal
dan internal.
Oleh karena itu agar dapat
memperoleh produktivitas yang tinggi
dalam budidaya ikan harus dilakukan
seleksi terhadap ikan yang akan
digunakan. Seleksi menurut Tave
(1995) adalah program breeding
yang memanfaatkan phenotipic
variance (keragaman fenotipe) yang
diteruskan dari tetua kepada
keturunannya. Keragaman fenotipe
merupakan penjumlahan dari
keragaman genetik, keragaman
lingkungan dan interaksi antara
variasi lingkungan dan genetik.
Seleksi merupakan aplikasi genetik
dimana informasi genetik dapat
digunakan untuk melakukan seleksi.
Seleksi ikan yang paling mudah
dilakukan oleh para pembudidaya
ikan adalah melakukan seleksi
fenotipe dibandingkan dengan
seleksi genotipe. Seleksi fenotipe
dapat dikelompokkan menjadi dua
yaitu seleksi fenotipe kualitatif dan
seleksi fenotipe kuantitatif. Menurut
Tave (1986), seleksi fenotipe
kualitatif adalah seleksi ikan
berdasarkan sifat kualitatif seperti
misalnya warna tubuh, tipe sirip, pola
sisik ataupun bentuk tubuh dan
bentuk punggung dan sebagainya
yang diinginkan. Fenotipe kualitatif
ini merupakan sifat yang tidak dapat
diukur tetapi dapat dibedakan dan
dikelompokkan secara tegas. Sifat ini
dikendalikan oleh satu atau
beberapa gen dan sedikit atau tidak
dipengaruhi oleh faktor lingkungan.
77
Sedangkan seleksi fenotipe
kuantitatif adalah seleksi terhadap
penampakan ikan atau sifat yang
dapat diukur, dikendalikan oleh
banyak pasang gen dan dipengaruhi
oleh lingkungan. Adapun ciri-ciri atau
parameter yang dapat diukur antara
lain adalah panjang tubuh, bobot,
persentase daging, daya hidup,
kandungan lemak, protein,
fekunditas dan lain sebagainya.
Fenotipe adalah bentuk luar atau
bagaimana kenyataannya karakter
yang dikandung oleh suatu individu
atau fenotipe adalah setiap
karakteristik yang dapat diukur atau
sifat nyata yang dipunyai oleh
organisme. Fenotipe merupakan
hasil interaksi antara genotipe dan
lingkungan serta interaksi antara
genotipe dan lingkungan serta
merupakan bentuk luar atau sifatsifat
yang tampak. Menurut Yatim
(1996), genotipe menentukan
karakter sedangkan lingkungan
menetukan sampai dimana tercapai
potensi itu. Fenotipe tidak bisa
melewati kemampuan atau potensi
genotipe. Yang dimaksud dengan
karakter itu adalah sifat fisik dan
psikis bagian-bagian tubuh atau
jaringan. Karakter diatur oleh banyak
macam gen, atau satu gen saja.
Berhubung dengan banyaknya gen
yang menumbuhkan karakter maka
dibuat dua kelompok karakter yaitu
karakter kualitatif dan karakter
kuantitatif. Karakter kualitatif adalah
karakter yang dapat dilihat ada atau
tidaknya suatu karakter. Karakter ini
tidak dapat diukur atau dibuat
gradasi (diskontinyu). Sedangkan
karakter kuantitatif adalah karakter
yang dapat diukur nilai atau
derajatnya, sehingga ada urutan
gradasi dari yang rendah sampai
yang tinggi (kontinu). Karakter
kuanlitatif ditentukan ole satu atau
dua gen saja sedangkan karakter
kuantitatif disebabkan oleh banyak
gen (tiga atau lebih). Dengan
melakukan seleksi maka akan
menghasilkan suatu karakter yang
mempunyai nilai ekonomis penting
dan karakter fenotipe yang terbaik
sesuai dengan keinginan para
pembudidaya.
Untuk mendapatkan induk ikan yang
unggul dilakukan program seleksi
dengan menerapkan beberapa
program pengembangbiakan antara
lain dengan kegiatan selective
breeding, hibridisasi/outbreeding/
crossbreeding, inbreeding, monoseks/
seks reversal atau kombinasi
beberapa program breeding. Dalam
bab ini akan dibahas semua program
breeding tersebut sehingga dalam
budidaya ikan akan diperoleh hasil
baik induk dan benih yang unggul.
Induk yang unggul akan
menghasilkan benih yang unggul
sehingga dengan memelihara benih
unggul proses budidaya akan
menguntungkan dengan melihat laju
pertumbuhan ikan yang optimal
sehingga produktivitas budidaya ikan
akan meningkat.
4.1.1. Selective breeding
Selective breeding adalah suatu
program breeding yang mencoba
untuk memperbaiki nilai
pemuliabiakan (breeding value) dari
suatu populasi dengan melakukan
seleksi dan perkawinan hanya pada
ikan-ikan yang terbaik. Hasil yang
akan diperoleh adalah induk yang
terseleksi yang mempunyai
78
karakteristik lebih baik dari populasi
sebelumnya. Selective breeding
menurut Tave (1995) dapat
dilakukan dengan dua cara yaitu :
1. Seleksi individu/massa
2. Seleksi famili
Pada ikan teknik seleksi dapat
dilakukan dengan menggunakan dua
metode yaitu seleksi massa/individu
dan seleksi famili. Seleksi induk
secara individu ini disebut juga
dengan seleksi massa. Seleksi
massa/individu adalah seleksi yang
dilakukan dengan memilih individuindividu
dengan performan terbaik.
Seleksi ini merupakan teknik seleksi
yang paling sederhana dengan biaya
lebih murah dibandingkan seleksi
lainnya. Hal ini dikarenakan pada
seleksi individu hanya memerlukan
fasilitas dan peralatan sedikit (kolam,
jaring, hapa dan lain-lain),
pencatatan data lebih singkat
sehingga akan lebih mudah
dilakukan. Seleksi individu dapat
diterapkan pada ikan nila jika nilai
heritabilitas ikan nila ini lebih besar
dari 0,25, waktu pemijahan harus
bersamaan dan culling top 5 – 10%
(Tave, 1995). Induk yang baik secara
alami dapat dihasilkan melalui
seleksi secara ketat dan tepat
terhadap sekelompok ikan,
pengalaman menunjukan bahwa
untuk mendapatkan induk 50 ekor
yang sesuai kriteria diperlukan 2000
ekor calon induk.
Seleksi famili adalah seleksi dengan
mempergunakan performans dari
saudaranya baik saudara tiri
sebapak (half sib) atau saudara
sekandung (full sib). Saudara tiri
sebapak adalah keluarga (famili)
yang dibentuk oleh sekelompok anak
yang berasal dari satu bapak dengan
beberapa induk betina (Half sib),
karena pada ikan satu induk jantan
dapat membuahi lebih dari satu
induk betina, maka anak-anak yang
dihasilkan dari bapak yang sama
dengan induk betina yang berbeda
ini disebut dengan saudara tiri
sebapak. Sedangkan setiap
keluarga/famili yang berasal dari satu
bapak dengan satu induk disebut
saudara sekandung (full sib), dan
pada ikan budidaya ada juga yang
melakukan perkawinan dimana satu
jantan hanya membuahi satu induk
betina. Seleksi famili dapat
diterapkan untuk ikan jika nilai
heritabilitas ikan tersebut lebih kecil
atau sama dengan 0,15. Seleksi
famili merupakan alternatif seleksi
yang dapat dilakukan apabila
pengaruh lingkungan sulit dikontrol.
Dalam seleksi famili ada dua jenis
seleksi yaitu seleksi dalam famili
(within-family) dan seleksi diantara
famili (between family). Seleksi within
family sebaiknya diterapkan untuk
seleksi pertumbuhan pada ikan ,
karena masing-masing famili
dipelihara pada kolam terpisah dan
ikan dengan pertumbuhan terbaik
dipilih dari masing-masing famili,
sehingga semua famili akan terwakili.
Cara ini dilakukan merupakan salah
satu cara untuk mengantisipasi
adanya perbedaan umur akibat tidak
terjadinya proses pemijahan secara
serempak. Dari hasil penelitian pada
ikan nila, diantara ketiga teknik
seleksi yaitu seleksi individu, seleksi
within family dan between family,
ternyata seleksi within family lebih
efisien hasilnya dibandingkan
dengan seleksi individu atau
between family.
79
Pada saat akan membudidayakan
ikan setiap pembudidaya harus
sudah memahamii karakter fenotipe
setiap individu ikan yang akan
dibudidayakan dengan
memperhatikan ciri-ciri morfologinya.
Ciri-ciri morfologi setiap ikan
budidaya yang harus diamati adalah
karakter morfometrik dan karakter
meristik. Karakter morfometrik
adalah bentuk tubuh dari setiap ikan
budidaya seperti panjang total tubuh,
panjang standar, panjang kepala,
tinggi badan dan lain-lain, sedangkan
karakter meristik yang dapat diukur
antara lain adalah jumlah sisik pada
linea lateralis, jumlah jari-jari sirip
punggung, jumlah jari-jari lemah sirip
dada, jumlah jari-jari lemah sirip
perut, jumlah jari-jari sirip dubur,
jumlah tapis insang pada lengkung
insang bagian luar (gill racker),
jumlah vertebrae dan jumlah tulang
rusuk. Dengan memahami karakterkarakter
yang harus dipunyai oleh
induk ikan yang unggul berdasarkan
karakteristik setiap jenis ikan.
Menurut Tave (1995) perbandingan
strategi keuntungan serta kerugian
dari seleksi individu (A), seleksi
within family (B) dan seleksi between
family (C) dapat dilihat pada Tabel
4.1.
Dalam tabel 4.1 tersebut ada huruf h2,
huruf ini berarti heritabilitas.
Heritabilitas dapat dilakukan
pengukuran yang bertujuan untuk
mengetahui besarnya keragaman
fenotipe yang diakibatkan oleh aksi
genotipe atau menggambarkan
tentang persentase keragaman
fenotipe yang diwariskan dari induk
kepada keturunannya. Nilai
heritabilitas dinotasikan dengan
angka, yang berkisar antara 0 – 1.
Nilai heritabilitas satu berarti karakter
yang diwariskan kepada
keturunannya seluruhnya diakibatkan
oleh keragaman genetik tidak ada
pengaruh lingkungan. Nilai
heritabilitas nol berarti karakter yang
diwariskan kepada keturunannya
seluruhnya diakibatkan oleh
keragaman lingkungan tidak ada
pengaruh genetik. Nilai heritabilitas
ini dapat dikelompokkan menjadi tiga
yaitu rendah mempunyai nilai antara
0–0,1, medium mempunyai nilai
antara 0,1–0,3 dan tinggi mempunyai
nilai antara 0,3 – 1,0.
Selain itu dalam tabel tersebut
terdapat istilah asynchronous
spawning, istilah ini merupakan salah
satu kelompok strategi dalam
reproduksi ikan dimana ada tiga
strategi reproduksi ikan yaitu
synchronous spawning, synchronous
spawning kelompok dan
asynchronous spawning.
Synchronous spawning berarti
proses pemijahan ikan dalam
reproduksi dilakukan dengan cara
semua telur dipijahkan dan induk
ikan akan mati, contohnya pada ikan
salmon. Synchronous spawning
kelompok adalah kelompok ikan
yang dapat memijah berkali-kali
tetapi pemijahannya ini masih
80
Tabel 4.1. Perbandingan strategi, keuntungan dan kerugian dari seleksi individu (A), seleksi within family (B) dan
seleksi between family (C) (Tave, 1985)
Tipe Strategi Keuntungan Kerugian
A
B
C
Memilih individu yang terbaik,
hubungan famili tidak penting
Memilih individu yang terbaik
dari setiap famili
Memilih famili yang terbaik
berdasarkan nilai rata-rata
famili, nilai individual tidak
dipertimbangkan
Terbaik ketika h2 0,25,murah, dapat
dilakukan dengan sedikit kolam, relative
mudah untuk menggunakan 2-3 fenotipe,
seluruh ikan yang besar terseleksi,
mudah untuk menahan populasi breeding,
data yang dibutuhkan sedikit jumlah data
yang dikumpulkan sedikit
Terbaik ketika h2 0,15 dan
mempengaruhi Ve famili daripada
individu, dapat digunakan dengan
asynchronous spawning, mudah untuk
memelihara populasi breeding yang
besar, sedikit mahal daripada between
famili.
Terbaik ketika h2 0,15 dan
mempengaruhi Ve individu daripada
famili, dapat dipergunakan ketika ikan
harus dimatikan
Tidak efektif ketika h2 0,15, sehingga
sangat sukar untuk memilih ikan yang
terbaik, asynchronous spawning dan
menyebabkan masalah.
Moderatly expensive, membutuhkan
banyak kolam, sukar untuk
menggabungkan 2-3 fenotipe, ikan kecil
dapat menjadi induk ikan yang terpilih,
membutuhkan banyak data dan banyak
data yang harus dikumpulkan.
Sangat mahal, membutuhkan banyak
kolam, sukar untuk menggabungkan 2-3
fenotipe, ikan kecil dapat menjadi induk
terpilih dapat mengakibatkan terjadinya
inbreeding, membutuhkan banyak data
dan banyak data yang dikumpulkan.
81
tergantung pada musim pemijahan,
misalnya ikan patin, ikan bawal.
Sedangkan asynchronous spawning
adalah kelompok ikan yang dapat
memijah berkali-kali dan tidak
tergantung pada musim pemijahan
karena proses perkembangan
oositnya selalu ada, contoh jenis ikan
kelompok ini adalah ikan nila.
Program selective breeding di
lakukan untuk memperbaiki karakter
fenotipe terutama laju pertumbuhan.
Laju pertumbuhan yang tinggi pada
populasi ikan budidaya akan
meningkatkan produksi ikan yang
dibudidayakan dan biasanya
berkaitan dengan peningkatan dalam
produksi pakan bila ikan yang
dibudidayakan mengkonsumsi pakan
buatan. Dengan produktivitas yang
tinggi dalam budidaya ikan maka
pendapatan para pembudidaya ikan
akan meningkat. Dengan melakukan
seleksi ikan berdasarkan selective
breeding ini akan diperoleh individu
ikan yang mempunyai karakter
fenotipe terbaik sehingga dapat
meningkatkan laju pertumbuhan
pada saat dibudidayakan.
Prosedur yang harus dilakukan bagi
para pembudidaya yang akan
melakukan seleksi individu dengan
strategi memilih individu yang terbaik
dalam suatu populasi adalah sebagai
berikut :
1. Dalam suatu usaha budidaya
ikan jika akan melakukan
program seleksi individu minimal
harus mempunyai 25 pasang
induk yaitu 25 ekor induk jantan
dan 25 ekor induk betina.
2. Melakukan pemijahan ikan dan
mengamati pertumbuhan ikan
dari setiap pasangan. Misalnya
dari pemijahan satu pasang
induk ikan diperoleh benih ikan
sebanyak 200 – 300 ekor, maka
harus selalu dilakukan
pemantauan pertumbuhan benih
ikan tersebut.
3. Membuat kurva pertumbuhan
dari data pertumbuhan benih ikan
dan lakukan pemanenan pada
individu yang terbaik sebanyak
5–10% dari ukuran populasi yang
tertinggi nilai pertumbuhannya.
4. Benih ikan yang terpilih pada
tahap ketiga tersebut dipelihara
secara terpisah sebagai calon
induk yang akan digunakan untuk
proses pemijahan selanjutnya.
Menurut Tave (1995) dalam
program seleksi individu akan
diperoleh induk yang unggul
dengan melakukan perkawinan
pada populasi terpilih sebanyak
empat generasi.
5. Dari calon induk yang dipelihara
pada tahap keempat akan
diperoleh induk ikan yang dapat
digunakan untuk proses
pemijahan selanjutnya , dan akan
diperoleh larva dan benih ikan.
Kemudian proses selanjutnya
dilakukan pemeliharaan sampai
diperoleh kurva pertumbuhan
dan lakukan pemilihan dari
populasi individu sebanyak 5 –
10% dari populasi yang terbaik
yang mempunyai ukuran tertinggi.
Lakukan kegiatan tersebut
sampai empat generasi dan akan
diperoleh calon induk yang telah
terseleksi secara individu
Berikut ini adalah contoh seleksi
calon induk pada ikan nila meliputi
beberapa kriteria yaitu :
Tingkat pertumbuhan ikan, calon
induk mempunyai tingkat
82
pertumbuhan yang paling cepat
diantara kelompok ikan.
Warna ikan nila yang masih
mempunyai tingkat kemurnian
yang baik dapat di identifikasi
dengan adanya warna garis
hitam tegas dan jelas terletak
secara horisontal di bagian tubuh
ikan.
Bentuk badan melebar, mata
relatif besar, dan sisik teratur.
Konversi pakannya baik, yang
dapat di identifikasikan dengan
pertumbuhan bobot badan
70 % dari jumlah pakan yang
diberikan 3 - 5 % perhari dari
bobot ikan.
Waktu matang gonad induk
berumur 7 - 8 bulan, dengan
berat badan rata-rata 300 gram
per ekor untuk jantan dan 250 -
300 gram per ekor untuk betina.
Produktifitas dalam menghasilkan
telur cukup tinggi (induk dengan
panjang badan 6 cm dapat
menghasilkan 200 telur, sedang
induk yang panjang badannya 20
cm menghasilkan 1500 butir
telur).
Prosedur yang dapat dilakukan oleh
para pembudidaya ikan yang akan
melakukan seleksi famili adalah
sebagai berikut :
1. Menyiapkan ikan yang akan
dipijahkan dari beberapa famili
yang dimiliki, minimal jumlah
famili yang harus dikumpulkan
adalah 30 famili. Pada ikan nila
dimana pemijahan dapat
dilakukan dengan perbandingan
jantan dan betina adalah 1 : 4
maka dalam perkawinan 8 jantan
akan diperoleh famili sebanyak
32 yaitu 1 jantan dapat
membuahi 4 betina sehingga
satu jantan dapat membuat famili
halfsib dan full sib sebanyak 32
famili fullsib dan 8 famili haflsib
karena dari satu jantan akan
dihasilkan empat keluarga fullsib
maka 8 jantan akan ada 32 famili
fullsib atau 8 famili halfsib.
2. Melakukan pemijahan untuk ke
32 famili tersebut dan lakukan
pengamatan intensif dan cermat
setiap hari untuk mengamati
pasangan-pasangan ikan yang
sudah memijah.
3. Melakukan pemeliharaan larva
ikan pada setiap famili pada hapa
yang terpisah dengan
memberikan pakan dan
pengelolaan kualitas air sesuai
prosedur.
4. Melakukan pemeliharaan benih
ikan pada setiap famili pada
waring yang terpisah, hitung
jumlah benih yang dihasilkan dari
setiap famili. Pada ikan nila
misalnya satu ekor induk betina
menghasilkan 2000 – 3000 ekor.
Pendederan dilakukan pada
padat penbaran yang rendah
untuk setiap famili pada kolam
pendederan minimal 2 bulan.
5. Menghitung jumlah ikan yang
diperoleh dari hasil pendederan
dan lakukan pengukuran berat
dan panjang tubuhnya sebanyak
30% dari jumlah populasi setiap
famili,misalnya dalam satu famili
ada 2000 ekor maka jumlah
sampel yang dihitung adalah 600
ekor.
6. Melakukan pemilhan ukuran dari
seluruh populasi dan ambil
individu dari setiap famili yang
mempunyai pertumbuhan yang
terbaik, kurang lebih 8 minggu
83
kemudian tentukan 50% dari
populasi yang terbaik
pertumbuhannya untuk dipelihara
lebih lanjut menjadi calon induk
dan sisanya dijual.
7. Melakukan pemeliharaan pada
kolam pembesaran ikan sampai
ikan-ikan pada setiap famili
berukuran induk dan lakukan
pengukuran satu persatu pada
setiap famili dan pilih sebanyak
20-30 ekor betina terbesar dan
jantan terbesar sebanyak 10-20
ekor dari setiap famili.
8. Sisanya dibuang atau dijual
sebagai ikan ukuran besar dan
induk yang terpilih dapat
dilakukan untuk seleksi induk
selanjutnya dengan melakukan
pemijahan massal. Pada
beberapa spesies ikan sangat
berbeda untuk diperoleh induk
unggulnya. Pada jenis ikan nila
wanayasa dapat diperoleh induk
yang terseleksi secara famili
dengan melakukan pemijahan
ikan yang terpilih pada generasi
ke tiga.
4.1.2. Outbreeding/Hibridisasi/
Crossbreeding
Outbreeding adalah perkawinan
antara individu-individu yang tidak
sekerabat (berbeda induknya), masih
dalam satu varietas atau beda
varietas. Outbreeding ini akan
menghasilkan heterozigositas yang
akan menguatkan individuindividunya
terhadap perubahan
lingkungan yang biasa disebut juga
mempunyai fitnes yang tinggi. Fitnes
yaitu kemampuan relative pada
organisma untuk bertahan hidup dan
pemindahan gen untuk generasi
berikutnya. Individu yang mempunyai
heterosigositas yang tinggi maka
akan mempunyai fitness yang tinggi
pula. Oleh karena itu untuk
memperoleh induk ikan yang
mempunyai kemampuan hidup yang
tinggi sebaiknya dalam proses
budidaya harus dilakukan
perkawinan yang terseleksi.
Sedangkan crossbreeding atau
hibridisasi merupakan program
persilangan yang dapat diaplikasikan
pada ikan, udang, kerang-kerangan
maupun rumput laut. Hasil dari
program ini dapat menghasilkan
individu-individu yang unggul,
kadang-kadang ada juga yang steril
dan dapat menghasilkan strain baru
(Rustidja, 2005). Hibridisasi akan
mudah dilakukan apabila dapat
dilakukan reproduksi buatan seperti
halnya ikan mas dan ikan nila,
dimana dapat dilakukan striping telur
dan sperma. Selain itu ada defenisi
lain dari hibridisasi yang sebenarnya
tidak jauh berbeda. Hibridisasi
adalah perkawinan antara spesies
yang berbeda. Hibridisasi atau
persilangan merupakan suatu upaya
untuk mendapatkan kombinasi
antara populasi yang berbeda untuk
menghasilkan keturunan yang
memiliki sifat unggul. Berdasarkan
hal tersebut para ahli genetika
perikanan membagai hibridisasi ke
dalam dua macam yaitu :
1. Interspecifik hibridisasi yaitu
perkawinan antara spesies yang
berbeda.
2. Intraspecipik hibridisasi yaitu
perkawinan dalam satu species.
84
Hasil dari beberapa jenis ikan yang
dilakukan persilangan biasanya
paling mudah memperhatikan
karakter fenotipe kualitatif misalnya :
1. Warna tubuh, dimana dapat
dilakukan persilangan antara ikan
yang mempunyai warna antara
lain :
Ikan warna tubuh Albino
disilangkan dengan ikan
berpigmen normal
Ikan berwarna
kuning/merah/putih
disilangkan dengan ikan
berwarna hijau/biru/abu-abu
Ikan berwarna bintik
disilangkan dengan ikan
tanpa bintik
2. Tipe sirip pada ikan dapat
dilakukan persilangan antara ikan
yang mempunyai sirip antara lain:
Ikan bersirip kumpay
disilangkan dengan ikan
bersirip normal
Ikan bersirip kumpay
disilangkan dengan ikan yang
ekornya membundar
3. Pola sisik pada ikan dapat
dilakukan persilangan antara ikan
yang mempunyai sisik antara
lain:
Ikan bersisik bergaris
disilangkan dengan ikan yang
tidak mempunyai sisik
Ikan bersisik menyebar/kaca
disilangkan dengan ikan yang
bersisik penuh
4. Bentuk tubuh ikan
Dalam kegiatan hibridisasi ini
biasanya akan dihasilkan individu
baru pada ikan konsumsi yang sudah
dilakukan misalnya melakukan
persilangan antara ikan nila hitam
dengan ikan nila putih akan
dihasilkan ikan nila yang berwarna
tubuh ikan merah. Pada umumnya
jenis-jenis ikan hias yang dihasilkan
oleh para pembudidaya ikan banyak
yang diperoleh dari hasil persilangan.
Salah satu pendekatan yang dapat
digunakan dalam produksi benih ikan
hias baru-baru ini dari suatu populasi
yakni persilangan antar varitas atau
strain (hibridisasi intervaritas) yang
memiliki tampilan morfologi dari
spesies yang sama. Hibridsasi
intervaritas adalah mempersilangkan
antara induk jantan dan induk betina
yang berasal dari spesies yang sama
namun minimal memiliki dua karakter
fenotipe tampilan morfologi yang
berbeda (Kirpichnikov, 1981).
Disamping itu, karakter lain dari hasil
persilangan antara varitas adalah
fertile yakni dari masing-masing jenis
kelamin masih tetap mampu untuk
menghasilkan keturunan walaupun
peluang dari benih keturunan
tersebut cenderung memiliki karakter
fenotipe tampilan morfologi yang
bervariasi.
Hibridisasi merupakan persilangan
antara varitas atau spesies yang
secara morfologis memiliki
perbedaan. Kirpichnikov (1981),
menyatakan bahwa perbedaan yang
paling menonjol yang digunakan
dalam hibridisasi intervaritas adalah
perbedaan warna, bentuk, ukuran
dan kelengkapan biologis lain yang
melekat pada organ tubuh.
Perolehan ikan hybrid sangat
bergantung pada karakter dari induk.
Waynorovich dan Horvarth (1980)
menyatakan bahwa ikan hasil
hibridisasi interspesies adalah steril.
Disamping itu rata-rata ukuran
85
morfometrik dan meristik dari ikan
hibrid kebanyakan berada pada
pertengahan (intermediate) diantara
nilai rata-rata morfometerik dan
meristik induk.
Hibridisasi merupakan metode yang
digunakan dalam upaya memperoleh
ikan keturunan baru. Matsui (1935)
menyatakan bahwa banyaknya
varitas pada ikan maskoki
merupakan akibat dari perkawinan
antara mutan dengan induk asal atau
antara mutan dengan mutan dari
induk yang sama sehingga secara
morfologi terdapat varitas ikan
maskoki baru. Hibridisasi didasarkan
pada perbedaan tampilan
morfometrik dan meristik. Metode
paling banyak dilakukan oleh petani
ikan maskoki adalah hibridisasi
karena disamping memiliki varitas
yang banyak, pada ikan keturunan
sering diperoleh warna, bentuk dan
ukuran tubuh yang berbeda sehingga
jumlah varitas akan lebih banyak.
Kirpichnikov (1981) menyatakan
bahwa hasil perlakuan hibridisasi
tidak hanya dilihat dari tampilan
morfologi namun harus dilakukan
pula pengukuran morfometrik dan
meristik karena data yang diperoleh
merupakan refleksi dari kekuatan
penurunan karakter dari sumber
gamet disamping kondisi lingkungan
terjadi pada saat pembelahan sel
mulai bekerja.
Beberapa spesies ikan air tawar
yang sering digunakan dalam
kegiatan persilangan adalah spesiesspesies
ikan yang memiliki varitas
yang banyak dan memiliki karakter
morfologi yang dapat dibedakan
secara jelas seperti populasi spesies
ikan hias yang terdiri dari spesies
ekor pedang (Xyphophorus
maculatus), ikan guppi (Poecilia
reticulata) dan ikan maskoki
(Carassius auratus). Sementara
pada spesies ikan konsumsi, adalah
ikan mas (Cyprinus carpio), ikan nila
(Oreochromis niloticus) dan spesies
ikan konsumsi lain karena disamping
memiliki berbagai varitas juga
keturunan hibrid telah mampu untuk
dibudidayakan.
Pengertian tentang persilangan ikan
ini ada berbagai pendapat misalnya
crossbreeding merupakan
persilangan juga tetapi bukan
persilangan seperti hibridisasi,
melainkan persilangan balik. Jenis
ikan konsumsi yang merupakan hasil
persilangan balik adalah lele
sangkuriang yang telah direlease
oleh Menteri Perikanan dan Kelautan
pada tahun 2004. Jenis ikan ini
merupakan hasil persilangan balik
antara ikan lele generasi ke dua
dengan ikan lele generasi ke enam
yang telah dibuat oleh Balai Besar
Pengembangan Budidaa Air Tawar,
Sukabumi.
4.1.3. Seks reversal
Seks reversal (monosex) adalah
suatu teknologi yang membalikan
arah perkembangan kelamin menjadi
berlawanan. Cara ini dilakukan pada
waktu menetas gonad ikan belum
berdiferensiasi secara jelas menjadi
jantan atau betina tanpa merubah
genotipenya. Tujuan dari penerapan
sek reversal adalah menghasilkan
86
populasi monoseks (tunggal kelamin),
yang sangat bermanfaat dalam :
1. Mendapatkan ikan dengan
pertumbuhan yang cepat
Pada beberapa jenis ikan
konsumsi ada beberapa jenis
ikan dimana pertumbuhan ikan
jantan mempunyai pertumbuhan
yang lebih cepat daripada ikan
betina, misalnya ikan nila jantan
mempunyai pertumbuhan lebih
cepat pada ikan bentina, tetapi
pada jenis ikan lainnya yaitu ikan
mas pertumbuhan ikan betinanya
justru lebih cepat dibandingkan
dengan ikan jantan. Pada
kelompok udang-udangan
khususnya lobster untuk yang
berjenis kelamin jantan
mempunyai pertumbuhan lebih
cepat dibandingkan dengan
betina. Oleh karena itu bagi para
pembudidaya yang akan
memelihara jenis ikan tersebut
dengan menggunakan populasi
tunggal kelamin akan lebih
menguntungkan dibandingkan
jika memelihara ikan dengan
populasi dua kelamin, selain itu
waktu yang dibutuhkan untuk
memelihara ikan tersebut lebih
cepat sehingga terjadi efisiensi
biaya produksi dan keuntungan
akan meningkat.
2. Mencegah pemijahan liar
Dalam kegiatan budidaya ikan
jika memelihara ikan jantan dan
betina dalam satu wadah
budidaya maka tidak menutup
kemungkinan ikan tersebut pada
saat matang gonad akan
melakukan pemijahan yang tidak
diinginkan pada beberapa jenis
ikan yang memijahnya sepanjang
masa, seperti ikan nila, ikan mas.
3. Mendapatkan penampilan yang
baik
Ikan yang dinikamati keindahan
warna tubuhnya adalah ikan hias,
hampir semua jenis ikan hias
yang berkelamin jantan
mempunyai warna tubuh yang
lebih indah dibandingkan dengan
ikan bentinanya. Oleh karena itu
jika yang dipelihara pada ikan
hias adalah ikan jantan maka
akan diperoleh hasil yang lebih
menguntungkan karena nilai
jualnya lebih mahal.
4. Menunjang genetika ikan yaitu
teknik pemurnian ras ikan
Pada kegiatan rekayasa genetika
misalnya ginogenesi akan
diperoleh induk ikan yang
mempunyai galur murni. Induk
ikan yang galur murni ini akan
mempunyai gen yang homozigot
sehingga untuk melakukan
perkawinan pada induk yang
homozigot tanpa mempengaruhi
karakter jenis kelamin ikan
tersebut dilakukan aplikasi seks
reversal pada induk galur murni
sehingga pemurnian gen itu
masih tetap bertahan.
Teknologi seks reversal dapat
dilakukan dengan menggunakan dua
metode yaitu :
1. Terapi hormon yaitu dengan
menggunakan hormon steroid
2. Rekayasa kromosom
Teknologi seks reversal dengan
rekayasa kromosom akan dibahas
pada bab IX secara detail pada
subbab ini akan dibahas teknologi
seks reversal dengan menggunakan
terapi hormon. Menurut Koolman &
87
Rohm (2001) hormon adalah bahan
kimia pembawa sinyal yang dibentuk
dalam sel-sel khusus pada kelenjar
endokrin. Hormon disekresikan ke
dalam darah kemudian disalurkan ke
organ-organ yang menjalankan
fungsi-fungsi regulasi tertentu secara
fisiologik dan biokimia. Sel-sel
sasaran pada organ sasaran
memiliki reseptor yang dapat
mengikat hormon, sehingga
informasi yang diperoleh dapat
diteruskan ke sel-sel akhirnya
menghasilkan suatu respon. Pesan
hormon disampaikan pada sel-sel
sasaran menurut dua prinsip yang
berbeda. Hormon lipofilik masuk
kedalam sel dan bekerja pada inti sel,
sedangkan hormone hidrofilik
bekerja pada membran sel.
Teknik sex reversal mulai dikenal
tahun 1937 ketika estradiol 17
disintesis untuk pertama kalinya.
Dalam perjalanannya teknik sex
reversal telah mengalami beberapa
perbaikan berawal dari perlakuan
sex reversal yang baik dilakukan
pada saat beberapa hari setelah
menetas, yaitu sebelum gonad
berdiferensiasi, terus berkembang
hingga penerapanyang dilakukan
pada induk yang sedang bunting.
Teknik sex reversal berbeda dengan
hermaprodit, pada ikan hermaprodit
setelah melewati rentang waktu
tertentu, gonad secara alamiah akan
berubah menjadi jenis kelamin yang
berlawanan, fungsi hormon hanya
mempercepat proses perubahan
tersebut. Sedangkan pada teknik sex
reversal perubahan jenis kelamin
ikan sangat dipaksakan dengan
membelokkan perkembangan gonad
menjadi jantan atau betina dengan
proses penjantanan (maskulinisasi)
atau pembetinaan dengan
(feminisasi).
Berdasarkan tipe reproduksinya, ikan
dapat dibagi menjadi tiga tipe, yaitu :
1. Gonokhorisme (gonochorism),
yaitu memiliki jenis kelamin yang
terpisah
2. Hermaprodit (hermaphroditism),
yaitu kedua jenis kelamin berada
pada individu yang sama.
3. Uniseksualitas (unizexuality),
yaitu spesies yang semua
individunya betina
Ekspresi atau perwujudan seks
bergantung pada dua proses, yaitu
determinasi seks dan diferensiasi
seks. Determinasi seks bertaggung
jawab pada seks genetik (seks
genotipe), sedangkan diferensiasi
seks bertanggung jawab pada
perkembangan yang nyata dari
kedua jenis gonad (seks genotipe),
yaitu jantan dan betina. Kedua
proses tersebut secara bersamasama
bertanggung jawab pada
timbulnya dua kemungkinan
morfologi, fungsional, serta perilaku
pada individu jantan dan betina.
Penentu seks merupakan sejumlah
unsur genetik yang bertanggung
jawab terhadap keberadaan gonad,
atau sekumpulan gen yang
bertanggungjawab terhadap
pembentukan gonad. Terdapat tiga
model penentu seks yang dapat
diterapkan pada ikan, yaitu :
Kromosom, yang merupakan
pewarisan seks atau
heterokromosom. Sistem
kromosom determinasi seks
betina atau jantan XX/XY.
Penentu seks poligenik
(polifaktorial) adalah suatu sistem
88
penentuan seks dimana terdapat
gen penentu seks jantan dan
betina epistatik (superior) yang
berada pada autosom maupun
heterokromosom.
Penentu seks oleh lingkungan,
melibatkan interaksi antar
genotipe dan lingkungan,
terutama suhu media selama
perkembangan larva.
Proses diferensiasi seks adalah
suatu proses perkembangan gonad
ikan menjadi suatu jaringan yang
definitif (pasti), yang terjadi terlebih
dahulu pada betina dan kemudian
baru terjadi pada jantan. Gonad ikan
pada saat baru menetas masih
berupa benang yang sangat halus
dan belum berdiferensiasi menjadi
jantan atau betina. Proses
diferensiasi seks pada betina
ditandai dengan meiosis oogonia
dan/atau perbanyakan sel-sel
somatik membentuk rongga ovari,
sebaliknya pada diferensiasi seks
pada jantan ditandai dengan
muculnya spermatoonia serta
pembentukan sistem vaskular pada
testis.
Hormon steroid secara alamiah
terlibat dalam proses diferensiasi
seks. Upaya pengontrolan proses
diferensiasi seks dilakukan dengan
pemberian steroid seks dari luar
tubuh (eksogenous) pada ikan yang
belum berdiferensiasi. Ikan-ikan hasil
sex reversal pada umumnya
mengalami perubahan kelamin yang
bersifat permanen dan berfungsi
normal. Pemberian steroid seks
sebaiknya diberikan sebelum muncul
tanda-tanda diferensiasi gonad
dengan menggunakan hormon
estrogen atau androgen. Jenis-jenis
hormon steroid yang dapat
digunakan dalam terapi hormon
antara lain adalah :
1. Estrogen (hormon betina) :
Estradiol-17 , esteron, estriol
atau ethynil estradiol. Hormon ini
memberikan efek perubahan dari
jantan menjadi betina (feminisasi).
2. Androgen (hormon jantan) :
Testoteron, 17 -Methyl Testoteron,
androstendion. Hormon ini
memberikan efek perubahan dari
betina menjadi jantan
(maskulinisasi).
Pada sex reversal terkadang terjadi
penyimpangan ekstrim yang dialami,
hal ini dapat terjadi karena pada
beberapa jenis ikan (lele amerika)
terdapat suatu zat yang menyerupai
enzim aromaterase sehingga hormon
17 metiltestosteron yang masuk ke
dalam tubuh terlebih dahulu
dikonversi menjadi estradiol 17 dan
berfungsi sebagai hormon sehingga
terjadi penyimpangan hingga 100%.
Dalam penerapan sex reversal
dengan menggunakan terapi hormon
dapat diberikan beberapa cara yang
didasarkan pada efektifitas, efisiensi,
kemungkinan polusi dan biaya. Cara
pemberian hormone dalam teknologi
seks reversal dapat dilakukan
dengan beberapa cara antara alin
adalah :
1. Oral
Metoda oral adalah metode
pemberian hormon melalui mulut
yang dapat dilakukan dengan
pemberian pakan alami maupun
pakan butan. Pada pakan buatan,
hormon dilarutkan dalam pelarut
polar seperti alkohol. Cara yang
dilakukan adalah dengan
mencampur hormon 17
89
metyltestoesteron secara merata
dengan pakan dengan dosis
disesuaikan jenis ikan yang akan
diaplikasikan. Pemberian hormon
pada pakan alami dapat
dilakukan dengan teknik
bioenkapsulasi. Secara detail
teknik tentang bioenkapsulasi ini
dijelaskan secara detail pada bab
VII.
Selanjutnya Anonim, (2001),
mengatakan bahwa berdasarkan
penelitian sampai saat ini teknik
penghormonan melalui oral
paling banyak digunakan para
pembudidaya ikan karena hasil
yang diperoleh lebih dari 95
sampai 100% bila dibandingkan
dengan perendaman yang
menghasilkan 70 – 80%. Dengan
pencampuran hormon pada
pakan juga sangat efisien dalam
pemakaian dosis hormon dan
kemudahan memperoleh pakan
ikan. Sedangkan kelemahan
metoda oral ini adalah pada awal
pemberian pakan, larva perlu
menyesuaikan jenis pakan
buatan sehingga apabila pakan
tidak segera dimakan maka
kemungkinan besar hormon akan
tercuci kedalam media budidaya.
Menurut Muhammmad Zairin Jr.
(2002), pemberian akriflavin
dengan dosis 15 mg/kg pakan
dengan frekwensi pemberian
pakan 3 – 4 kali sehari
menghasilkan 89% ikan jantan
dengan survival rate 88%.
Prinsip kerja pencampuran
hormon pada pakan yakni
hormon dilarutkan dan
diencerkan dalam alkohol.
Kemudian larutan hormon
dicampurkan dengan pakan
buatan berupa pellet serbuk
dengan cara menyemprotkan
larutan hormon secara merata
kepermukaan pakan dengan
menggunakan sprayer. Setelah
tercampur dengan merata, pakan
dibiarkan di udara terbuka di
tempat yang tidak terkena sinar
matahari (di angin-anginkan)
agar alkohol dapat menguap.
Selanjutnya pakan yang telah
tercamput hormon dimasukkan
ke dalam wadah tertutup dan di
simpan di dalam lemari pendingin
2. Perendaman (dipping/bathing)
Metoda perendaman (dipping),
yaitu dengan cara merendamkan
larva ikan ke dalam larutan air
yang mengandung 17
metyltestoesteron dengan dosis
1,0 gram/liter air. Metode ini
dapat diaplikasikan pada embrio,
dan pada larva ikan yang masih
belum mengalami diferensiasi
jenis kelamin (sex), dan lama
perendaman tergantung dosis
hormon yang diaplikasikan,
dimana semakin banyak dosis
hormon maka semakin singkat
waktu perendaman dan demikian
juga sebaliknya.
Perendaman yang dilakukan
pada fase embrio dilakukan pada
saat fase bintik mata mulai
terbentuk, karena dinggap embrio
telah kuat dalam menerima
perlakuan. Kelemahan cara ini
adalah obat atau hormone terlau
jauh mengenai target gonad,
namun lebih hemat pada
penggunaan hormone.
Perendaman juga dapat
90
dilakukan pada umur larva yang
telah habis kuning telurnya,
karena ada anggapan pada
stadia ini gonad masih berada
pada fase labil sehingga mudah
dipengaruhi oleh rangsangan luar.
Kelemahannya adalah efektifitas
hormone berkurang karena jauh
mengenai target gonad. Larva
yang dipergunakan dalam
penerapan teknologi sex reversal
ini adalah larva yang berumur
antara 5 – 10 hari setelah
menetas atau pada saat tersebut
panjang total larva berkisar
antara 9,0 sampai 13 mm ,
dimana ikan dengan umur serta
ukuran seperti tersebut di atas
secara morfologis masih belum
mengalami diferensiasi
kelamin.(Anonim, 2001).
Perendaman induk betina yang
sedang bunting juga merupakan
salah satu alternative pada
metode dipping namun harus
dipertimbangkan efektifitas dan
efesiensinya sehingga induk
yang direndam sebaiknya indukinduk
yang berukuran kecil.
3. Suntikan/implantasi
Metode suntikan atau implantasi
ini biasanya hanya dapat
dilakukan pada ikan yang
berukuran dewasa. Proses
penyuntikan dilakukan pada
bagian punggung ikan dengan
dosis yang disesuaikan dengan
jenis dan ukuran ikan.
Perlu diperhatikan bahwa
pengubahan jantanisasi
(maskulinisasi) kadang-kadang
menunjukkan penyimpangan seperti
ditemukan individu yang memiliki
bakal testis dan sekaligus bakal ovari.
Selain itu mungkin saja dijumpai
individu yang steril/abnormal karena
gonadnya tidak dapat berkembang.
Hal ini biasanya berhubungan
dengan kesesuaian dosis yang
diberikan. Menurut Zairin Jr (2002)
Secara umum dosis yang terlalu
tinggi akan mendorong sterilitas dan
dosis yang terlalu rendah akan
mendorong sex reversal yang tidak
sempurna sehingga bakal testis dan
ovari dapat dijumpai pada saat
bersamaan.
Setelah dilakukan aplikasi teknologi
seks reversal pada individu ikan,
maka harus dilakukan uji progeni. Uji
progeni ini untuk menentukan
apakah ikan yang telah ditreatment
tersebut sudah berubah kelamin.
Terdapat dua metode yang
digunakan dalam identifikasi jenis
kelamin, antara lain adalah :
1. Metode asetokarmin
Identifikasi gonad dengan
metode asetokarmin dilakukan
hanya untuk keperluan penelitian,
karena ikan harus dimatikan
terlebih dahulu untuk diambil
gonadnya. Asetokarmin adalah
larutan pewarna yang digunakan
untuk mewarnai jaringan gonad.
Larutan ini dibuat dengan cara
melautkan 0,6 g bubuk karmin
didalam 100 ml asam asetat 45%.
Larutan dididihkan selama 2 – 4
menit kemudian didinginkan,
kemudian disaring dengan kertas
saring dan disimpan dalam botol
yang tertutup rapat pada suhu
ruang.
Pemeriksaan gonad dilakukan
dengan cara membedah ikan
terlebih dahulu yang kemudian
91
diambil gonadnya secara hati-hati.
Gonad yang sudah terambil
diletakkan pada gelas objek dan
diberi larutan asetokarmin 2 – 3
tetes, kemudian dicincang
dengan pisau skalpel sampai
halus, lalu tutup dengan gelas
penutup dan siap diamati di
bawah mikroskop.
2. Metode morfologi
Identifikasi kelamin dengan
pengamatan morfologi adalah
cara terhemat karena tidak harus
mematikan ikan yang akan
diamati. Cara ini apat dilakukan
pada ikan-ikan yang memiliki
dimorfisme seksual yang jelas
antara jantan dan betina.
Aplikasi seks reversal telah berhasil
dilakukan pada beberapa jenis ikan
berdasarkan hasil penelitian antara
lain adalah :
1. Ikan hias : ikan guppy, cupang,
tetra kongo dan rainbow trout
dengan menggunakan metode
perendaman embrio untuk ikan
cupang dan tetra kongo,
perendaman induk untuk ikan
guppy, perendaman larva untuk
rainbow dan pemberian pakan.
2. Ikan konsumsi : nila dan mas,
dengan perendaman embrio,
larva dan pemberian pakan.
Langkah awal dalam melakukan
seks reversal adalah menyiapkan
wadah yang akan digunakan. Wadah
yang dapat digunakan untuk
melakukan teknik sex reversal antara
lain adalah akuarium, bak fiber, bak
semen, bak plastik. Wadah untuk
teknik sex reversal dapat
dikelompokan berdasarkan
kebutuhan dan jenis metode yang
akan digunakan. Wadah-wadah yang
digunakan yang mendasar adalah
wadah pemeliharaan induk dapat
berupa kolam semen atau bak-bak
plastik, wadah perlakuan yang
berupa akuarium dengan ukuran
yang menyesuaikan dengan
kepadatan ikan yang akan diberi
perlakuan, dan wadah pemeliharaan
larva.
Peralatan yang digunakan pada
teknik sex reversal adalah peralatan
lapangan pemeliharaan ikan yang
berupa seser, selang sipon, aerator,
selang aerasi, dan batu aerasi.
Peralatan yang akan digunakan
sebaiknya disanitasi terlebih dahulu
dengan menggunakan larutan
desinfektan atau sabun cuci untuk
menghindari ikan yang akan
dipelihara dari hama penyakit yang
kemungkinan terbawa pada wadah.
Selain peralatan lapangan, untuk
melakukan teknik sex reversal juga
diperlukan peralatan dalam
perlakuan melalui pakan yaitu,
baskom yang digunakan sebagai
wadah dalam pembuatan ramuan
pakan, sendok kayu digunakan untuk
mengaduk dan meratakan larutan
hormon, hand sprayer digunakan
untuk menyemprotkan larutan
hormon dalam pakan, spuit suntik
sebagai alat untuk mengambil
larutan hormon dan botol gelas yang
berwarna gelap sebagai wadah
pelarutan hormon dengan alcohol.
Sedangkan peralatan yang
diperlukan pada perlakuan melalui
rendaman antara lain, baskom
plastik sebagai wadah perendaman
induk atau larva, aerator sebagai
penyuplai udara, spuit suntik sebagai
alat untuk mengambil larutan hormon
dan botol gelas yang berwarna gelap
92
sebagai wadah pelarutan hormon
dengan alcohol
Bahan-bahan yang harus disediakan
antara lain hormon 17
metiltestosteron atau estradiol 17
sesuai dengan kebutuhan dan tujuan
sex reversal, alcohol sebagai pelarut
hormon, pakan alami atau buatan
(bila melalui metode oral) dan air
bersih yang telah diendapkan selama
12 – 24 jam sebagai media
perendaman (bila menggunakan
metode dipping)
Pembuatan pakan berhormon
Dalam aplikasi seks reversal dengan
metode oral melalui pemberian
pakan berhormon maka dosis
hormon yang digunakan akan sangat
spesifik untuk jenis ikan tertentu.
Dalam prosedur ini akan dibuat
pakan berhormon untuk jenis ikan
nila. Adapun prosedur yang
dilakukan adalah sebagai berikut :
1. Tangkaplah larva ikan yang akan
diberikan perlakuan dari
kolam/bak pemijahan
2. Pilihlah larva yang masih
berumur di bawah 10 hari
dengan melihat kriteria yang
sesuai dengan ciri-ciri yang
sudah ditentukan.
3. Timbanglah biomassa larva yang
akan diberi perlakuan
penghormonan yaitu dengan
cara mengambil dan menimbang
beberapa sampel untuk
kemudian hasil penimbangan
sampel dibagi dengan jumlah
rata-rata larva sampel untuk
mendapatkan berat rata-rata
larva, selanjutnya hitunglah
jumlah populasi larva, lalu
kalikan dengan berat rata-rata
larva untuk mendapatkan berat
total larva.
4. Timbanglah pakan yang
dibutuhkan untuk larva sesuai
dengan dosis yang sudah
ditentukan (Feeding rate 30 –
40% per bobot biomassa/hari)
dikalikan selama 10 hari
pemberian pakan.
5. Siapkanlah larutan alkohol
dengan konsentrasi 70% sesuai
dengan kebutuhan.
6. Siapkanlah hormon yang akan
digunakan sesuai kebutuhan.
Misalnya jumlah kebutuhan
pakan 250 gram, dosis
penghormonan 40 mg/kg pakan,
maka timbanglah hormon
sebanyak 10 mg.
7. Larutkanlah hormon tadi ke
dalam alkohol tersebut sebanyak
10 ml ( 1mg/ml), lalu simpan
dalam botol berwarna gelap
(tidak bening).
8. Campurlah larutan hormon
dengan pakan dengan cara
menggunakan hand sprayer
disemprotkan secara merata
pada pakan. Untuk
menghilangkan alkohol anginanginkanlah
pakan tersebut
sampai bau alkoholnya sudah
tidak menyengat lagi.
9. Simpanlah hormon yang sudah
dianginkan pada kantong plastik
yang berwarna gelap dengan
ditutp rapat-rapat baik sebelum
maupun sesudah dipakan, atau
dapat juga disimpan dalam
reprigrator (+ 4o C)
10. Diskusikan secara berkelompok
tentang prosedur pembuatan
pakan berhormon
Pembuatan larutan perendaman
93
Aplikasi seks reversal pada ikan
guppy bertujuan untuk menghasilkan
ikan berjenis kelamin jantan. Pada
ikan guppy jenis kelamin jantan
mempunyai warna dan bentuk tubuh
yang lebih indah dibandingkan
dengan ikan betina. Teknik seks
reversal pada ikan guppy dapat
dilakukan dengan dua metode yaitu
perendaman induk dan pemberian
pakan berhormon. Pada metode
perendaman, dosis yang digunakan
adalah 2 mg/l air dan lama
perendaman selama 12 jam sampai
24 jam pada induk ikan yang sedang
bunting dan memberikan hasil 100%
jantan. Sedangkan dengan metode
pemberian pakan dengan dosis 400
mg/l dengan lama perlakuan 10 hari
hanya menghasilkan 58% jantan
(Zairin, 2002). Adapun prosedur
pembuatan larutan perendaman
adalah sebagai berikut :
1. Siapkan alat dan bahan yang
akan diperlukan
2. Buatlah larutan hormon dengan
cara timbang hormon sebanyak
20 mg dan masukkan dalam
tabung polietilen dan tambhakan
0,5 ml larutan alkohol 70%. Tutup
dan kocok sampai hormon larut,
kemudian tuangkan hormon
kedalam wadah berisi 10 liter air
pemeliharaan , beri aerasi dan
siap untuk digunakan.
3. Pilihlah induk ikan guppy yang
sedang bunting dengan melihat
bentuk tubuhnya dan pilihlah
induk yang akan melahirkan 8
hari kemudian sebanyak 50 ekor.
Ikan guppy biasanya mengalami
masa bunting selama 40 hari.
4. Masukkan induk tersebut
kedalam larutan hormon dan
rendam selama 24 jam.
5. Pindahkan induk ikan guppy
yang telah direndam ke dalam
akuarium dan amati proses
kelahiran anak dan hitung jumlah
anak yang dihasilkan
6. peliharalah anak yang dihasilkan
sampai berumur 2-3 bulan dan
diidentifikasi jenis kelaminnya
secara morfologis dan histologis.
Penerapan seks reversal yang telah
dilakukan penelitian oleh beberapa
peneliti yang telah disusun dalam
Zairin (2002) sangat berbeda untuk
jenis ikan tentang dosis dan hasil
yang diperoleh antara lain adalah :
Ikan mas : 100 mg/kg pakan
selama 36 hari pada larva 8 – 63
hari, pada suhu 20 – 25 oC,
menghasilkan 71 – 90% betina
Ikan mas : 100 mg/kg pakan
selama 36 hari, pakan
berhormon-cacing-pakan
berhormon, menghasilkan 97%
betina
Ikan nila 10 – 60 mg /kg pakan,
selama 10 – 15 hari, umur 21-28
hari, hasilnya 95-100% jantan
Ikan guppy, 400 mg mt/kg pakan,
selama 10-15 hari pada betina
bunting, hasil 70% jantan
Ikan guppy, 1-2 mg/liter media
selama 24 jam pada betina
bunting, hasil 100% jantan
Congo tetra fase bintik mata, 25
mg/liter media selama 8 jam,
hasil 89% jantan
Betta splendens/cupang fase
bintik mata, 20 mg/liter media
selama 8 jam, hasil 85% jantan
94
Keberhasilan teknik sex reversal dapat diketahui melalui beberapa parameter
antara lain :
a. Daya tetas telur atau kualitas larva yang dihasilkan
Jumlah telur yang menetas
Perhitungan daya tetas telur = x 100%
Jumlah telur awal
b. Derajat kelangsungan hidup larva yang dihitung setelah beberapa hari
pemeliharan
Jumlah larva yang hidup
Derajat kelangsungan hidup = x 100%
Jumlah larva awal
c. Nisbah kelamin, perbandingan jenis kelamin yang dihasilkan. Hal ini
dapat dihitung setelah 2-3 bulan pemeliharaan larva.
perhitungan nisbah kelamin untuk mengetahui keberhasilan teknik sex
reversal dengan rumus :
jumlah individu jantan
% jantan = x 100%
jumlah individu total
jumlah individu betina
% betina = x 100%
jumlah individu total
4.1.4. Inbreeding
Inbreeding adalah perkawinan antara
individu-individu yang sekerabat
yaitu berasal dari jantan dan betina
yang sama induknya dan pada
varietas yang sama. Inbreeding atau
silang dalam akan menghasilkan
individu yang homozigositas.
Kehomozigotan ini akan
melemahkan individu-individunya
terhadap perubahan lingkungan.
Homozigositas ini berari hanya ada
satu tipe alel untuk satu atau lebih
lokus. Selain itu silang dalam akan
menyebabkan penurunan
kelangsungan hidup telur dan larva,
peningkatan frekuensi ketidak
normalan bentuk dan penurunan laju
pertumbuhan ikan.
Silang dalam menyebabkan
heterozigositas ikan berkurang dan
keragaman genetik menjadi rendah.
Menurut Nurhidayat (2000), lele
dumbo yang berasal dari Sleman,
Tulung Agung dan Bogor mempunyai
stabilitas perkembangan yang
rendah akibat telah mengalami
tekanan silang dalam yang
ditunjukkan dengan tingginya nilai
fluktuasi asimetri dan adanya
individu yang tidak tumbuh sirip dada
dan sirip perut pada kedua sisinya
95
(abnormal). Menurut Leary et al
(1985), individu yang homozigot
kurang mampu mengimbangi
keragaman lingkungan dan
memproduksi energi untuk
pertumbuhan dan perkembangan.
Oleh karena itu fluktuasi asimetri
merupakan indikator untuk
mengetahui adanya silang dalam.
Fluktuasi asimetri ini merupakan
perubahan organ atau bagian tubuh
sebelah kiri dan kanan yang
menyebar normal dengan rataan
mendekati nol. Selain itu individu
yang mengalami tekanan silang
dalam mempunyai ketahanan
terhadap perubahan lingkungan yang
rendah.
Berdasarkan beberapa parameter
pengukuran dalam menentukan
apakah pada suatu populasi telah
mengalami tekanan silang dalam,
memperlihatkan bahwa silang dalam
memberikan dampak negatif dalam
budidaya ikan. Tetapi dalam program
untuk memperoleh individu galur
murni hanya dapat dilakukan dengan
menerapkan program breeding
ini.Jadi tujuan penerapan silang
dalam (inbreeding) hanya bertujuan
untuk memperoleh induk ikan yang
mempunyai galur murni, individu
galur murni mempunyai
homozigositas yang tinggi. Program
breeding ini merupakan program
konvensional dalam memperoleh
induk ikan yang galur murni.
Perkawinan antara individu-individu
yang sekerabat ini yang sangat dekat
kekerabatannya biasa terjadi dalam
suatu populasi ikan yang sangat kecil.
Oleh karena itu untuk menghindari
terjadinya silang dalam pada
program penegmbangbiakan ikan
dibutuhkan suatu penerapan
effective breeding number (Ne) pada
ikan budidaya. Berdasarkan hasil
penelitian nilai Ne untuk setiap jenis
ikan berbeda, misalnya pada ikan
mas nilai Nenya adalah > 50 ekor
yang berarti jika para pembudidaya
akan melakukan program
pembenihan ikan mas dalam suatu
hatchery, minimal harus mempunyai
induk dengan jumlah lebih dari 25
pasang agar tidak terjadi inbreeding.
Pada ikan nila, nilai Nenya adalah >
133 ekor , sedangkan pada ikan lele
adalah 50 ekor.
Dalam memperoleh induk ikan yang
mempunyai galur murni dapat
dilakukan dengan dua metode yaitu :
1. Closed breeding.
Closed breeding berarti
perkawinan yang tertutup, yang
mempunyai arti lain yaitu
melakukan perkawinan yang
dekat sekali kaitan
kekeluargaannya misalnya anak
dan tetua atau antar saudara
sekandung. Perkawinan antara
saudara sekandung atau antara
individu-individu yang sefamili
akan mengakibatkan pembagian
alel-alel melalui satu atau lebih
dari leluhur yang sama. Bila
perkawinan individu ini terjadi
maka alel-alel yang mereka
dapatkan dari leluhur yang sama
akan diperoleh kembali. Maka hal
ini akan mengakibatkan
keturunan yang dihasilkan adalah
individu-individu yang homozigot
dari satu atau lebih lokus.
Dengan melakukan silang dalam,
ferkuensi gen tidak berubah
tetapi homosigositas meningkat.
Menurut Tave (1986) pengaruh
96
silang dalam terhadap frekuensi
genotipe dan frekuensi alel
dalam lokus dapat dilihat pada
Tabel 4.2.
2. Line breeding.
Line breeding berarti perkawinan
satu jalur yaitu perkawinan
keluarga yang bertujuan untuk
meningkatkan sifat-sifat tertentu
baik yang berasal dari nenek
moyang bersama yang jantan
maupun betina terhadap kostitusi
genetik pada progeninya. Bentuk
line breeding yang sering
dilakukan adalah backcross
kepada orangtuanya yang sama
untuk beberapa generasi.
Menurut Tave (1986) prosedur
linebreeding dapat dilakukan
dengan dua tipe yaitu Mild
Linebreeding dan Intense
Linebreeding. Untuk
membedakan kedua program
linebreeding ini menurut Tave
(1986) dapat dilihat pada Gambar
4.1. Dari hasil mild linebreeding
bertujuan untuk individu A
berkontribusi 53,12% pada gen
individu K, sedangkan pada
intense linebreeding individu A
berkontribusi 93,75% pada gen
individu G.
Tabel 4.2. Pengaruh silang dalam terhadap frekuensi genotipe dan frekuensi
alel dalam lokus. Perkawinan setiap generasi : AA X AA; Aa X Aa;
aa X aa (Tave, 1986)
Frekuensi genotipe Frekuensi Alel
Generasi
f(AA) f(Aa) f (aa) f(A) f(a)
P1
F1
F2
F3
F4
F5
F6
F7
F8
F9
Fn
0,25
0,375
0,4375
0,46875
0,48437
0,49218
0,49609
0,49804
0,49902
0,49951
0,5
0,5
0,25
0,125
0,0625
0,3125
0,15625
0,007812
0,003906
0,001953
0,000976
0,0
0,25
0,375
0,4375
0,46875
0,48437
0,49218
0,49609
0,49804
0,49902
0,49951
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
0,5
97
Mild Linebreeding Intense Linebreeding
A X B A X B
C X D A X C
E X G A X D
H X I A X E
A X J G
K
Gambar 4.1. Diagram skematik perkawinan dua tipe linebreeding yaitu
mildline breeding dan intense line breeding (Tave, 1986).
4.1.5. Aplikasi seleksi induk pada
budidaya
Dalam aplikasi budidaya para petani
ikan biasanya melakukan
pemeliharaan terhadap induk ikan
yang diperoleh dari hasil budidaya
dengan cara induk jantan dan betina
dipelihara secara terpisah. Hal ini
lebih memudahkan dalam
pengelolaan, pengontrolan dan yang
terpenting dapat mencegah
terjadinya memijah diluar kehendak
“mijah maling”. Kolam induk berupa
kolam tanah, kolam tembok, atau
kolam tanah dengan pematang dari
tembok. Tidak ada ketentuan khusus
tentang ukuran kolam untuk
pemeliharaan induk. Biasanya kolam
induk hanya disesuaikan dengan
kondisi lahan dan keuangan. Untuk
memudahkan dalam pengelolaan
dan efisiensi penggunaan kolam,
maka luas kolam induk jantan dan
betina masing-masing berkisar 15 –
30 meter persegi. Setiap kolam
dilengkapi dengan saluran
pemasukan dan pengeluaran air. Di
kedua saluran ini biasanya
dilengkapi dengan saringan agar
induk-induk tersebut tidak keluar
atau kabur. Kepadatan penebaran
induk antara 3 – 4 kg/m2, sedangkan
ketinggian air dikolam induk antara
60 – 75 cm. Agar diperoleh
kematangan induk yang memadai,
98
setiap hari induk di beri pakan bergizi.
Jenis pakan yang diberikan berupa
pakan buatan berupa pelet sebanyak
3 – 5 % perhari dari bobot induk
yang dipelihara. Ada juga induk ikan
yang diberikan pakan berupa limbah
peternakan ayam (ayam yang mati)
yang dibakar atau direbus terlebih
dahulu.
4.1.5.1. Seleksi Induk Ikan Lele
Seleksi induk ikan lele secara umum
di mulai dari ikan ukuran benih (5-10
cm ). Benih ikan yang baik untuk
induk di pilih dengan ciri-ciri antara
lain adalah memiliki pertumbuhan
yang lebih cepat, tidak cacat,
gerakan lincah dan memiliki bentuk
tubuh yang baik. Benih/calon induk
tersebut dipelihara didalam kolam
dengan baik, selanjutnya calon induk
tersebut dilakukan seleksi induk
secara berkala sampai mendapat
induk yang benar-benar baik dan
sesuai dengan kebutuhan. Kegiatan
pembenihan ikan lele diawali dengan
seleksi induk. Induk yang akan dipilih
adalah induk jantan dan betina yang
matang gonad. Ciri-ciri induk betina
ikan lele adalah genital papila
berbentuk bundar (oval), bagian
perut relatif lebih besar, gerakan
lambat, jika di raba bagian perut
terasa lembek dan alat kelamin
berwarna kemerah merahan.
sedangkan induk jantan dicirikan
dengan genitalnya meruncing ke
arah ekor, perut ramping dan pada
ujung alat kelamin berwarna
kemerahan selain itu ada perubahan
warna tubuh menjadi coklat
kemerahan. Untuk lebih jelasnya
dapat dilihat pada Gambar 4.2 dan
Gambar 4.3.
Gambar 4.2. Induk ikan lele betina tampak atas (kiri) dan genital papilla
(kanan)
99
Gambar 4.3. Induk ikan lele jantan tampak atas (kiri), genital papilla (kanan)
Induk yang sudah dipilih
berdasarkan matang gonadnya,
kemudian diberok (dipuasakan)
selama 2 hari. Selama pemberokan
induk jantan dan betina dipisahkan.
Tujuan dari pemberokan ini adalah
untuk mengurangi kandungan lemak
pada tubuh ikan. Hal ini disebabkan
lemak pada tubuh ikan dapat
menghambat ovulasi telur pada
betina dan pengeluaran sperma
pada induk jantan. Induk yang akan
diberok dipisahkan antara induk
jantan dan betina. Hal ini bertujuan
untuk menghindari mijah maling.
Selain itu, pemisahan induk tersebut
bertujuan mempercepat pemijahan
ikan.
Ciri-ciri induk betina lele dumbo yang
siap untuk dipijahkan sebagai
berikut:
Bagian perut tampak membesar
ke arah anus dan jika diraba
terasa lembek.
Lubang kelamin berwarna
kemerahan dan tampak agak
membesar.
Jika bagian perut secara
perlahan diurut ke arah anus,
akan keluar beberapa butir telur
berwarna hijau tua dan
ukurannya relatif besar.
Gerakannya lambat.
Ciri-ciri induk jantan lele dumbo
jantan yang telah siap untuk
dipijahkan sebagai berikut :
Alat kelamin tampak jelas
memerah
Warna tubuh agak kemerahmerahan
Tubuh ramping dan gerakannya
lincah.
4.1.5.2. Seleksi induk ikan Mas
Induk ikan Mas yang akan dipijahkan
sebaiknya dipelihara dalam tempat
100
yang terpisah antara jantan dan
betina agar pertumbuhan induk ikan
opimal dan tidak terjadi perkawinan
yang tidak diinginkan. Dalam
pemeliharaan induk ikan Mas harus
dilakukan dengan baik dan benar
agar diperoleh induk yang siap dan
unggul untuk dikawinkan.
Pemeliharaan induk ikan Mas
merupakan salah satu aspek penting
yang harus dilaksanakan dalam
program pengembangbiakan ikan
Mas. Induk ikan Mas yang dipelihara
dengan baik akan menghasilkan telur
dan benih ikan dalam jumlah dan
kualitas yang diharapkan.
Induk ikan yang baik sebaiknya
dipelihara dari masa benih, hal
tersebut dapat dilihat dari gerakan
yang incah, tumbuh bongsor, sehat
dan mempunyai nafsu makan yang
baik. Pemeliharaan benih calon
induk sebaiknya dilakukan sejak
pemanenan, benih umur 1 bulan.
Dalam pemeliharaan calon induk ini
harus diberi pakan yang cukup dan
bergizi. Calon-calon induk yang
dipelihara tersebut selanjutnya di
seleksi kembali pada saat berukuran
100-200 gram. Calon induk jantan
dan betina dipilih berdasarkan ciri-iri
morfologisnya yang baik, diantaranya
adalah:
Calon induk harus mempunyai
karakter morfologis dengan
kriteria sebagai berikut: bentuk
tubuh kekar, pangkal ekor kuat
dan lebar, sisik besar dan teratur,
warna cerah, kepala lancip dan
lebih kecil dari lebar tubuh (1 :
1,5), daerah perut melebar dan
datar, badan tebal dan
berpunggung tinggi.
Calon induk harus berasal dari
keturunan yang berbeda, baik
jantan maupun ikan betina.
Calon induk harus mempunyai
sifat cepat tumbuh, sehat, tahan
terhadap penyakit dan
perubahan lingkungan serta
responsive terhadap pakan.
Calon-calon induk yang telah di
seleksi dipelihara di kolam
pemeliharaan induk sampai siap
untuk dipijahkan. Agar diperoleh
induk yang berkualitas dan dapat
menghasilkan telur dalam jumlah
yang maksimal, yang harus
diperhatikan adalah:
Pemeliharaan pakan yang teratur,
pakan yang diberikan harus
mempunyai kadar protein 30-
35%, jumalh pakan yang
diberikan per hari berkisar antara
2-3% dan frekuensi pemberian
pakan sebanyak 2-3 kali.
Kondisi kolam pemeliharaan
harus optimal, yaitu kandungan
oksigen terlarut minimal 5 ppm,
suhu air berkisar25-300C dan air
tidak tercemar.
Padat penebaran calon induk
berkisar antara 0,1 kg/m2 – 0,25
kg/m2.
Calon-calon induk tersebut dipelihara
sampai mencapai ukuran tertentu
untuk dipijahkan. Induk ikan Mas
jantan lebih cepat matang gonad
dibandingkan dengan ikan Mas
betina. Umur ikan Mas jantan 10-12
bulan dengan bobot 0,6-0,75 kg
sudah sampai matang kelamin,
sedangkan induk betina yang ideal
mencapai matang gonad pada umur
1,5-2 tahun dengan berat 2-3 kg.
Induk ikan Mas yang akan dipijahkan
101
harus benar-benar dapat dibedakan
antara jantan dan betina. Adapun
ciri-ciri induk jantan dan betina ikan
Mas dapat dilihat pada Tabel 4.1.
Tabel 4.1. Ciri-ciri Induk Jantan dan Betina Ikan Mas
No Jantan Betina
1. Sirip dada relatif panjang, jari-jari
luar tebal
Sirip dada relatif pendek, lunak,
lemah, jari-jari luar tipis
2. Lapisan sirip dada kasar Lapisan dalam sirip dada licin
3. Kepala tidak melebar Kepala relatif kecil, bentuk agak
meruncing
4. Tubuh lebih tipis/langsing,
ramping dibandingkan betina
pada umur yang sama
Tubuh lebih tebal/gemuk
dibandingkan jantan pada umur
yang sama
5. Gerakannya gesit Gerakannya lamban dan jinak
6. Sehat dan tidak cacat Sehat dan tidak cacat
7. Sisik teratur dan warna cerah Sisik teratur dan warna cerah
Induk ikan Mas jantan dan betina
harus dipelihara dalam kolam yang
terpisah agar ikan cepat matang
kelamin dan tidak terjadi perkawinan
liar. Induk yang dipelihara dengan
baik akan dapat mencapai matang
gonad. Adapun ciri-ciri induk ikan
Mas yang matang gonad dapat
dilihat pada Tabel 4.2. dan Gambar
4.3 dan Gambar 4.4.
Tabel 4.2 . Ciri-ciri Induk Jantan dan Betina Matang Gonad
No Jantan Betina
1. Tubuh ramping Perut membulat dan lunak jika
diraba
2. Mengeluarkan cairan putih/
sperma bila perut ditekan ke arah
anus
Genital papilla mengembang,
agak terbuka dan berwarna
kemerahan
3. Lubang anus melebar dan
menonjol (agak membengkak)
102
Gambar 4.3. Induk ikan mas betina tampak atas (kiri) dan genital papilla
(kanan)
Gambar 4.4. Induk ikan mas jantan tampak atas (kiri), genital papilla (kanan)
4.1.5.3. Seleksi induk ikan nila
Pengelolaan induk dalam kegiatan
usaha pembenihan mempunyai
peran yang sangat penting dalam
menunjang keberhasilan, karena
induk merupakan salah satu faktor
utama yang akan menentukan
kualitas dan kuantitas benih yang
dihasilkan.
Pengelolaan induk dilakukan atas
dasar sifat induk dan kebutuhan
induk agar mampu hidup dan
berkembang-biak secara optimal.
Ruang lingkup pengelolaan induk
dengan mengacu pada ketercapaian
efisiensi suatu usaha pembenihan
ikan dapat di kelompokan ke dalam
tiga kelompok yaitu pengadaan induk,
pemeliharaan calon induk, dan
peningkatan mutu induk atau
mempertahankan mutu induk.
Untuk dapat mencapai efisiensi
suatu usaha pembenihan, dalam
103
pengadaan induk ada dua hal yang
harus diperhatikan yaitu kuantitas
calon induk dan kualitas calon induk.
Perhitungan untuk menentukan
berapa jumlah induk yang harus
tersedia dalam suatu unit
pembenihan, agar dapat
menghasilkan benih sesuai dengan
peluang atau pangsa pasar yang ada,
maka dalam menghitung jumlah
induk harus mempertimbangkan 4
aspek yaitu :
Skala usaha, yaitu satuan unit
usaha terkecil dalam pembenihan
ikan nila yang secara ekonomis
masih mampu memberikan
efisiensi dan keuntungan yang
optimal.
Kuantitas dan kontinuitas
produksi, yaitu banyaknya produk
(benih) yang harus dihasilkan
sesuai dengan kriteria yang
ditentukan dalam periode dan
interval waktu tertentu secara
terus menerus sesuai dengan
target yang telah ditentukan.
Produktifitas induk, yaitu
kemampuan induk betina dari
setiap pemijahan untuk
menghasilkan benih ikan nila
sesuai dengan kriteria yang
ditentukan.
Mortalitas induk, yaitu prosentase
jumlah induk yang hilang selama
pemeliharaan (umur produktif)
baik yang disebabkan oleh
kematian/hilang atau sesuatu hal
sehingga induk tersebut tidak
berproduksi untuk menghasilkan
telur.
Dari aspek tersebut diatas secara
praktis jumlah induk ikan nila pada
suatu areal/kolam pemijahan
ditentukan oleh induk jantan dan
ukuran induk. Hal ini disebabkan sifat
ikan nila memijah adalah dimana
induk jantan akan membuat suatu
daerah teritorial yang tidak boleh
digangggu ikan lain. Dengan
demikian jumlah ikan betina
umumnya lebih banyak dari pada
ikan jantan agar mudah memberi
kesempatan pada jantan untuk dapat
menemukan betina yang matang
gonad.
Setelah mengetahui tanda-tanda
calon induk yang baik pada ikan nila,
selanjutnya kita harus mampu
membedakan induk jantan dan induk
betina. Untuk dapat membedakan
antara induk jantan dan betina dapat
dilihat pada Tabel 4.5 dan Gambar
4.5.
Tabel 4.3 . Ciri-ciri Induk Jantan dan Betina
CIRI-CIRI INDUK BETINA CIRI-CIRI INDUK JANTAN
Dagu relatif kecil berwarna putih.
Sirip dada berwarna hitam dan
pendek.
Perut melebar berwarna putih.
Dagu menonjol berwarna merah.
Sirip dada berwarna coklat
kemerahan dan relatif panjang.
Perut pipih warna hitam.
104
Bila perut diurut dari dada ke
genitalia keluar cairan bening.
Bila perut diurut dari dada ke
genitalia tidak keluar cairan.
Gambar 4.5. Induk ikan nila
4.1.5.4. Seleksi induk ikan patin
Induk ikan patin dapat dipijahkan
setelah umur 2-3 tahun. Pada umur
tersebut induk ikan patin telah
memiliki berat badan 3-5 kg/ekor.
Ciri-ciri induk betina adalah memiliki
bentuk urogenital bulat dan perut
relatif lebih mengembang
dibandingkan induk jantan.
Sedangkan induk jantan memiliki
papila dan bagian perut lebih
ramping.
Induk betina ikan patin yang matang
gonad mempunyai ciri-ciri bagian
perut membesar ke arah lubang
genital berwarna merah,
membengkak dan mengkilat agak
menonjol serta jika diraba bagian
perut terasa lembek. Sedangkan
ciri-ciri induk jantan ikan patin yang
dapat dipijahkan adalah bila bagian
perut diurut ke arah anus akan keluar
cairan putih dan kental. Untuk dapat
membedakan induk ikan patin jantan
dan betina yang matang gonad dapat
dilihat pada Gambar 4.6.
Gambar 4.6. Induk ikan patin jantan
(atas) dan betina
(bawah)
Induk ikan yang telah diseleksi
selanjutnya diberok (dipuasakan)
selama 1-2 hari. Selama
pemberokan induk ikan, air terus
menerus dialirkan ke kolam/wadah
pemberokan. Tujuan pemberokan
adalah untuk mengurangi kadar
lemak pada saluran pengeluaran
telur. Oleh sebab itu selama
pemberokan induk ikan tidak diberi
makan. Bila bagian perut induk ikan
betina masih tampak membesar
setelah pemberokan, induk ikan
tersebut dikanulasi (dilakukan
penyedotan telur ikan dengan
kateter) untuk menetukan apakah
induk ikan tersebut sudah siap
dipijahkan. Untuk lebih jelasnya
dapat dilihat pada Gambar 4.6.
105
Kanulasi bertujuan untuk mengetahui
derajat kematangan gonad induk
betina dengan mengukur
keseragaman diameter telur.
Kanulasi dilakukan dengan cara
menyedot telur dengan
menggunakan selang kecil (kateter)
berdiameter 2-2,5 mm. Selang kecil
tersebut dimasukkan ke dalam
lubang urogenital sedalam 4 - 6 cm
ke dalam ovarium. Ujung selang
yang lain dihisap dengan mulut
selanjutnya selang tadi ditarik keluar
dari lubang urogenital, lalu ditiup
untuk mendorong telur keluar dari
selang. Telur yang keluar dari selang
ditampung pada lempeng kaca tipis
atau pada wadah lain. Selanjutnya
telur tersebut diukur garis tengahnya
menggunakan penggaris. Bila 90 -
95% telur memiliki garis tengah 1,0 –
1,2 mm, berarti induk betina tersebut
dapat dipijahkan. Selain itu ciri-ciri
telur yang telah matang adalah akan
cepat mengering atau saling
berpisah bila diletakkan dipunggung
tangan.
Gambar 4.7. Kanulasi induk ikan
patin
4.2. TEKNIK PEMIJAHAN IKAN
Pemijahan adalah proses
perkawinan antara ikan jantan dan
betina. Dalam budidaya ikan teknik
pemijahan ikan dapat dilakukan
dengan 3 macam cara, yaitu:
1. Pemijahan ikan secara alami,
yaitu pemijahan ikan tanpa
campur tangan manusia, terjadi
secara alamiah (tanpa pemberian
rangsangan hormon).
2. Pemijahan ikan secara semi
intensif, yaitu pemijahan ikan
yang terjadi dengan memberikan
rangsangan hormon untuk
mempercepat kematangan gonad,
tetapi proses ovulasinya terjadi
secara alamiah di kolam.
3. Pemijahan ikan secara intensif,
yaitu pemijahan ikan yang terjadi
dengan memberikan rangsangan
hormon untuk mempercepat
kematangan gonad serta proses
ovulasinya dilakukan secara
buatan dengan teknik stripping/
pengurutan.
Untuk dapat melakukan pemijahan
ikan pada beberapa jenis ikan
budidaya maka harus memahami
tentang tingkat kematangan gonad
dan faktor-faktor yang sangat
berpengaruh terhadap kematangan
gonad. Hal ini harus dipelajari karena
tingkat kematangan gonad ikan
sangat mempengaruhi keberhasilan
pemijahan ikan. Walaupun saat ini
telah banyak diketemukan hormon–
hormon perangsang pertumbuhan
dan pematangan gonad, namun
tetap saja membutuhkan waktu
dalam proses pertumbuhan dan
pematangannya.
Tingkat kematangan gonad ikan
dapat dideteksi dengan melihat
106
tanda-tanda morfologi dan fisiologi
sel telur atau sel sperma. Tandatanda
morfologis ikan matang gonad
untuk ikan betina antara lain adalah :
gerakannya lamban, perut gembung,
perut bila diraba terasa lunak, kulit
kadang kelihatan memerah, kadangkadang
telur telah keluar pada
lubang genital, lubang genital
memerah. Dan tanda-tanda sel telur
matang secara fisiologis adalah:
Polar Body I telah keluar, Germinal
Vesicle/GV (Inti sel) telah menepi
berada di depan microfile, warna
telur telah transparan, ukuran telur
mendekati 1 mm. Sejenak sebelum
ovulasi GV akan melebur sehingga
disebut Germinal Vesicle Break
Down (GVBD).
Sedangkan tanda-tanda ikan jantan
matang gonad secara morfologis
antara lain adalah : ikan lebih
langsing dibanding ikan betina,
gerakannya lincah, bila diurut kearah
lubang genital cairan seperti susu
akan keluar. Dan tanda-tanda sel
sperma matang antara lain adalah :
warna kental seperti susu/santan,
organ sperma telah lengkap,
motilitas tinggi, kenormalan lebih dari
90%. Disamping kesehatan,
kenormalan ikan merupakan unsur
yang penting juga, karena faktor ini
akan diturunkan kepada anaknya.
Pada saat pemilihan induk ikan
matang gonad usahakan induk ikan
tidak stress. Jika induk ikan stress
walaupun kematangan gonadnya
sudah memenuhi, ikan tersebut
biasanya tidak akan memijah. Jika
demikian keadaannya pemijahan
ikan bisa tertunda atau malah tidak
jadi memijah, yang akhirnya telur
ikan akan terserap kembali atau
atresia.
4.2.1. Perkembangan dan
pematangan gonad
Perkembangan telur dipengaruhi
oleh faktor dalam dan luar dari ikan
(lingkungan dan pakan). Pengaruh
faktor lingkungan terhadap
gametogenesis dibantu oleh
hubungan antara poros Hipotalamus-
Pituitary-Gonad melalui proses
stimulisasi atau rangsangan.
Hormon-hormon yang ikut dalam
proses ini adalah GnRH dan Steroid.
Keadaan ini memungkinkan untuk
perlakuan pemberian hormone baik
melaui penyuntikan, implantasi dan
pakan.
Hormon sangat penting dalam
pengaturan reproduksi dan sistem
endocrine yang ada dalam tubuh,
yang reaksinya lambat untuk
menyesuaikan dengan keadaan luar.
Hasil kegiatan sistem endocrine
adalah terjadinya keselarasan yang
baik antara kematangan gonad
dengan kondisi di luar, yang cocok
untuk mengadakan perkawinan.
Aktivitas gonadotropin terhadap
perkembangan gonad tidak langsung
tetapi melalui biosintesis hormon
steroid gonad pada media stadia
gametogenesis, termasuk
perkembangan oosit (vitelogenesis)
pematangan oosit, spermato-genesis
dan spermiasi.
Hormon gonadotropin dengan
glicoprotein rendah dapat mengontrol
vitelogenesis, sedangkan yang tinggi
mengakibatkan aksi ovulasi. Hormon
tiroid akan aktif bersinergi dengan
107
gonadotropin untuk mempengaruhi
perkembangan ovari dan
kemungkinan lain juga untuk
meningkatkan sensitivitas pengaruh
gonadotropin. Sel target hormon
gonadotropin adalah sel teka yang
merupakan bagian luar dari lapisan
folikel. Pada ikan goldfish dan
rainbowtrout dihasilkan 17-
hidrokxy-20-dihidroxyprogresterone
(17 , 20-Pg) oleh lapisan folikel
sebagai respon terhadap aktifitas
gonadotropin untuk merangsang
kematangan telur. Teori yang lain
kontrol endokrin terhadap
kematangan oosit dan ovulasi pada
teleostei adalah GTH merangsang
(a) sintesa steroid pematangan pada
dinding folikel (ovari) dan (b) sekresi
mediator ovulasi.
Sistem endokrin dan sistem saraf
merupakan sistem kontrol pada
semua makhluk hidup tidak
terkecuali ikan, sistem ini adalah
cara utama tubuh untuk
menyampaikan informasi antar sel
dan jaringan yang berbeda. Dalam
sistem endokrin dilakukan sekresi
internal dari substansi aktif biologik.
Sistem endokrin menggunakan
messenger kimia yang disebut
hormone yang ditransportasikan oleh
sistem pembuluh darah. Sistem
endokrin lebih lambat daripada
sistem saraf karena hormone harus
melalui perjalanan ke sistem
memutar untuk mencapai organ
target.
Berdasarkan dari sudut ilmu,
endokrin merupakan mediasi
biokimia pada proses fisiologis.
Mediasi ini dapat terjadi antar
populasi, antar organisma, antar
jaringan di dalam suatu organisma,
antar organ dan sel, dan juga antar
generasi pada kasus hormon di
dalam telur. Hormon sebagai
mediator biokimiawi dilepas dari
tempat produksinya menuju organ
target melalui beberapa cara, yaitu
(a) difusi sederhana di dalam sel
atau dari satu sel ke sel lainnya di
dalam organ; (b) transportasi melalui
darah atau berbagai cairan tubuh
sehingga langsung mencapai organ
atau sel; atau (c) secara tidak
langsung melalui lingkungan luarnya.
Sistem endokrin didalam tubuh
sangat kompleks tetapi biasanya
mengikuti dua prinsip. Pertama
berdasarkan responnya dibagi
menjadi dua kelenjar endokrin, yaitu
pituitary dan beberapa kelenjar
dibawah kontrol pituitary. Kedua,
hormone yang dihasilkan oleh
kelenjar tersebut seringkali
menghambat produksi hormone
pituitary, proses ini disebut
penghambatan feedback. Adanya
bentuk kombinasi sistem
penghambatan feedback ini
menyebabkan terjadinya
keseimbangan respons. Jadi sistem
endokrin mengontrol dirinya sendiri
sebagaimana halnya mengontrol
sistem organ yang lain. Skema
pengaturan sekresi hormone
diilustrasikan pada Gambar 4.8.
108
Gambar 4.8. Skema pengaturan
sekresi hormone, + menunjukkan
sekresi hormone; - menunjukkan
mekanisme feedback
Secara umum sistem endokrin ikan
sama dengan vertebrata lainnya.
Ikan memiliki urofisis yang terletak
pada pangkal ekor, tetapi tidak
memiliki kelenjar paratiroid. Sistem
endokrin juga memungkinkan tubuh
untuk dapat mengatasi stress.
Kelenjar endokrin dilihat dari asal
embrionya berdiferensiasi dari
seluruh lapisan germinal. Untuk yang
berasal dari mesoderm (korteks
adrenal, gonad) menghasilkan
hormone-hormon steroid; dan yang
berkembang dari ectoderm atau
endoderm mensekresikan hormone
amino termodifikasi, peptid atau
protein.
Kelenjar endokrin pada ikan menurut
Lagler et al (1962) terdapat pada
beberapa organ antara lain adalah
pituitary, pineal, thymus, jaringan
ginjal, jaringan kromaffin, interregnal
tissue, corpuscles of stannous,
thyroid, ultibranchial, pancreatic
islets, intestinal tissue, interstitial
tissue of gonads dan urohypophysis.
Untuk lebih jelasnya dapat dilihat
pada Gambar 4.9.
Gambar 4.9. Letak dan jenis kelenjar endokrin ikan dari arah depan ke arah
belakang (Lagler et al.,1962)
109
Kelenjar endokrin pada ikan
menghasilkan jenis hormone tertentu,
seperti pada kelenjar utama pada
ikan adalah pituitary dimana pada
kelenjar tersebut menghasilkan
sembilan macam sel penghasil
hormone yaitu prolactin (PL),
corticotrophs (CT), Gonadotrophs
(GTH), Somatotrophs (STH),
Thyrotrophs (TSH), Melanotrophs
(MSH) dan Neurosecretory nerve
ending (NS). Hormon yang terdapat
pada kelenjar pituitary antara lain
adalah Oxytocin yang berfungsi
merangsang konstraksi urine dan
kelenjar susu, Anti Diuretic Hormone
(ADH) yang berfungsi menaikkan
tekanan darah lewat aksinya pada
arteriola dan menggiatkan reabsorbsi
air dari tubuli ginjal serta hormon ini
sangat penting dalam osmoregulasi
yaitu pengaturan tekanan osmosis
cairan tubuh. Kedua hormon tersebut
terdapat pada bagian posterior
pituitary. Pada bagian anterior
pituitary terdapat beberapa macam
hormon diantaranya adalah hormon
pertumbuhan yang berfungsi
merangsang pertumbuhan dan
mengontrol proses osmoregulasi;
hormon prolactin pada mamalia
menstimulasi aksi produksi susu,
pada ikan kontrol hidromineral (air
tawar) hyperosmotic regulation pada
ikan teleost selain itu prolactin pada
ikan air tawar berfungsi untuk
maintannce ion dan water
permeability pada ephitelium dari
organ osmoregulasi, dan pada
beberapa ikan prolactin memberikan
efek dalam mengontrol gonadal
steroidogenesis, metabolisme lemak
dan parental panning.
Hormon selanjutnya yang dihasilkan
dari anterior pituitary adalah Follicle
Stimulating Hormone (FSH) yang
merangsang produksi gamet oleh
gonad atau merangsang
pematangan gonad (vitellogenesis),
Luteinezing Hormone (LH) yang
merangsang produksi sex hormone
yaitu testosterone, estrogen,
progesterone atau merangsang
pematangan akhir.
Kelenjar lainnya penghasil hormon
adalah kelenjar Thyroid antara lain
adalah Tiroksin Tetraiodothyronine
(T4), Triidothyronine (T3) dan
Calcitonin. Fungsi dari hormon
tersebut antara lain adalah
meningkatkan laju metabolisme,
esensial untuk pertumbuhan dan
perkembangan normal. Hormon
Thyroid pada ikan selalu berasosiasi
dengan hormone pertumbuhan dan
cortisol memberikan kontribusi pada
kontrol pertumbuhan dan
perkembangan, metabolisme dan
osmoregulasi. Sedangkan Calcitonin
merangsang penyimpanan kalsium
pada tulang, sekresi calcitonin
dirangsang oleh tingginya kalsium
dalam darah.
Pada kelenjar adrenal cortex yang
merupakan lapisan luar dari kelenjar
adrenal menghasilkan beberapa
jenis hormone antara lain adalah
cortisol (A. Glucocorticoid),
Aldoserone (Mineralocorticoid),
kortikosterone. Produksi cortisol
meningkat sebagai akibat dari
berbagai stimulant stress yaitu
rendahnya kualitas air, penanganan,
kenyamanan ikan, pollutant dan
water acidification. Fungsi utama
cortisol ini berkaitan dengan
metabolisme energi, ion regulation
dan respon terhadap stress.
110
Kelenjar adrenal medulla atau sel
kromaffin menghasilkan hormone
antara lain adalah ephineprin dan
norephinephrin. Epinephrin berfungsi
mobilisasi glikogen, bertambahnya
aliran darah lewat otot skeletal,
bertambahnya konsumsi oksigen
denyut jantung, sedangkan
norephineprin berfungsi pada
neurotransmitter adrenergic, naiknya
tekanan darah dan konstraksi
arteriola dan venula.
Hormon yang dihasilkan oleh
kelenjar endocrine pancreas pada
kebanyakan vertebrata terdapat
pada pulau-pulau individu dari sel
sekresi yang diliputi oleh connective
tissue dan terbenam dalam exocrine
tissue dari pancreas. Pada Islet of
Langerhans ini mengandung 4 tipe
sel endocrine yaitu A cell (Glucagon),
B cell (Insulin), D cell
(Somatostantin) dan F cell atau PP
(Pancreatic Polypeptide). Glucagon
berfungsi meningkatkan glukosa
darah, merangsang katabolisme
protein, selain itu dapat menstimulasi
lipolysis pada ikan atau memobilisasi
lemak. Insulin pada ikan berfungsi
untuk menurunkan glukosa darah,
menambahkan pemakaian glukosa
dan sintesis protein serta lemak dan
menurunkan glukoneogenesis dan
merangsang glikogenesisi.
Somotostantin merupakan hormone
yang menghambat pertumbuhan,
peran pada ikan secara fisiologis
belum jelas tetapi dengan
menyuntikkan somatostantin pada
coho salmon dapat menyebabkan
penurunan insulin, plasma,
glucagons menurun dan level GLP
serta berhubungan dengan
penurunan glikogen hati dan
hyperglycemia.
Pada kelenjar pineal dihasilkan
hormone melatonin, sedangkan pada
kelenjar thymus dihasilkan hormone
Thymosin, Pada gastrointestinal
endocrine cels dihasilkan beberapa
hormone utama antara lain adalah
Glucagon, Glucagon Like Peptide,
Somatostantin, Pancratic
Polypeptide, Gastrin, Sekretin,
Cholecytokin, Bombensin,
Enkephalin, Tachikinins, Serotonin,
Vasoactive Intestinal Peptida,
neuropeptide, Gatric Inhibitory
peptide. Sedangkan pada Urophysis
dihasilkan hormone Urotensin I dan
Urotensin II yang secara fisiologis
masih belum jelas fungsinya namun
diduga berperan dalam
osmoregulator dan fisiologi
reproduksi, ekstrak urophysis
menyebabkan konstraksi gonadal
smooth muscle. Hal ini dimungkinkan
Urotensin mensikronisasi
osmoregulasi dan reproduksi pada
ikan matang gonad. Urotensin II
mempunyai fungsi antara lain adalah
kontraksi jantung, kantung kemih,
usus, penyerapan ion di usus.
Pada jaringan chromaffin juga
dihasilkan hormone antara lain
adalah catecholamines, adrenalin
dan nor adrenalin. Pada teleost
katekolamin memiliki pengaruh
penting pada peredaran oksigen ke
jaringan, mempengaruhi pergerakan
ion pada ikan yang meningkatkan
pertukaran ion melalui insang
dengan menstimulasi peningkatan
luar area gill lamella dalam kontak
dengan lingkungan.
Pada subbab ini akan dibahas
tentang mekanisme aksi-aksi
hormone steroid pada ikan. Hormon
111
steroid adalah hormone yang
memiliki struktur kimia berdasarkan
pada inti steroid, yang mirip dengan
cholesterol dan sebagian besar jenis
hormone ini berasal dari kolesterol
itu sendiri, disekresi oleh korteks
adrenal (kortisol dan aldosteron),
ovarium (estrogen : estradiol-17ß,
esteron, estriol dan lain-lain,
progesterone), testis (androgen :
androstendion, testosterone, 11-
ketotestosteron dan lain-lain) dan
plasenta (estrogen dan
progesterone). Menurut Koolman &
Rohm (2001) hormone adalah bahan
kimia pembawa sinyal yang dibentuk
dalam sel-sel khusus pada kelenjar
endokrin. Hormon disekresikan ke
dalam darah kemudian disalurkan ke
organ-organ yang menjalankan
fungsi-fungsi regulasi tertentu secara
fisiologik dan biokimia. Sel-sel
sasaran pada organ sasaran
memiliki reseptor yang dapat
mengikat hormone, sehingga
informasi yang diperoleh dapat
diteruskan ke sel-sel akhirnya
menghasilkan suatu respon. Pesan
hormone disampaikan pada sel-sel
sasaran menurut dua prinsip yang
berbeda. Hormon lipofilik masuk
kedalam sel dan bekerja pada inti sel,
sedangkan hormone hidrofilik
bekerja pada membrane sel. Hormon
steroid dan tiroksin termasuk
kedalam kelompok hormone lipofilik.
Hormon ini menembus membrane
sel dan berikatan pada suatu
reseptor spesifik didalam sasaran.
Berdasarkan uraian diatas maka
mekanisme hormone steroid adalah
dengan cara hormone steroid masuk
kedalam sel dan berikatan dengan
reseptor didalam sitoplasma.
Hormon reseptor yang kompleks
masuk kedalam nucleus dimana
akan berikatan dengan chromatin
dan mengaktivasi gen yang spesifik.
Gen (DNA) yang mengandung
informasi akan memproduksi protein.
Ketika gen aktif maka protein akan
dihasilkan secara diagram dapat
dilihat pada Gambar 4.10.
Gambar 4.10. Mekanisme hormone
steroid
Teori lain untuk pematangan sel telur
adalah adanya hubungan erat antara
poros Hipotalamus-Pituitary-Gonad.
Hipotalamus akan melepas GnRH
jika dopamin tidak aktif. Fungsi
GnRH adalah merangsang keluarnya
GtH (Gondotropin) yang berada pada
Hipofisa. Jika GtH keluar maka
hormon Testosteron yang berada
pada sel theca keluar, sedangkan
hormon Testosteron akan
merangsang dikeluarkannya hormon
Estradiol-17 yang berada pada sel
granulose. Hormon Estradiol-17 ini
akan menggertak kerja liver untuk
memproses precursor kuning telur
(vitellogen) untuk dikirimkan ke sel
telur sebagai kuning telur. Dengan
demikian pertumbuhan telur terjadi.
Sebagai pematang sel telur
diperlukan media MIH (Maturtaion
Inducing Hormon) dan MPF
112
(Maturation Promoting Factor) untuk
hormon 17,20-dyhidroxy-4-
pregnen-3-one yang bersumber dari
sel granulose.
4.2.2. Kelenjar hipofisa, HCG dan
ovaprim
Kelenjar hipofisa banyak sekali
mengandung hormon terutama
hormon yang berhubungan dengan
perkembangan dan pematangan
gonad. Hormon tersebut diantaranya
adalah Gonadotropin yaitu GTH I
dan GTH II, sehingga ekstrak
kelenjar hipofisa sering digunakan
sebagai perangsang pematangan
gonad. Letak kelenjar hipofisa ini
terdapat pada bagian otak sebelah
depan. Kelenjar ini menempel pada
infundubulum dengan suatu tangkai
yang pendek, agak panjang atau
pipih bergantung pada jenis ikannya.
Untuk lebih jelasnya dapat dilihat
pada Gambar 4.11 tentang otak dan
bagian-bagian pada ikan maskoki
dan hampir sama untuk semua ikan.
Gambar 4.11. Representasi diagram pada penampang sagittal dari otak goldfish sebagai dasar
penampang seri menggambarkan topografi dari GHRH-ir perikarya pada otak, pinealocytes
dalam pineal dan corticotrophs pada pituitary (siklus yang gelap). Garis putus-putus
mengindikasikan GHRH-ir fiber tract. Catatan bahwa GHRH-ir fiber pada area NPO dan PVO
tidak asli pada nuclei ini., tetapi area transverse. AVT, Area Ventralis Telencephali, CBL,
Cerebellum, FL, Facial Lobes, GNC, Glomerular Nuclear Complex, INF, Hypothalamic Inferior
Lobe, LR, Lateral Recess, NLL, Nucleus of the Lateral Lemniscus, NLTi Nucleus Lateralis
Tuberis pars Lateralis, NLTp, Nucleus Lateralis Tuberis pars posterioris, NPO, Nucleus
Preopticus, NPP, Nucleus Preopticus Periventricularis; OLB, Olfactory Bulb; ON, Optic Nerve;
OT, Optic Tectum; PIN, pineal; PIT, Pituitary; PVO, Paraventricular Organ; SGN, Secondary
Gustatory Nucleus; TEL, Telencephalon. (Rao, et al., 1995).
Pematangan oosit dan ovulasi telur
dengan menggunakan ekstraksi
kelenjar hipofisa banyak
mengandung kelemahan diantaranya
adalah:
(1) hilangnya ikan donor karena
diambil kelenjar hipofisanya.
(2) standarisasi ekstrak kelenjar
hipofisa ikan sebagai bahan suntikan
113
untuk induksi pematangan akhir sel
telur dan sel sperma tidak tepat.
(3) belum diketahui dengan pasti
hormon mana yang sebenarnya
berpotensi untuk ovulasi dan
kematangan gonad.
(4) penyakit mudah menular.
Bagi para pembudidaya ikan yang
akan melakukan pemijahan ikan
secara buatan dengan menggunakan
kelenjar hipofisa dapat dengan
mudah membuatnya. Adapun cara
membuat kelenjar hipofisa ini adalah
sebagai berikut :
1. Menentukan dosis yang akan
digunakan dalam proses
pemijahan.
2. Menimbang ikan donor dan ikan
resipien .
3. Ikan donor diletakkan di atas
talenan yang tidak licin dan
dipotong secara vertikal dengan
titik pemotongan dibagian
belakang tutup insangnya hingga
kepala ikan putus atau terpisah
dari badannya (Gambar 4.12, kiri
atas).
4. Kepala ikan yang terpotong
dihadapkan keatas dan disayat
dari pangkal hidung ke bawah
bagian potongan pertama hingga
tulang tengkorak ikan terbuka
dan otak kelihatan jelas (Gambar
4.12 kiri tengah dan bawah).
5. Kemudian kelenjar otak
disingkap/diangkat dan akan
tampak kelenjar hipofisa
dibawah kelenjar otak (Gambar
4.12, kanan).
6. Dengan menggunakan pinset,
kelenjar hipofisa diambil dan
diletakkan di dalam cawan
(Gambar 4.12, kanan)
114
Gambar 4.11. Pengambilan kelenjar hipofisa
7. Selanjutnya dibersihkan dengan
aquadest hingga kotoran dan
darah yang melekat hilang.
8. Kelenjar hipofisa dimasukkan ke
dalam tabung pengerus. Kelenjar
hipofisa digerus menggunakan
alu kaca hingga hancur (Gambar
4.12)
Gambar 4.12. Penggerusan kelenjar
hipofisa
9. Larutan hipofisa diambil dari
gelas pengerus menggunakan
115
alat suntik/spuit Dimasukkan ke
dalam tabung reaksi/tabung
sentrifuse (Gambar 4.13)
Gambar 4.13. Pembuatan ekstrak
kelenjar hipofisa
11. Larutan hipofisa disentrifuse dan
didiamkan selama satu menit
sampai terbentuk dua lapisan
pada larutan tersebut. Larutan
yang agak keruh dibagian atas
endapan diambil dengan jarum
suntik (Gambar 4.14 dan Gambar
4.15).
Gambar 4.14. Pemutaran alat
sentrifuse
Gambar 4.15. Pengambilan ekstrak
kelenjar hipofisa
11. Larutan siap disuntikkan pada
ikan yang akan dipijahkan
(Gambar 4.16)
Gambar 4.16. Ekstrak kelenjar
hipofisa siap disuntikkan pada ikan
Hormon Chorionic Gonadotropin
(hCG) adalah hormon gonadotropin
yang disekresi oleh wanita hamil dan
disintesa oleh sel-sel sintitio
tropoblas dari placenta. HCG
mempunyai dua rangkaian rantai
peptida yaitu yang mengandung
92 asam amino dan mengandung
116
145 asam amino. Pada beberapa
spesies menggunakan hCG sebagai
pemacu merangsang pematangan
gonad sangat efektif, bisa sebagai
pengganti ekstrak kelenjar hipofisa
tetapi pada beberapa spesies
penggunaan hCG kurang efektif
mesti dikombinasikan dengan
Pregnan Mare Serum Gonadotropin
(PMSG) atau ovaprim. HCG
berperan dalam pemecahan dinding
folikel saat akann terjadi ovulasi. LH
(Litunuising Hormon) adalah hormon
perangsang ovulasi yang kuat, hCG
memiliki potensi LH. Fungsi LH
dalam sel theca akan merangsang
PGE (prostaglandin) dan PGF2 dari
asam arachidonad. PGF2 juga
mempunyai peran penting dalam
pecahnya folikel dan pengeluaran
oosit yang telah matang.
OVAPRIM adalah campuran analog
salmon GnRH dan Anti dopamine
dinyatakan bahwa setiap 1 ml
ovaprim mengandung 20 ug sGnRHa(
D-Arg6-Trp7, Lcu8, Pro9-NET) –
LHRH dan 10 mg anti dopamine.
Ovaprim juga berperan dalam
memacu terjadinya ovulasi. Pada
proses pematangan gonad GnRH
analog yang terkandung didalamnya
berperan merangsang hipofisa untuk
melepaskan gonadotropin.
Sedangkan sekresi gonadotropin
akan dihambat oleh dopamine. Bila
dopamine dihalangi dengan
antagonisnya maka peran dopamine
akan terhenti, sehingga sekresi
gonadotropin akan meningkat.
Dari ketiga macam hormon yang
dapat digunakan untuk melakukan
pemijahan ikan seperti yang telah
dijelaskan, maka pemilihan hormon
yang akan digunakan sangat
bergantung pada jenis ikan yang
akan dibudidayakan, harga ekonomis
dan efisiensi dalam penggunaannya.
Ketiga hormon tersebut prinsipnya
adalah membantu proses
kematangan gonad ikan yang akan
menentukan keberhasilan proses
pemijahan.
4.2.3. Perjalanan hormon ke sel
target
Bagaimana hormon yang disuntikan
itu mencapai sel target. Hormon
tersebut mencapai sel target melalui
komunikasi antar sel. Ada tiga cara
sel-sel itu berkomunikasi yaitu :
1. Sel menskresikan senyawa kimia
(chemical signaling) kepada sel
lain ditempat yang berjauhan.
2. Sel mengekspresikan molekul
permukaan yang mempengaruhi
sel lainnya yang berkontak fisik
dengan sel tersebut.
3. Sel membentuk ’gap juction’ yang
menghubungkan masing-masing
sitoplasma sehingga dapat terjadi
pertukaran molekul-molekul kecil.
Sedangkan komunikasi antar sel
dengan cara sekresi kimia dapat
dibagi berdasarkan jauhnya jarak
yang dirempuh senyawa kimia
tersebut yaitu:
1. Sinyal endokrin (Endocrine
signaling), dimana sel kelenjar
endokrin akan mensekresikan
hormon yang akan dibawa aliran
darah ke sel target yang
terdistribusi di bagian lain dari
tubuh.
2. Sinyal parakrin (Paracrine
signaling), dimana sel
menskresikan senyawa kimia
117
(local chemical mediator) yang
mempunyai efek terhadap sel
yang berada disekelilingnya.
Senyawa kimia yang diskresikan
ini akan diserap dan diserap
dengan cepat.
3. Sinyal sinaptik (Synaptic
signaling), merupakan suatu
neurotransmitter dan bekerja
khusus untuk sel syaraf pada
suatu daerah khusus yang
disebut chemical synapses.
Sel-sel target akan memberikan
respon terhadap sinyal yang datang
melalui protein khusus yang disebut
receptor.
4.2.4. Stripping dan pembuahan
buatan
Stripping adalah proses
dikeluarkannya telur atau sperma
ikan dengan bantuan manusia/bukan
secara alamiah. Proses pengeluaran
telur atau sperma tersebut tentu saja
menghendaki cara tertentu agar telur
atau sperma tidak rusak ataupun
justru induk ikan yang akan
rusak/mati. Seseorang yang akan
melakukan stripping telur atau
sperma ikan mesti harus telah tahu
cara stripping yang baik, dan tahu
posisi gonad ikan, dengan demikian
arah urutan/stripping akan benar
atau organ yang diurut tidak salah.
Feeling seorang pengurut sebaiknya
telah menyatu dengan induk ikan
tersebut. Kenapa demikian karena
seseorang tersebut akan mengerti
kapan pengurutan diberhentikan dan
kapan akan dimulai lagi. Oleh karena
itu seorang pembudidaya harus
memahami tentang proses secara
fisiologis ovulasi dan akan dibahas
pada subbab ini. Telur atau sperma
tidak akan bisa distripping jika proses
fisiologis ovulasi belum sempurna.
Pembuahan secara buatan dilakukan
dengan bantuan manusia, dengan
cara mempertemukan sel telur
dengan sel sperma pada suatu
tempat tertentu dan dengan alat
tertentu. Proses melakukan
pembuahan buatan ini diperlukan
sikap kehati-hatian agar telur tidak
luka, sperma tidak luka atau proses
penempelan sperma pada sel telur
merata. Meratanya sperma
menempel pada telur akan
menambah jumlah pembuahan
sperma pada sel telur. Proses
pembuahan buatan ini membutuhkan
waktu tertentu, maksudnya jika
terlalu lama maka sperma atau sel
telur bisa mati atau terganggu. Jika
demikian keadaannya proses
pembuahan tidak akan berhasil
dengan baik. Ingat telur dan sperma
itu hidup sehingga bermetabolisme.
Kematangan telur dan sperma ikan
dipastikan diperiksa dibawah
mikroskop, jika telah memenuhi
tanda-tanda tersebut di atas maka
segeralah dilakukan stripping.
Langkah pertama lakukan stripping
induk jantan terlebih dahulu dengan
prosedur yang telah ditentukan.
Sperma adalah gamet jantan yang
dihasilkan oleh testis. Cairan sperma
adalah larutan spermatozoa yang
berada dalam cairan seminal dan
dihasilkan oleh hidrasi testis.
Campuran antara seminal plasma
dengan spermatozoa disebut semen.
Dalam setiap testis semen terdapat
jutaan spermatozoa.
118
Sperma ikan yang sudah matang
terdiri dari kepala, leher dan ekor.
Ada sperma yang mempunyai
“middel Piece” sebagai penghubung
antara leher dan ekor. Di dalam
middle piece ini berisi mitokondria
yang akan berfungsi untuk
metabolisme sperma.
Kepala sperma, kepala sperma
terisi materi inti, chromosom terdiri
dari DNA yang bersenyawa dengan
protein. Informasi genetika yang
dibawa oleh spermatozoa
diterjemahkan dan disimpan di dalam
nolekul DNA. Sperma yang
didalamnya terkandung chromosom-
X akan menghasilkan embrio betina
sedangkan sperma mengandung
chromosom-Y akan menghasilkan
embrio jantan.
Ekor sperma, ekor sperma berfungsi
memberi gerak maju seperti gerak
cambuk. Selubung mitokondria
berasal dari pangkal kepala
membentuk dua struktur spiral
kearah berlawanan dengan arah
jarum jam. Bagian tengah ekor
merupakan gudang energi untuk
kehidupan dan pergerakan
spermatozoa oleh proses-proses
metabolik yang berlangsung di dalam
helix mitokondria. Mitokondria
mengandung enzim-enzim yang
berhubungan dengan metabolisme
spermatozoa. Bagian ini banyak
mengandung fosfolipid, lecithin dan
plasmalogen.Plasmalogen
mengandung satu aldehid lemak dan
satu asam lemak yang berhubungan
dengan glicerol maupun cholin.
Asam lemak dapat dioksidasi dan
sebagai sumber energi untuk aktifitas
sperma.
Komposisi kimiawi sperma pada
plasma inti (nukleoplasma)
diantaranya adalah DNA, Protamine,
Non Basik Protein. Sedangkan
seminal plasma mengandung protein,
potassium, sodium, calsium,
magnesium, posfat, klarida.
Sedangkan komposisi kimia ekor
sperma adalah protein, lecithin dan
cholesterol.
Sperma tidak bergerak dalam
semen/air mani, tetapi akan segera
bergerak ketika bersentuhan dengan
air. Fruktosa dan galaktosa
merupakan sumber energi utama
bagi sperma ikan mas. Gardiner
dalam Norman (1995) menyatakan
semen yang encer banyak
mengandung glukosa sehingga
memberikan motilitas yang lebih baik.
Sedangkan semen yang kental
banyak mengandung potassium
sehingga akan menghambat motilitas
sperma. Motilitas sperma banyak
dipengaruhi oleh konsentrasi glukosa,
NaCl, KCl, serta Osmolitas media.
Daya tahan hidup sperma
dipengaruhi oleh pH, tekanan
osmotik , elektrolit, non elektrolit,
suhu dan cahaya. Pada umumnya
sperma than hidup dan aktif pada pH
7. Sperma tetap motil untuk waktu
lama di dalam media yang isotonik
dengan darah. Pada umumknya
sperma mudah dipengaruhi oleh
keadaan hipertonik dari pada
hipotonik.
Larutan elektrolit sperti kalium,
magnesium, dapat dipergunakan
sebagai pengencer sperma tetapi
Calsium, pospor dan kalium yang
tinggi dapat menghambat motilitas
119
sperma. Sedangkan cuprum dan
besi merupakan racun bagi sperma.
Larutan non elektrolit dalam bentuk
gula, sperti fruktosa, glukosa dapat
dipergunakan sebagai pengencer
sperma.
Prinsip dasar untuk
mempertahankan agar sperma tetap
hidup adalah dengan menambahkan
sesuatu kedalam semen yang
berintikan mempertahankan pH,
tekanan osmotik serta menekan
pertumbuhan kuman. Untuk
keperluan yang sesuai bagi
kebutuhan sperma dipergunakan
bahan glukosa, kuning telur, air susu
yang mengandung lippoprotein dan
lecithin. Sedangkan untuk
mempertahankan pH semen
dipergunakan sitrat, fosfat dan tris.
Untuk menghambat pertumbuhan
kuman dipergunakan penicilin,
streptomicin, sedangkan untuk
pembekuan diperlukan glicerol.
4.2.5. Ovulasi dan fertilisasi
Setelah telur matang maka telur
akan diovulasikan oleh ikan betina.
Ovulasi itu adalah proses keluarnya
sel telur (oosit) yang telah matang
dari folikel dan masuk ke dalam
rongga ovarium atau rongga perut
(Nagahama, 1990).
Pelepasan sel telur terjadi akibat:
1. Telur membesar.
2. Adanya konstraksi aktif dari
folikel (bertindak sebagai otot
halus) yang menekan sel telur
keluar.
3. Daerah tertentu pada folikel
melemah, membentuk benjolan
hingga pecah dan terbentuk
lubang pelepasan hingga telur
keluar.
Enzim yang berperan dalam
pemecahan dinding folikel: protease
iplasmin kemudian diikuti oleh
hormon Prostaglandin F2 (PGF2)
atau Cotecholamin yang
merangsang konstraksi aktif dari
folikel
Setelah ovulasi kemudian akan
diikuti oleh ikan jantan untuk
mengeluarkan sperma. Sperma
yang tadinya bergerak lamban
menjadi bergerak cepat (motilitas
tinggi) dikarenakan bersentuhan
dengan air. Pergerakan sperma
tersebut akan mengarah pada sel
telur kerena distimulasi oleh adanya
Gimnogamon I yang dieksresikan
oleh telur. Setelah sperma
menempel pada telur, telur akan
mengeluarkan Androgamon I untuk
menekan motilitas sperma dan
Gymnogamon II untuk
menggumpalkan sperma.
Berjuta-juta sperma menempel pada
sel telur tetapi hanya satu sperma
yang bisa masuk melalui micropil.
Kepala sperma masuk dan ekornya
tertinggal diluar, sebagai sumbat
micropile sehingga yang lain tidak
bisa masuk. Berjuta-juta sperma
yang menempel pada telur
disingkirkan oleh telur dengan reaksi
kortek. Karena apabila tidak
disingkirkan akan mengganggu
metabolisme zigot.
Pembuahan sel telur merupakan
awal dari perkembangan embrio ikan.
120
Pembuahan merupakan
penggabungan sel telur dengan
spermatozoa sehingga membentuk
zygote. Pembuahan pada ikan
umumnya terjadi di luar tubuh,
dimana induk betina mengeluarkan
telur dan induk jantan mengeluarkan
spermatozoa.
Telur yang tidak dibuahi akan mati
dan berwarna putih air susu. Menurut
Nesler dalam Sumantadinata (1983),
suatu substansi yang disebut
fertilizing merangsang spermatozoa
untuk berenang berusaha mencapai
telur. Telur akan mengeluarkan
fertilizing pada saat-saat terakhir
ketika dilepas dan siap dibuahi.
Pembuahan satu telur hanya
membutuhkan satu spermatozoa
bagian kepalanya masuk Kedalam
telur melalui mycropyle, sedangkan
bagian ekornya tetap berada
tertinggal di luar. Cytoplasma dan
chorion merenggang dan semakin
tersumbat yang akan segera
menutup mycropyle untuk
menghalangi masuknya
spermatozoa lainnya. Sumantadinata
(1983) mengatakan, setelah
memasuki telur, inti spermatozoa
mulai membesar dan chromosomnya
mengalami perubahan sehingga
memungkinkan untuk berhimpun
dengan chromosom dari sel telur
fase awal pembelahan.
4.2.6. Aplikasi teknik pemijahan
pada ikan budidaya
4.2.6.1. Pemijahan ikan Mas
Macam-macam Metode Pemijahan
Ikan Mas menurut Sumantadinata
(1983) dapat dilakukan secara alami
dan secara buatan. Pemijahan
secara alami setiap daerah memiliki
ciri khas dalam cara memijahkan
ikan Mas. Pemijahan ikan Mas
secara alami yang banyak dikenal di
masyarakat adalah cara Sunda,
Cimindi, Rancapaku, Magek,
Kantong, Dubisch dan Hofer.
1. Pemijahan cara Sunda
Pemijahan ikan Mas cara Sunda
merupakan cara pemijahan yang
banyak digunakan petani,
khususnya di Jawa Barat. Cara
ini menggunakan kolam
pemijahan dan kolam penetasan
secara terpisah. Kolam
pemijahan dipersiapkan secara
khusus, yaitu dengan
mengeringkan dasar kolam,
membersihkan kolam dari rumput
atau sampah, memasang
substrat dan mengairi kolam.
Pemijahan cara ini menggunakan
kakaban sebagai substrat untuk
menempelkan telur. Kakaban
tersebut dipasang berderet-deret
dan terapung 5-10 cm di bawah
permukaan air. Induk ikan yang
siap dipijahkan dilepaskan secara
hati-hati ke dalam kolam
pemijahan. Pelepasan induk
dilakukan + pukul 16.00-17.00.
Proses pemijahan biasanya
terjadi mulai tengah malam pukul
01.00-06.00 yang ditandai
dengan gerakan ikan yang saling
berkejaran dan timbulnya bau
anyir pada air kolam pemijahan.
121
Gambar 4.17. Pemasangan kakaban di kolam pemijahan pada
pemijahan cara Sunda (Sumantadinata, 1983).
Sehari setelah induk ikan dilepas
pada kolam pemijahan dilakukan
pengamatan terhadap kakaban.
Kakaban yang telah berisi telur
segera diangkat dan dipindahkan
ke kolam penetasan. Sebelum
kakaban disusun di kolam
penetasan, terlebih dahulu
dibersihkan dari Lumpur dengan
menggoyang-goyangkan secara
perlahan di kolam pemijahan.
Kakaban tersebut dipasang
berderet-deret di kolam
penetasan 3-5 cm di bawah
permukaan air. Telur akan
menetas setelah 36-48 jam pada
suhu 28-300C. Pemijahan cara
Sunda menggunakan kolam
penetasan sekaligus sebagai
kolam pendederan. Persiapan
kolam penetasan meliputi
pengolahan dasar kolam,
pembuatan kamalir, pemupukan,
pengapuran dan mengairi.
Persiapan kolam tersebut
dilakukan beberapa hari sebelum
pemijahan induk.
2. Pemijahan cara Cimindi
Persiapan kolam pemijahan cara
Sunda dan Cimindi pada
dasarnya adalah sama, hanya
terdapat perbedaan induk kolam.
Pada pemijahan cara Cimindi,
kolam pemijahan merupakan
bagian dari kolam penetasan dan
kolam pendederan. Kolam
pemijahan terletak pada salah
satu sudut kolam penetasan
dengan pematang dari tanah
sebagai pembatas sementara.
Bila induk ikan telah memijah,
kakaban tetap berada di kolam
pemijahan, sedangkan induk ikan
dibiarkan masuk ke kolam
penetasan melalui lubang
pematang sementara. Telur ikan
pada kakaban ditetaskan pada
kolam pemijahan. Setelah benih
berumur 7 hari, pematang
sementara dibongkar dan benih
ikan akan menyebar ke kolam
besar. Pada kolam besar ini
benih ikan didederkan.
1
2 3
1. Kakaban 2. Bilah bambu penahan 3. Patok bambu
122
Gambar 4.18. Kolam pemijahan cara Cimindi (Sumantadinata, 1983).
3. Pemijahan cara Rancapaku
Pemijahan cara Rancapaku
hampir sama dengan cara
Cimindi, yaitu kolam pemijahan
merupakan bagian kolam
penetasan. Perbedaannya
adalah petak pemijahan dengan
cara Rancapaku terbuat dari
tumpukan batu atau bambu.
Penetasan telur dilakukan pada
kolam pemijahan. Setelah selesai
memijah, induk ikan dipindahkan
ke kolam besar atau ke kolam
pemeliharaan induk, sedangkan
kakaban tetap di kolam
pemijahan. Telur ikan Mas akan
menetas setelah 36-48 jam pada
suhu 28-300C. anak ikan Mas
yang mulai mencari makan akan
menyebar ke kolam besar melalui
celah tumpukan batu atau bambu.
Benih ikan tersebut dipelihara
sampai umur 2-3 minggu.
4. Pemijahan cara Magek
Pemijahan ikan Mas di Sumatera
Barat dikenal dengan cara Magek.
Pemijahan dengan cara ini
diperlukan kolam seluas 3-4 m2
dengan kedalaman air 0,75 m.
dinding kolam tegak lurus
diperkuat papan. Dasar kolam
ditebari pasir yang telah dicuci
bersih dari tanah dan bahanbahan
lain yang berbahaya. Di
atas pasir ini dhamparkan ijuk
yang dijepit dengan belahan
bambu. Setelah induk ikan
selesai memijah, ijuk tersebut
tetap berada di kolam pemijahan,
sedangkan induk ditangkap dan
dikembalikan ke kolam induk.
1
2
3
1. Kolam pemijahan
2. Pematang sementara
3. Kolam penetasan/pendederan
4. Saluran pemasukan air
5. Saluran pengeluaran air
4
5
123
Telur-telur ikan Mas ditetaskan
padakolam pemijahan. Benih
ikan ditangkap setelah berumur 1
minggu. Pemanenan benih
dilakukan dengan mengalirkan air
dari dasar kolam dan ditampung
dengan kantong yang terbuat
dengan bahan kain halus.
Selanjutnya benih tersebut
dipindahkan ke wadah lain untuk
didederkan atau dipasarkan.
Gambar 4.19. Kolam pemijahan cara Magek (Sumantadinata, 1983).
5. Pemijahan cara Kantong
Pada beberapa daerah di Jawa
Barat, pemijahan ikan Mas
dilakukan dengan cara Kantong.
Pemijahan cara Kantong mirip
dengan cara Magek. Kolam
pemijahan berbentuk segi empat
dengan kedalaman air sekiatr 60
cm. Dasar kolam diberi lapisan
kerikil dan pasir agar airnya tetap
jernih. Bentuk dasar kolam dibuat
miring ke arah pengeluaran air
untuk memudahkan pengaturan
air dalam penangkapan anak
ikan. Pemijahan cara Kantong
menggunakan rumput sebagai
tempat menempelkan telur.
Rumput yang digunakan adalah
rumput yang tidak mudah busuk
di air. Rumput tersebut disebar di
kolam pemijahan, induk yang
telah selesai memijah ditangkap
dan dikembalikan ke kolam induk,
sedangkan telur-telurnya
dibiarkan di kolam pemijahan
untuk ditetaskan. Kolam
pemijahan dialiri air secara
perlahan. Telur ikan akan
menetas setelah 36-48 jam pada
suhu 28-300C. benih yang
berumur 5-7 hari dipungut/panen.
Benih –benih ikan akan hanyut
bersama air melalui pintu
pengeluaran yang dialirkan ke
bentangan kain yang
direntangkan pada dua buah
bambu. Bentangan kain tersebut
berupa kantong yang terendam
setengah bagian pada genangan
1,5-2,0 m
0,5-0,6 m
c d b a
P1
P2
P3
K
a. papan P1 pipa pemasukan
b. penyekat papan P2 pipa pelimpasan
c. belahan bambu P3 pipa pengurasan
d. ijuk
124
air tenang. Selanjutnya benihbenih
yang ditampung pada kain
tersebut dikumpulkan dan
didederkan di sawah/kolam.
Gambar 4.20. Kolam pemijahan cara Kantong (Sumantadinata, 1983).
6. Pemijahan cara Dubisch dan
Hofer
Pemijahan ikan cara Dubisch dan
Hofer menggunakan rumput
sebagai tempat meletakkan telur.
Dubisch adalah seorang ahli
perikanan berasal dari Jerman.
Oleh sebab itu cara pemijahan
ikan yang diperkenalkan Dubisch
disebut cara Dubisch. Cara ini
banyak digunakan di Jawa
Tengah dan Jawa Timur. Kolam
pemijahan cara Dubisch
berbentuk empat persegi panjang
dengan ukuran 8 x 8 atau 10 x 10
meter. Kedalaman air kolam
pemijahan adalah 30 cm. Pada
bagian tengah dasar kolam lebih
tinggi daripada bagian tepi/sisi
kolam. Pada dasar kolam
sekeliling petakan terdapat
saluran keliling dengan lebar 60
cm dn kedalaman 30-40 cm.
Saluran keliling berfungsi untuk
memudahkan penangkapan
induk setelah selesai memijah.
Ketinggian air kolam adalah 10
cm di atas pucuk rumput. Bagian
tengah dasar kolam miring ke
arah saluran pengeluaran air dan
ditanami rumput yang tahan
tergenang air. Dasar tengah yang
miring memudahkan turunnya air
dalam pemanenan benih ikan.
Induk ikan yang selesai memijah
ditangkap dan dipindahkan ke
kolam pemeliharaan induk,
sedangkan telur dibiarkan untuk
ditetaskan.
Keterangan:
A. Kolam pemijahan K. kantong
B. Kolam kecil tempat kantong 1. pipa
pelimpasan
A 1
2 B
K
125
Gambar 4.21. Kolam pemijahan cara Dubisch (Sumantadinata, 1983)
Hofer seorang ahli perikanan
melihat beberapa kelemahan/
kekurangan pemijahan cara
Dubisch. Kelemahan tersebut
terletak pada dasar kolam yang
dapat menimbulkan stress bagi
induk ikan. Hal ini disebabkan
adanya perubahan drastic
antara bentuk saluran dengan
bentuk pelataran (bagian tengah
kolam) yang ditumbuhi rumput
tempat memijah. Induk ikan
istirahat di saluran merasa
tempat/kolam tersebut kecil,
tidak ada rumput dan gelap,
tetapi setelah keluar dari saluran
menuju bagian tengah kolam
yang ditumbuhi rumput dan
terang menyebabkan induk agak
ketakutan. Masa takut dan
stress ini mengurangi keinginan
ikan untuk memijah.
Berdasarkan kelemahan tersebut,
Hofer memodifikasi dasar kolam
pemijahan cara Dubisch. Pada kolam
pemijahan cara Hofer tidak terdapat
saluran keliling kolam, tetapi seluruh
petakan kolam dibagi menjadi dua
bagian, yaitu setengah bagian yang
dangkal dan setengah bagian lebih
dalam. Bagian yang dangkal
ditanami rumput sebagai tempat
menempelkan telur, sedangkan
bagian lebih dalam digunakan untuk
berkumpulnya benih ikan Mas
sehingga memudahkan pemungutan
benih ikan.
A
B B
A
B B
Ardiwinata (1971) Huet (1970)
A. Rumput
B. Saluran
126
Gambar 4.22. Kolam pemijahan cara Hofer (Sumantadinata, 1983)
Pelepasan induk ke kolam pemijahan
dilakukan dengan hati-hati. Hindari
induk terkena benturan.
Perbandingan induk jantan dan
betina adalah 1 : 1 dalam satuan
berat 3 : 1 dalam satuan ekor.
Pemilihan sistem pemijahan ini
bergantung kepada skala usaha
yang dilakukan. Pada pemijahan ikan
secara alami, pemilihan induk yang
matang kelamin harus tepat dan
benar. Dalam pemijahan ikan Mas
secara alami dan semi buatan
dibutuhkan media/substrat
pemijahan yang disebut dengan
kakaban. Kakaban ini adalah tempat
meletakkan telur ikan Mas yang
terbuat dari ijuk pohon enau.
Kakaban ini biasanya berukuran
panjang 1-1,5 m dengan lebar sekitar
0,5 m. ijuk yang digunakan sebagai
bahan pembuat kakaban ini harus
dibersihkan dengan membuang
serat-serat yang kasar dan disisir
dengan sikat kawat. Jumlah kakaban
yang diletakkan pada kolam
pemijahan tergantung pada jumlah
induk yang dipijahkan. Untuk
memijahkan satu pasang induk
jumlah kakaban yang dibutuhkan
adalah 5-8 buah. Satu pasang induk
ikan Mas adalah perbandingan
jumlah induk jantan dan betina yang
akan dipijahkan berdasarkan bobot
badan 1 : 1, sedangkan berdasarkan
jumlah ikan adalah 2 : 1 atau 3 : 1.
Sebelum ikan Mas jantan dan betina
dipijahkan sebaiknya induk ikan
tersebut diberok terlebih dahulu di
dalam kolam pemberokan selama 1-
2 hari dan dipisahkan antara jantan
dan betina. Selama dalam
pemberokan, induk ikan ini tidak
diberi pakan, oleh karena itu kondisi
kualitas air kolam pemberokan harus
optimal.
Pemberokan ikan Mas ini bertujuan
untuk :
Cara Hofer
A. Pipa pemasukan air
B. Bagian dasar yang dangkal ditanami
rumput
C. Pipa pngeluaran air
A B
C
127
1. Mengurangi lemak pada daerah
kantong pembungkus telur
(ovarium), karena lemak yang
terlalu banyak dapat
mengganggu kelancaran
pelepasa telur.
2. Memisahkan induk jantan dan
betina untuk menahan sementara
keinginan memijah sehingga
pada saat pemijahan di kolam
pemijahan kedua induk ikan
saling tertarik untuk memijah.
Pemijahan ikan Mas secara buatan
biasanya dilakukan oleh para petani
ikan yang membutuhkan
ketersediaan benih yang kontinu
dalam jumlah dan mutu. Pemijahan
secara buatan ini dilakukan dengan
memberikan suntikan hormon
kepada induk ikan Mas jantan dan
betina agar cepat mengalami
kematangan gonad. Setelah
dilakukan penyuntikan hormon, induk
ikan Mas jantan dan betina akan di
stripping, yaitu dilakukan pengurutan
agar telur dan sperma keluar dari
tubuh induk ikan Mas dan dilakukan
pembuahan ikan Mas secara buatan.
Hormon yang digunakan antara lain
adalah ovaprim, pregnil, HCG atau
kelenjar hipofisa ikan Mas itu sendiri.
Ikan Mas jantan dan betina siap
memijah dan matang gonad
dimasukkan ke dalam kolam
pemijahan. Jumlah induk yang
ditebar bergantung pada luas ukuran
kolam pemijahan. Ikan Mas akan
meletakkan telur pada kakaban.
Kakaban yang berisi telur ikan Mas
selanjutnya dipindahkan ke kolam
pemeliharaan larva/benih. Hal ini jika
pemijahan dilakukan alami dan semi
intensif. Jika pemijahan ikan Mas
dilakukan secara buatan, maka telur
ikan Mas yang telah dicampur
sperma ditebar ke dalam akuarium
dan dipelihara sampai menetas dan
berumur 2-4 minggu.
4.2.6.2. Pemijahan Ikan Lele
1. Persiapan wadah dan substrat
(kakaban)
Persiapan bak pemijahan dilakukan
sebelum dilakukan pemijahan. Untuk
setiap pasang induk yang beratnya
antara 0,5 – 1 kg diperlukan satu
buah bak pemijahan dengan ukuran
1 x 2 x 0,5 meter atau 1 x 1 x 0,5
meter. Sebelum kolam atau bak
digunakan, bak dicuci bersih agar
kotoran-kotoran dan lumut yang
menempel terlepas dan dasar bak
menjadi bersih dan benih lele
terhindar dari serangan penyakit.
Selanjutnya bak diisi air bersih
setinggi 30 – 40 cm. Sebagai tempat
atau media menempelnya telur, di
dasar bak dipasang kakaban yang
terbuat dari ijuk. Ukuran kakaban
disesuaikan dengan ukuran bak
pemijahan. Namun, ukuran yang
biasa digunakan panjangnya 75 –
100 cm dan lebarnya 30 – 40 cm.
Sebagai patokan, untuk 1 pasang
induk lele dumbo dengan berat induk
betina 500 gram, dibutuhkan
kakaban sebanyak 3 – 4 buah. Jika
kurang, dikhawatirkan telur yang
dikeluarkan ketika pemijahan tidak
tertampung seluruhnya atau
menumpuk di kakaban, sehingga
mudah membusuk dan tidak
menetas. Kakaban harus menutupi
seluruh permukaan dasar bak
pemijahan, sehingga semua telur lele
dumbo tertampung di kakaban.
128
Bagian atas bak pemijahan di tutup
dengan seng atau triplek atau
anyaman bambu untuk mencegah
induk lele dumbo yang sedang
dipijahkan meloncat keluar.
2. Pemilihan induk siap pijah
Tidak semua induk yang dipelihara
dapat dipijahkan. Hal ini disebabkan
belum tentu semua induk telah
matang kelamin dan siap dipijahkan.
Sebelum dipijahkan, induk dipilih
yang sesuai dengan persyaratan.
Salah satu persyaratan yang mutlak
adalah induk telah berumur 1 tahun,
baik jantan maupun betina.
Pemilihan induk dilakukan dengan
cara mengeringkan kolam induk, baik
kolam induk jantan mapun betina,
sehingga induk – induk ikan lele
dumbo akan terkumpul. Selanjutnya
induk – induk tersebut ditangkap
dengan menggunakan seser atau
serokan dan ditampung dalam
wadah seperti tong plastik.
3. Penyuntikan hormon
Untuk merangsang induk lele dumbo
agar memijah sesuai dengan yang
diharapkan, sebelumnya induk harus
disuntik menggunakan zat
perangsang berupa kelenjar hipofisa
atau HCG (Human Chlorionic
Gonadotropine) atau ovaprim.
Kelenjar hipofisa dapat diambil dari
donor ikan lele dumbo yang telah
matang kelamin dan telah berumur
minimal 1 tahun. Penyuntikan
menggunakan kelenjar hipofisa
cukup dengan 1 dosis. Artinya, ikan
donor yang akan diambil kelenjar
hipofisanya, beratnya sama dengan
ikan induk lele dumbo yang akan
disuntik. Namun, jika menggunakan
ovaprim, penyuntikan cukup
dilakukan satu kali dengan dosis
untuk induk betina 0,2 ml dan untuk
induk jantan sebanyak 0,1 ml.
Sebagai bahan pelarut digunakan air
untuk injeksi berupa aquabidest
sebanyak 0,3 – 0,4 ml. Penyuntikan
dapat dilakukan pada 3 tempat, yaitu
pada otot punggung, batang ekor
dan sirip perut. Akan tetapi pada
umumnya dilakukan pada otot
punggung dengan kemiringan alat
suntik 45.
4. Pemijahan
Induk lele dumbo yang telah disuntik
selanjutnya dipijahkan secara alami,
atau dipijahkan secara buatan. Jika
akan dilakukan secara semi buatan,
setelah induk ikan lele disuntik
dengan hormon maka induk tersebut
dimasukan ke dalam bak pemijahan
yang telah disiapkan. Induk akan
memijah setelah 8 – 12 jam dari
penyuntikan. Selama proses
pemijahan berlangsung dilakukan
pengontrolan agar induk yang
sedang memijah tidak melompat
keluar tempat pemijahan.
Pemijahan ikan lele dapat dilakukan
secara alami, semi buatan dan
buatan (induced breeding).
Pemijahan ikan lele secara alami
dapat dilakukan dengan memijahkan
induk jantan dan betina tanpa
perlakuan khusus. Induk ikan lele
memijah berdasarkan kondisi alam
dan ikan itu sendiri. Kelemahan
pemijahan secara alami adalah
pemijahan induk belum dapat
129
diperkirakan waktunya sehingga
ketersediaan telur juga belum dapat
di perkirakan. Pemijahan secara
semi buatan adalah pemijahan
dengan cara memberi perlakuan
khusus yaitu dengan menyuntik
induk ikan menggunakan hormon.
Hormon yang digunakan adalah
hormon sintetis atau hormon
hypofisa. Jika Induk disuntik
menggunakan hormon sintetis
(Ovaprim) dapat dilakukan dengan
dosis 0,1-0,2 ml di tambah
aquabides sebanyak 1-2 ml.
Pemijahan secara semi buatan induk
jantan dan betina disuntik. Induk
yang telah disuntik dimasukkan
kedalam kolam/bak pemijahan.
Pemijahan secara buatan yaitu
dengan menyuntikan hormon
gonadotropin kedalam tubuh induk
betina. Untuk mendapatkan hormon
ini ada yang sudah dalam bentuk
cairan hormon siap pakai, ada pula
yang harus di ekstrak dari kelenjar
horman ikan tertentu.
Pada ikan lele yang akan dilakukan
pemijahan secara buatan maka
pengambilan sperma dilakukan
dengan pembedahan perut induk
jantan. Selanjutnya sperma diambil
dan dibersihkan dari darah dengan
menggunakan tissue. Kelenjar
sperma dipotong-potong dengan
menggunakan gunting kemudian
ditekan secara halus untuk
mengeluarkan sel sperma dari
kelenjar sperma tersebut, lalu
diencerkan di dalam larutan sodium
clorida 0.9 % dalam mangkuk plastik
yang bersih.
Pengurutan induk betina dilakukan
dengan hati-hati agar induk tersebut
tidak terluka. Telur induk betina
tersebut ditampung dalam baki dan
pada waktu yang bersamaan sperma
yang telah disiapkan sebelumnya
dicampur dengan telur. Telur dan
sperma diaduk menggunakan bulu
ayam. Setelah telur dan sperma
tercampur merata, lalu ditambah air
sampai semua telur terendam dan
biarkan beberapa menit agar semua
telur terbuahi oleh sperma. Air
rendaman yang berwarna putih
selanjutnya di buang,
Telur yang telah dibuahi disebarkan
kepermukaan substrat “kakaban” dan
direndam dalam bak sampai
menetas. Untuk mencegah infeksi
pada induk, maka setelah dilakukan
pengurutan induk ikan ditreatment
dengan cara direndam dalam larutan
formalin 50 – 150 ppm selama 3 jam,
kemudian induk ikan di lepas ke
dalam bak fiber penampungan induk
yang sudah disediakan.
4.2.6.3. Pemijahan ikan nila
Ikan Nila dapat berkembang biak
secara optimal pada suhu 20 - 30
derajat celsius. Pada umumnya nila
bersifat mengerami telurnya di dalam
mulut sampai menetas kurang lebih
4 hari dan mengasuh larvanya 14
hari sampai larva dapat berenang
bebas diperairan, mengerami telur
dan mengasuh larva dilakukan oleh
induk betina. Nila dapat dipijahkan
setelah mencapai berat 100 gr/ekor.
Secara alami nila memijah pada
sarang yang dibuat oleh ikan jantan
di dasar kolam, sehingga diperlukan
dasar kolam yang berlumpur. Untuk
menjaga induk hidup optimal, maka
parameter kualitas air dipertahankan
dalam kondisi yang layak bagi
130
kehidupan induk, terutama
kandungan oksigen terlarut (> 5
ppm) dan suhu tidak berfluktuasi.
Padat penebaran induk tergantung
dari ukuran induk dan sistem
pemijahan yang dilakukan. Selama
proses pemijahan air kolam harus
tetap berganti, dengan cara
mengalirkan air pemasukan ke kolam
secara kontinu melalui pipa yang ada
saringannya. Air dijatuhkan
kepermukaan kolam agar terjadi
percikan air untuk proses difusi
oksigen.
Pemijahan ikan nila dengan
menggunakan hapa (kantung jaring
dengan mata jaring yang lembut
lebih kecil dari ukuran larva) hanya
pada ikan nila yang sudah diadaptasi
pada kondisi tersebut. Kantung jaring
dapat digunakan beberapa bulan
saja paling lama 6 bulan, karena
mata jaring mudah sekali tertutup
baik oleh lumpur maupun organisme
yang menempel pada jaring
sehingga dapat mengganggu
sirkulasi air.
Pemijahan ikan nila berdasarkan
pengelolaannya dibedakan beberapa
sistim antara lain:
1. Pemijahan Secara Tradisional/
Alami
Pemijahan secara alami dapat
dilakukan di kolam. Ikan nila
membutuhkan sarang dalam proses
pemijahan. Sarang di buat di dasar
kolam oleh induk jantan untuk
memikat induk betina tempat
bercumbu dan memijah, sekaligus
merupakan wilayah teritorialnya yang
tidak boleh diganggu oleh pasangan
lain. Kegiatan pemijahan alami
meliputi antara lain;
Persiapan Kolam
Kolam pemijahan luasnya harus
disesuaikan dengan jumlah induk
yang akan dipijahkan. Perbandingan
jantan dan betina adalah 1 : 3 ukuran
250 - 500 gr perekor. Dengan padat
penebaran 1 ekor/m2. Hal ini
berdasarkan sifat ikan jantan yang
membuat sarang berbentuk kobakan
didasar kolam dengan diameter
kira-kira 50 cm dan akan
mempertahankan kobakan tersebut
dari ikan jantan lainnya. Kobakan
tersebut akan digunakan ikan jantan
untuk memikat ikan betina dalam
pemijahan. Oleh karena itu jumlah
ikan jantan setiap luasan kolam
tergantung pada berapa banyak
kemungkinan kobakan yang dapat
dibuat oleh ikan jantan pada dasar
kolam tersebut. Biasanya jarak
antara kobakan satu dengan yang
lainnya kira-kira 25 cm. Bila
areal/kolam mempunyai luasan 100
m2 (1000 x 1000 cm2), maka satu
baris panjang didapat 1000:100 cm =
10 dan satu baris lebar 1000:100 =
10, jadi banyaknya kobakan 10 x 10
= 100 atau banyaknya ikan jantan
adalah 100 ekor. Sedangkan yang
betina adalah 3 x 100 = 300 ekor.
Induk betina yang lebih banyak 3 x
jantan adalah agar mudah memberi
kesempatan pada jantan untuk dapat
menemukan betina yang matang
gonad. Dinding kolam diupayakan
kokoh dan tidak ada yang bocor agar
mampu menahan air kolam.
Kedalam air kolam 70 cm. Dasar
kolam dilakukan pengolahan,
pembuatan kemalir, pemupukan dan
pengapuran. Kegiatan ini
131
dimaksudkan untuk menciptakan
suasana dasar kolam berlumpur
untuk pembuatan sarang dan
meningkatkan kesuburannya agar
cukup tersedia pakan alami untuk
konsumsi induk dan larva hasil
pemijahan.
Pengapuran dilakukan untuk
mengendalikan hama, penyakit dan
parasit larva ikan serta meningkatkan
pH dasar kolam. Dosis pengapuran
untuk menetralkan berbagai
tingkatan pH dan jenis tekstur tanah
dapat dilihat pada Tabel 4.6.
Tabel 4.6. Dosis Pengapuran untuk Menetralkan dari Berbagai Jenis Tekstur
Tanah dan pH Awal yang Berbeda
NO pH Awal Kebutuhan Kapur CaCO3 (kg/Ha)
Lempung berliat Lempung berpasir Pasir
123456
< 4,0
4,0 - 4,5
4,6 - 5,0
5,1 - 5,5
5,6 - 6,0
6,1 - 6,5
14.320
10.740
8.950
5.370
3.580
1.790
7.160
5.370
4.975
3.580
1.790
1.790
4.475
4.475
3.580
1.790
895
0
Pemupukan dapat diberikan pupuk
kandang, pupuk hijau dan pupuk
buatan atau kombinasi dari ketiga
macam pupuk tersebut.
Jenis pupuk yang biasa digunakan
terdiri dari :
Kotoran ternak besar (sapi,
kerbau, kuda dll) dengan dosis
1500 kg/ha atau kotoran ayam
sebanyak 600- 1200 kg/ha
TSP dosis 100 kg/ha
Urea dosis 150 kg/ha
Dosis tersebut tidak mutlak , tetapi
bisa disesuaikan dengan tingkat
kesuburan tanah kolam perairan.
Cara pemberian pupuk kandang bisa
dionggokan dibeberapa tepi kolam.
Sedang untuk pupuk anorganik
disebarkan pada dasar kolam. Agar
kolam bisa menjadi subur lagi bisa
ditambah dengan pupuk hijau,
misalnya daun orok-orok, daun
lamtoro dan lain- lain. Selanjutnya
kolam diairi 70 cm. Pemupukan
susulan dapat diberikan 2 minggu
kemudian dengan cara memasukan
pupuk kandang/hijau ke dalam
karung plastik yang diberi lubang
secara merata dan direndam di dekat
pintu pemasukan air kolam. Cara ini
akan memberikan pengaruh
penguraian pupuk secara bertahap
dan terus menerus sehingga
pertumbuhan pakan alami dapat
stabil dan tidak terjadi blooming
plankton yang merugikan.
Pengairan
Selama proses pemijahan ikan
membutuhkan suasana parameter
kualitas air yang sesuai yaitu oksigen
terlarut 5 ppm, pH 5, suhu 20 -
30 C dan NH3 1 ppm. Untuk
132
menciptakan kondisi seperti tersebut,
pengairan kolam harus dilakukan
dengan pengaturan yang baik. Air
pemasukan terus menerus dialirkan
dengan debit 2 - 5 liter/ menit untuk
luasan kolam 200 m2.
Pemberian pakan
Meskipun kolam telah di pupuk dan
tumbuh subur pakan alami,
pemberian pakan tambahan mutlak
di perlukan. Pemberian pakan
tambahan dimaksudkan untuk
menjaga stabilitas produktifitas induk
karena selama masa inkubasi telur
3-4 hari induk berpuasa sehingga
pada proses pemijahan harus cukup
cadangan energi dari pakan ikan.
Pakan tambahan dapat berbentuk
dedak, bungkil kedelai, bungkil
kacang atau pellet. Pellet dapat
diberikan 3 - 6 % per hari dari bobot
induk. Selama proses pemijahan 7
hari dan pasca inkubasi telur yaitu
setelah hari ke 8 - 12.
2. Pemijahan secara intensif
Dari sifat perilaku ikan nila maka
untuk meningkatkan hasil dan
produktifitas induk ikan nila di dalam
menghasilkan larva, pemijahan ikan
dapat dilakukan dengan melakukan
manipulasi lingkungan yang sesuai
dengan sifat memijah ikan.
Pemijahan secara buatan dapat
dilakukan dengan dua cara :
Pemijahan Intensif Yang
Sepenuhnya Dilakukan Di Kolam
Metoda ini dilakukan pada kolam
yang didesain sedemikian rupa
sehingga setelah pemijahan selesai
dapat dipisahkan antara induk jantan,
induk betina dan larva ikan dalam
kolam yang berbeda, dengan
demikian pemanenan larva relatif
mudah dilakukan dan induk akan
lebih produktif karena tidak sering
terganggu yang dapat menimbulkan
stres dan kematian pada induk.
Desain kolam pemijahan dapat
dilihat pada Gambar .
Persiapan kolam
Kolam pemijahan dibuat dari
pagar bambu yang bersekatsekat
antara kolam jantan, kolam
betina dan kolam larva
(gambar.1). Kolam induk jantan
(lingkaran I) hanya dapat
dimasuki ikan betina yang
berukuran lebih kecil dari ikan
jantan, kolam induk betina
(lingkaran II) hanya dapat dilalui
larva sedang induk betina tidak
dapat keluar dari sekat, dan
kolam larva (III) untuk
menangkap larva yang dihasilkan.
Pengolahan dasar kolam
dilakukan seperti pada persiapan
kolam pemijahan alami.
Gambar 4.23. Diagram susunan
kolam pemijahan bersekat
Proses pemijahan
133
Apabila konstruksi kolam
berbentuk lingkaran dengan
diameter kolam I adalah 4 meter
dan kolam II adalah 10 meter,
serta luas kolam III adalah 44
meter persegi, maka padat
penebaran induk adalah antara
250 -300 ekor induk betina bobot
250 gr/ekor dan 40 ekor jantan
bobot > 500 gr/ekor. Indukinduk
ikan pada saat pemijahan
menempati kolam I. Setelah
proses pemijahan berlangsung
dan telur telah menetas, induk
betina akan keluar dari kolam I ke
kolam II untuk mengasuh
anaknya. Di kolam II ini larva
tumbuh sampai ukuran 1 cm,
selanjutnya larva akan masuk ke
kolam III, sedangkan induk betina
tetap pada kolam II karena ada
sekat. Kolam III hanya dapat di
masuki oleh larva dari kolam II ke
kolam III, larva akan terusir dari
kolam II, karena terganggu oleh
induk betina yang ada.
Pemeliharaan
Pemeliharaan induk dilakukan
dengan pemberian pakan
tambahan 3 - 6 % perhari dari
bobot ikan. Pemberian pakan
dilakukan sesuai yang
dibutuhkan oleh induk dan larva.
Pemijahan Dilakukan Di Hapa,
Penetasan Telur Dilakukan Pada
Corong Tetas
Induk yang sudah siap dipijahkan
(matang gonad) di masukkan ke
dalam hapa pemijahan dan
dipelihara dengan memberikan
pakan tambahan serta pengaturan
air yang baik sampai hari ke 7.
Pengambilan telur dilakukan pada
hari ke 8 - 10 dengan cara
mengumpulkan induk-induk pada
satu sudut hapa untuk memperkecil
ruang gerak induk dan memudahkan
penangkapan. Induk betina di
tangkap satu persatu di pegang
bagian kepala, mulut di buka dan di
goyang-goyang di dalam air atau
dialiri air yang bagian bawahnya
sudah dipasang lambit/seser halus.
Telur yang ada pada mulut induk nila
akan keluar dan tertampung di lambit
dan selanjutnya di tampung pada
wadah (ember/baki) untuk di bawa
ke tempat penetasan. Setelah
selesai pengambilan telur, induk
dipelihara di kolam secara terpisah
antara jantan dan betina dan setelah
14 hari sudah dapat dipijahkan
kembali. Setelah pemijahan induk
jantan dan induk betina di ambil dan
di pelihara pada kolam induk yang
berbeda, untuk persiapan pemijahan
berikutnya.
4.3 Penetasan telur
Setelah induk ikan melakukan
pemijahan maka sel telur dan sel
sperma akan bertemu dan
mengalami proses pembuahan
(fertilisasi) yang akan membentuk
zygot. Oleh karena itu pembuahan ini
merupakan proses peleburan antara
sel telur dan sel sperma untuk
membentuk zygot. Pembuahan
terjadi ditandai dengan masuknya
spermatozoa ke dalam telur lewat
micropyle. Tiap sel sperma cukup
untuk membuahi satu butir telur.
Pada saat pembuahan spermatozoa
masuk yaitu hanya kepalanya saja
sedangkan ekornya tinggal di luar,
134
cytoplasma dan chorion merenggang
dan semacam sumbat segera
menutup micropyle untuk
menghalangi masuknya
spermatozoa lain. Pengerasan
chorion disebabkan oleh enzim
pengeras yang terdapat pada bagian
dalam lapisan chorion. Pengerasan
chorion berguna untuk melindungi
embrio yang masih sangat sensitif.
Setelah membentuk zygot maka
setiap individu akan mengalami
proses embriogenesis sebelum
menetas. Untuk memahami tentang
proses penetasan telur maka harus
dipahami proses tentang
embryogenesis.
4.3.1. Perkembangan embrio
Perkembangan embrio dimulai dari
pembelahan zygote (cleavage),
stadia morula (morulasi), stadia
blastula (blastulasi), stadia gastrula
(gastrulasi) dan stadia
organogenesis.
Stadia Cleavage
Cleavage adalah pembelahan zygote
secara cepat menjadi unit-unit yang
lebih kecil yang di sebut blastomer.
Stadium cleavage merupakan
rangkaian mitosis yang berlangsung
berturut-turut segera setelah terjadi
pembuahan yang menghasilkan
morula dan blastomer.
Stadia morula
Morula merupakan pembelahan sel
yang terjadi setelah sel berjumlah 32
sel dan berakhir bila sel sudah
menghasilkan sejumlah blastomer
yang berukuran sama akan tetapi
ukurannya lebih kecil. Sel tersebut
memadat untuk menjadi blastodik
kecil yang membentuk dua lapisan
sel. Pada saat ini ukuran sel mulai
beragam. Sel membelah secara
melintang dan mulai membentuk
formasi lapisan kedua secara samar
pada kutup anima. Stadia morula
berakhir apabila pembelahan sel
sudah menghasilkan blastomer.
Blastomer kemudian memadat
menjadi blastodisk kecil membentuk
dua lapis sel. Pada akhir
pembelahan akan dihasilkan dua
kelompok sel. Pertama kelompok
sel-sel utama (blastoderm), yang
meliputi sel-sel formatik atau
gumpalan sel-sel dalam (inner mass
cells), fungsinya adalah membentuk
tubuh embrio. Kedua adalah adalah
kelompok sel-sel pelengkap, yang
meliputi trophoblast, periblast,
auxilliary cells, fungsinya adalah
melindungi dan menghubungi antara
embrio dengan induk atau
lingkungan luar. Kelompok sel-sel
yang terdiri dari jaringan embrio
(blastodic) dan jaringan periblas,
pada ikan, reptil dan burug disebut
cakram kecambah (germinal disc).
Stadia blastula
Blastulasi adalah proses yang
menghasilkan blastula yaitu
campuran sel-sel blastoderm yang
membentuk rongga penuh cairan
sebagai blastocoel. Pada akhir
blastulasi, sel-sel blastoderm akan
terdiri dari neural, epidermal,
notochordal, meso-dermal, dan
endodermal yang merupakan bakal
pembentuk organ-organ. dicirikan
135
dua lapisan yang sangat nyata dari
sel-sel datar membentuk blastocoel
dan blastodisk berada di lubang
vegetal berpindah menutupi
sebagian besar kuning telur. Pada
blastula sudah terdapat daerah yang
berdifferensiasi membentuk organorgan
tertentu seperti sel saluran
pencernaan, notochorda, syaraf,
epiderm, ektoderm, mesoderm dan
endoderm.
Stadia gastrula
Gastrulasi adalah proses
perkembangan embrio, dimana sel
bakal organ yang telah terbentuk
pada stadia blastula mengalami
perkembangan lebih lanjut. Proses
perkembangan sel bakal organ ada
dua, yaitu epiboli dan emboli. Epiboli
adalah proses pertumbuhan sel yang
bergerak ke arah depan, belakang
dan kesamping dari sumbu embrio
dan akan membentuk epidermal,
sedangkan emboli adalah proses
pertumbuhan sel yang bergerak ke
arah dalam terutama diujung sumbu
embrio.
Stadia gastrula ini merupakan
proses pembentukan ketiga daun
kecambah yaitu ektoderm,
mesoderm dan endoderm. Pada
proses gastrula ini terjadi
perpindahan ektoderm, mesoderm,
endoderm dan notochord menuju
tempat yang definitif. Pada periode
ini erat hubungannya dengan proses
pembentukan susunan syaraf.
Gastrulasi berakhir pada saat kuning
telur telah tertutupi oleh lapisan sel.
Dan beberapa jaringan mesoderm
yang berada disepanjang kedua sisi
notochord disusun menjadi segmensegmen
yang disebut somit yaitu
ruas yang terdapat pada embrio.
Stadia organogenesis
Organogenesis merupakan stadia
terakhir dari proses perkembangan
embrio. Stadia ini merupakan proses
pembentukan organ-organ tubuh
makhluk hidup yang sedang
berkembang. Dalam proses
organogenesis terbentuk berturutturut
bakal organ yaitu syaraf,
notochorda, mata, somit, rongga
kuffer, kantong alfaktori, rongga
ginjal, usus, tulang subnotochord,
linea lateralis, jantung, aorta, insang,
infundibullum dan lipatan-lipatan sirip.
Sistem organ-organ tubuh berasal
dari tiga buah daun kecambah, yaitu
ektodermal, endodermal dan
mesodermal. Pada ektodermal akan
membentuk organ-organ susunan
(sistem) saraf dan epidermis kulit.
Endodermal akan membentuk
saluran pencernaan beserta kelenjarkelenjar
pencernaan dan alat
pernafasan, dan mesodermal akan
membentuk rangka, otot, alat-alat
peredaran darah, alat eksresi, alatalat
reproduksi dan korium (chorium)
kulit. Jika proses organogenesis ini
telah sempurna maka akan
dilanjutkan dengan proses
penetasan telur.
4.3.2. Proses penetasan telur
Penetasan adalah perubahan
intracapsular (tempat yang terbatas)
ke fase kehidupan (tempat luas), hal
136
ini penting dalam perubahanperubahan
morfologi hewan.
Penetasan merupakann saat terakhir
masa pengeraman sebagai hasil
beberapa proses sehingga embrio
keluar dari cangkangnya.
Penetasan terjadi karena 1) kerja
mekanik, oleh karena embrio sering
mengubah posisinya karena
kekurangan ruang dalam
cangkangnya, atau karena embrio
telah lebih panjang dari lingkungan
dalam cangkangnya (Lagler et al.
1962). Dengan pergerakanpergerakan
tersebut bagian telur
lembek dan tipis akan pecah
sehingga embrio akan keluar dari
cangkangnya. 2) Kerja enzimatik,
yaitu enzim dan zat kimia lainnya
yang dikeluarkan oleh kelenjar
endodermal di daerah pharink
embrio. Enzim ini disebut chorionase
yang kerjanya bersifat mereduksi
chorion yang terdiri dari
pseudokeratine menjadi lembek.
Sehingga pada bagian cangkang
yang tipis dan terkena chorionase
akan pecah dan ekor embrio keluar
dari cangkang kemudian diikuti tubuh
dan kepalanya.
Semakin aktif embrio bergerak akan
semakin cepat penetasan terjadi.
Aktifitas embrio dan pembentukan
chorionase dipengaruhi oleh faktor
dalam dan luar. Faktor dalam antara
lain hormon dan volume kuning telur.
Hormon tersebut adalah hormon
yang dihasilkan kelenjar hipofisa dan
tyroid sebagai hormon metamorfosa,
sedang volume kuning telur
berhubungan dengan energi
perkembangan embrio. Sedangkan
faktor luar yang berpengaruh adalah
suhu, oksigen, pH salinitas dan
intensitas cahaya.
Penetasan telur terjadi bila embrio
telah menjadi lebih panjang dari
pada lingkaran kuning dan telah
terbentuk sirip ekor. Penetasan
terjadi dengan cara pelunakan
chorion oleh suatu enzim atau
substansi kimia lainnya hasil sekresi
kelenjar ekstoderm. Selain itu
penetasan juga disebabkan oleh
gerakan-gerakan larva akibat
peningkatan suhu, intensitas cahaya
dan pengurangan tekanan oksigen.
4.3.3. Aplikasi Penetasan Telur
ikan
Penetasan telur pada ikan budidaya
dapat dilakukan dengan berbagai
wadah. Wadah penetasan telur ikan
dapat digunakan antara lain adalah
akuarium, kolam, bak atau fiber
glass. Wadah yang di gunakan harus
bersih. Sebelum penetasan telur, air
wadah penetasan di sanitasi
menggunakan methalyne blue (MB).
Jika penetasan telur dilakukan di
kolam harus menggunakan hapa.
Hapa yang digunakan dengan mata
jaring 1 mm atau lebih kecil dari
butiran telur. Air pada wadah
penetasan harus mengalir terus
menerus. Salah satu sumber oksigen
terlarut di dalam wadah penetasan
berasal dari difusi air langsung
dengan udara. Kadar oksigen terlarut
di dalam wadah adalah 6 - 8 ppm.
Pada ikan lele biasanya telurnya
dilekatkan pada substrat. Telur yang
telah menempel pada kakaban dapat
ditetaskan dalam wadah budidaya
137
disesuaikan dengan sistem budidaya
yang akan diaplikasikan. Selama
penetasan telur, air dialirkan terus
menerus. Seluruh telur yang akan
ditetaskan harus terendam air,
kakaban yang penuh dengan telur
diletakan terbalik sehingga telur
menghadap ke dasar bak. Dengan
demikian telur akan terendam air
seluruhnya. Telur yang telah dibuahi
berwarna kuning cerah kecoklatan,
sedangkan telur yang tidak dibuahi
berwarna putih pucat. Di dalam
proses penetasan telur diperlukan
suplai oksigen yang cukup. Untuk
memenuhi kebutuhan akan oksigen
terlarut dalam air, setiap bak
penetasan di pasang aerasi. Telur
akan menetas tergantung dari suhu
air wadah penetasan dan suhu udara.
Jika suhu semakin panas, telur akan
menetas semakin cepat. Begitu juga
sebaliknya, jika suhu rendah,
menetasnya semakin lama.
Telur ikan lele akan menetas
berkisar antara 24-57 jam dari
pembuahan. Selama penetasan telur
harus selalu dicek, telur yang sehat
berwarna hijau kecoklatan, bila ada
telur yang berwarna putih harus
segera dibuang untuk menghindari
berkembangnya jamur.
Perkembangan stadia embrio pada
ikan lele telah diamati oleh Volkaert
et al (1994) yang melakukan
pengamatan pada suhu penetasan
telur yang optimal adalah 28oC
(Tabel 4.7). Telur ikan lele (African
catfish) akan menetas setelah 24 jam
dengan derajat penetasan 80–100%.
Tabel 4.7. Perkembangan stadia
embrio ikan lele pada
suhu 28oC
Waktu (jam) Stadia embrionik
0 : 45
1 : 00
1 : 15
1 : 30
1 : 45
2 : 00
2 : 15
2 : 30
2 : 45
4 : 15
4 : 45
5 : 15
7 : 00
8 : 15
12 : 00
24 : 00
2 sel
4 sel
16 sel
32 sel
64 sel
128 sel
Morula
Awal Blastula
Akhir Blastula
Dimulainya epiboly
30% epiboly
Germinal disk
60% epiboly
90% epiboly
1 – 10 somite
80–100% menetas
Pada ikan nila penetasan telur dapat
dilakukan dengan dua metode yaitu
penetasan dengan menggunakan
corong penetasan dan metode
konvensional. Pada metode
konvensional dari induk ikan nila
yang mempunyai bobot 250 - 300 gr
dapat menghasilkan 300 - 800 butir
telur. Telur ikan nila akan menetas
setelah 4 - 6 hari. Telur yang telah
menetas tidak langsung dilepaskan
induknya melainkan tetap dimulutnya.
Induk betina melepas larva jika
sudah dapat berenang. Pada tahap
awal larva dilepaskan, induk betina
masih menjaganya. Di alam, induk
betina ikan nila mulai melepaskan
larva dari mulutnya pada umur 4 - 5
hari. Pada umur tersebut induk
betina masih menjaga larva-larva
tersebut. Jika keadaan lingkungan
larva kurang aman, induk ikan
menghisap kembali larvanya. Kuning
telur larva akan habis setelah
138
berumur 5 - 7 hari. Setelah kuning
telur habis, larva akan mencari
makanan disekitarnya. Biasanya
induk betina menjaganya dengan
mengikuti kelompok larva tersebut
berenang. Jika ada ikan lain yang
mendekati kelompok larva atau
keadaan perairan kurang aman
maka induk tersebut memasukkan
kembali larva-larva tersebut kedalam
mulutnya. Selanjutnya larva
dilepaskan kembali pada perairan
yang relatif aman dari gangguan ikan
lainnya. Secara keseluruhan proses
ini memerlukan waktu kurang lebih
18 hari.
Sedangkan penetasan telur ikan nila
secara intensif dilakukan pada
corong tetas, yang merupakan
modifikasi dari penetasan telur
secara alami. Modifikasi tersebut
terlihat pada kondisi lingkungan,
suplai air untuk gerakan telur,
oksigen terlarut dan sebagainya. Air
yang dialirkan ke corong penetasan
selain agar telur-telur tetap bergerak
juga untuk mempertahankan kualitas
air tetap baik. Corong tetas yang
digunakan berbentuk kerucut terbuat
dari bahan fibre glass atau bahan
lain. Pada corong tetas terdapat
pipa- pemasukan dan pengeluaran
air. Pipa pemasukan terletak di dasar
corong tetas sedangkan pipa
pengeluaran terletak di bagian atas
corong tetas. Corong yang berukuran
tinggi 45 cm, diameter atas 30 cm,
diameter bawah 15 cm dapat
menetaskan telur sebanyak 15.000
butir telur/corong.
Corong tetas sebelum digunakan
terlebih dahulu dibersihkan dari
endapan kotoran, sisa telur dan
lumut kemudian dikeringkan. Setelah
itu direndam pada larutan malachyte
green atau methalyn blue 10 ppm
selama 15 - 30 menit.
Selama kegiatan penetasan telur air
terus menerus dialirkan ke corong
penetasan. Agar penggunaan air
lebih efisien, sebaiknya memakai
sistem resirkulasi air. Dengan sistem
ini air yang telah digunakan akan
melalui saringan terlebih dahulu baik
secara fisis, biologis mapun khemis
sebelum digunakan selanjutnya ke
corong tetas. Dengan menggunakan
saringan tersebut, sistem resirkulasi
air dapat digunakan selama lebih
dari 6 bulan, selain lebih efisien, juga
mudah dalam pengontrolan
parameter kualitas air yang sesuai
dengan kebutuhan telur dan larva.
Bak penampungan air dan saringan
yang digunakan secara berkala kirakira
6 bulan sekali dibersihkan. Hal
ini untuk menghindari penyumbatan
aliran air oleh kotoran.
Tujuan penetasan telur meggunakan
corong tetas adalah untuk
meningkatkan daya tetas telur.
Tahap awal perkembangan telur,
telur sangat rentan terhadap
gangguan khususnya gangguan
secara mekanik. Gangguan secara
mekanik umumnya terjadi pada saat
membersihkan telur dari kotoran,
memasukkan telur ke corong
penetasan dan gerakan telur akibat
debit air yang terlalu besar. Oleh
sebab itu penanganan telur harus
dilakukan secara hati-hati. Debit air
yang terlalu besar dapat
menyebabkan telur membentur
dinding atau telur lainnya dengan
keras sehingga dapat
mengakibatkan kematian. Pada saat
panen, sering terdapat perbedaan
139
umur larva. Perbedaan ini karena
pemijahan induk tidak serentak
sehingga perkembangan embrio telur
setiap induk pada kolam pemijahan
yang sama sering berbeda. Demikian
juga ukuran telur setiap induk
berbeda-beda. Sebelum dimasukkan
ke corong penetasan, telur yang
berbeda baik masa inkubasi maupun
ukuran telur harus dipisahkan
terlebih dahulu. Pemisahan telur
bertujuan untuk memudahkan
pemanenan larva.
Pemisahan atau pemilihan telur
dapat dilakukan pada saat telur
diambil dari mulut induk dan pada
saat telur ditampung. Umumnya telur
pada satu induk seragam baik masa
inkubasi maupun ukuran. Oleh sebab
itu pemisahan telur lebih baik dan
lebih cepat dilakukan dilakukan
pada saat telur diambil dari mulut
induk. Setiap telur yang diambil dari
mulut induk ditampung dalam satu
wadah. Sedangkan telur dari induk
lain yang berbeda masa inkubasi dan
ukuran telurnya ditampung pada
wadah yang lain. Selanjutnya setelah
dibersihkan, telur yang sama masa
inkubasi dan ukuran dari induk yang
lain di tetaskan pada corong tetas
yang sama. Sedangkan telur yang
lain ditetaskan pada corong tetas
yang berbeda. Jika pemisahan telur
pada wadah penampungan dinama
seluruh telur ditampung dalam satu
wadah kemudian dilakukan
pemisahan akan lebih rumit dan
lama sehingga dapat mengakibatkan
telur mati. Kematian telur tersebut
dapat karena telur tidak bergerak,
benturan dan sinar matahari
langsung.
Masa inkubasi telur ikan nila
berhubungan dengan warna telur.
Telur yang baru dibuahi memiliki
warna kuning muda. Sedangkan telur
yang akan menetas berwarna kuning
kecoklatan. Telur yang berwarna
putih susu adalah telur mati.
Telur hasil seleksi dibersihkan dan
dipisahkan, dimasukkan ke dalam
corong tetas. Air terus menerus
dialirkan ke dalam corong tetas.
Besar kecilnya debit air yang masuk
ke dalam corong tetas di atur
menggunakan kran. Debit air untuk
penetasan telur ikan sebesar 0,8 liter
perdetik. Debit air yang terlalu besar
dapat mengakibatkan kematian telur
karena tekanan air sehingga telur
dapat terbentur ke dinding corong
tetas atau terbawa air keluar corong
tetas. Sebaliknya debit air yang
terlalu kecil dapat mengakibatkan
telur tidak bergerak dan kekurangan
oksigen. Telur yang tidak bergerak
dan kekurang oksigen akan mati.
Oleh sebab itu kegiatan sehari-hari
pada saat penetasan telur adalah
mengontrol debit air dan
membersihkan corong tetas. Corong
tetas dapat dibersihkan dengan
menyipon kotoran atau telur yang
mati. Pada saat pengontrolan debit
air di dalam corong tetas harus
selalu stabil sehingga tidak
mengganggu gerakan telur.
Air yang masuk pada corong tetas
memiliki tekanan yang merata
diseluruh bagian corong tetas agar
telur yang ada semua bergerak. Jika
tekanan aliran air hanya terdapat
pada beberapa begian corong tetas
saja mengakibatkan terdapat titik
mati tekanan air. Telur yang terdapat
140
pada tekanan titik mati tersebut tidak
bergerak dan mati.
Telur ditetaskan pada corong tetas
selama 5 - 7 hari. Selama penetasan
telur, air terus menerus dialirkan.
Hari ke dua penetasan telur akan
terlihat telur yang mati dan hidup.
Telur yang mati segera dibuang
karena akan mempengaruhi kualitas
air. Sumantadinata (1983)
mengatakan faktor-faktor yang
mempengaruhi daya tetas telur
adalah :
1. Kualitas telur. Kualitas telur
dipengaruhi oleh kualitas pakan
yang diberikan pada induk dan
tingkat kematangan telur.
2. Lingkungan yaitu kualitas air
terdiri dari suhu, oksigen, karbondioksida,
amonia, dll.
3. Gerakan air yang terlalu kuat
yang menyebabkan terjadinya
benturan yang keras di antara
telur atau benda lainnya
sehingga mengakibatkan telur
pecah.
Blaxter dalam Sumantadinata (1983),
penetasan telur dapat disebabkan
oleh gerakan telur, peningkatan suhu,
intensitas cahaya atau pengurangan
tekanan oksigen. Dalam penekanan
mortalitas telur, yang banyak
berperan adalah faktor kualitas air
dan kualitas telur selain penanganan
secara intensif.
Oleh karena itu induk betina hanya
dapat memijah perlu waktu lama.
Akan tetapi pada pemijahan secara
intensif, induk ikan nila betina dapat
dipijahkan setiap 2 - 4 minggu. Hal
ini dapat dijelaskan secara fisiologis
ikan sebagai berikut; pada pemijahan
alami, selama proses pengeraman
telur dan pemeliharaan larva, induk
betina akan terhambat
perkembangan gonadnya.
Sedangkan pada pemijahan intensif
proses tersebut dilakukan secara
buatan (corong tetas). Dengan
demikian induk betina dapat bebas
dari tugas tersebut dan segera
menyiapkan kembali untuk
pemijahan berikutnya dalam waktu
yang relatif cepat.
Pada ikan nila yang telurnya akan
ditetaskan pada corong penetasan
harus dilakukan pemanenan telur.
Pemanenan telur ikan nila ini
dilakukan pada hari ke 9.
Pemanenan dilakukan dengan cara
mengambil telur dari mulut induk
betina ikan nila. Sebelum
pemanenan terlebih dahulu
permukaan air kolam diturunkan
sampai ketinggian 10 - 20 cm. Jika
pemijahan dilakukan di hapa (waring),
maka caranya adalah dengan
menarik salah satu ujung hapa ke
salah satu sudut hapa. dengan hatihati
untuk menghindari induk
mengeluarkan telur. Karena induk
ikan nila jika merasa dalam bahaya
atau terdesak akan mengeluarkan
telur di sembarang tempat. Hal ini
akan menyulitkan dalam
mengumpulkan telur ikan nila.
Pengambilan telur ikan nila dilakukan
dengan menangkap induk satu
persatu. Penangkapan induk
dilakukan menggunakan seser kasar
dan seser halus. Kedua seser ini
digunakan pada saat bersamaan.
Seser kasar berfungsi untuk
menangkap induk sedangkan seser
halus berfungsi untuk menampung
telur ikan. Seser kasar terletak
141
dibagian atas dan seser halus
terletak dibagian bawah. Pada saat
menangkap induk dilakukan dengan
hati-hati agar telur tidak dikeluarkan.
Cara mengambil telur dari induk
betina yaitu dengan memegang
bagian kepala ikan. Pada saat
bersamaan salah satu jari tangan
membuka mulut dan tutup insang.
Selanjutnya tutup insang di siram air
sehingga telur keluar melalui rongga
mulut. Selanjutnya telur-telur
tersebut ditampung dalam wadah.
Hal yang perlu diperhatikan adalah
menghindari gerakan induk sekecil
mungkin agar telur yang telah keluar
tidak berserakan. Induk yang telah
diambil telurnya dan yang belum
memijah dikembalikan ke kolam
pemeliharaan induk.
Telur pada wadah penampungan
jangan terkena sinar matahari
langsung dan diupayakan telur selalu
bergerak. Telur yang terlalu lama
diam serta kena sinar matahari
langsung dapat menimbulkan
kematian. Selanjutnya sebelum
dimasukkan ke corong tetas, telur
terlebih dahulu dibersihkan dari
kotoran berupa lumpur, lumut, sisa
pakan dan sebagainya. Telur yang
telah bersih dari kotoran dapat
dimasukkan ke dalam corong
penetasan.
4. 4. Pemeliharaan larva dan
benih ikan
Larva adalah anak hewan
avertebrata yang masih harus
mengalami modifikasi menjadi lebih
besar atau lebih kecil untuk
mencapai bentuk dewasa. Menurut
Lagler (1956), larva adalah
organisme yang masih berbentuk
primitif atau belum mempunyai organ
tubuh lengkap seperti induknya untuk
menjadi bentuk definitif yaitu
metamorfosa. Perkembangan stadia
larva meliputi stadia pro-larva dan
stadia pasca larva. Stadia pro-larva
merupakan tahap larva yang masih
memiliki kuning telur, sedangkan
stadia pasca larva merupakan tahap
larva yang telah habis kuning
telurnya dan masa penyempurnaan
organ-organ tubuh yang ada. Akhir
stadia ini ditandai dengan bentuk
larva yang sama dengan induknya
yang biasa disebut dengan juvenil
atau benih ikan.
Larva ikan yang baru menetas
memiliki kuning telur. Larva tersebut
mengambil makanan dari kuning
telur. Kuning telur akan habis setelah
larva berumur 3 hari. Setelah kuning
telur habis, larva mengambil
makanan dari luar atau lingkungan
hidupnya. Larva ikan yang
dibudidayakan harus dilakukan
pemeliharaan untuk mencapai stadia
benih. Wadah yang dapat digunkan
untuk melakukan pemeliharaan larva
ini bermacam-macam.
Wadah pemeliharaan larva ini
antara lain dapat berupa bak atau
kolam. Pada pemeliharaan di bak
yang perlu diperhatikan adalah
sanitasi wadah sebelum digunakan
untuk pemeliharaan dengan cara
wadah direndam menggunakan
larutan Methilen Blue 100 ppm
selama 24 jam, kemudian dikuras
dan diisi air bersih. Sedangkan
wadah yang menggunakan kolam,
sebelum digunakan harus disiapkan
terlebih dahulu. Persiapan kolam
pemeliharaan larva/pendederan
142
meliputi perbaikan pematang,
pengolahan dasar kolam, perbaikan
pipa pemasukan dan pengeluaran,
pemupukan dan pengapuran.
Perbaikan pematang bertujuan untuk
mencegah kebocoran kolam.
Kebocoran kolam dapat diakibatkan
oleh binatang air seperti belut, ular,
kepiting dan lain-lain. Pematang
yang bocor mengakibatkan air kolam
tidak stabil dan benih ikan lolos
keluar kolam. Perbaikan pematang
yang bocor dilakukan dengan
menyumbat bagian yang bocor
menggunakan tanah atau ijuk.
Pengolahan dasar kolam dilakukan
dengan mencangkul dasar kolam.
Tujuan mengolah dasar kolam
adalah untuk menguapkan gas
beracun yang terdapat di dasar
kolam. Tanah yang baru dicangkul
diratakan. Setelah dasar kolam rata,
lalu dibuat saluran ditengah kolam.
Saluran ini disebut kemalir. Kemalir
berfungsi untuk memudahkan
pemanenan dan sebagai tempat
berlindung benih ikan pada siang
hari dan jika ada predator
(pemangsa). Kemalir dibuat mulai
dari pipa pemasukan air sampai pipa
pengeluaran air. Kemalir dibuat
dengan ukuran lebar 0,5 meter dan
kedalaman 0,3 meter.
Pipa pemasukan dan pengeluaran
air dilengkapi saringan. Fungsi
saringan pada pipa pemasukanan
adalah untuk menghindari masuknya
ikan liar atau sampah, sedangkan
fungsi saringan pada pipa
pengeluaran adalah untuk
menghindari lolosnya benih ikan
keluar kolam. Setelah melakukan
pengolahan dasar kolam dan
perbaikan pematang, kemudian
dilakukan pengapuran.
Pengapuran bertujuan untuk
membasmi bibit penyakit dan
meningkatkan kadar pH tanah. Kapur
di tebar merata di dasar kolam. Dosis
kapur yang di tebar adalah 10 - 50
gr/m2 . Untuk kolam baru diperlukan
50 - 150 kg kapur/m2 Kapur
ditebarkan pada dasar kolam lalu
dicampur dengan lapisan lumpur
paling atas sedalam 5 cm .
Seminggu kemudian lakukan
pemupukan dengan 50 - 100 kg
pupuk kandang/100 m2, TSP 0,25
kg/100 m2, dan urea 0,25 kg/100 m2.
Semprot kolam dengan
menggunakan pestisida golongan
organophosphat seperti Sumithion,
Argothion, dan Diazinon dengan
konsentrasi 3 - 4 ppm. Kolam sudah
dapat diairi 5 - 7 hari setelah semua
rangkaian kegiatan tersebut diatas
dilakukan. Kolam yang telah di pupuk
dan dikapur segera ditutup pipa
pengeluaran air. Selanjutnya pipa
pemasukan air di buka. Setelah
ketinggian air 20 - 30 cm, tutup pipa
pemasukan air. Biarkan kolam
selama 5 - 7 hari. Hari ke - 8 benih
ikan dapat di tebar ke kolam untuk
didederkan.
Setelah dipastikan hampir semua
telur menetas, kakaban diangkat
untuk menghindari penurunan
kualitas air akibat adanya
pembusukan dari telur – telur yang
tidak menetas. Disamping itu juga
dilakukan pergantian air bak
penetasan dengan membuang air
sampai ¾ bagian volume air dan
kemudian diisi kembali dengan air
yang baru. Larva ikan lele yang baru
menetas akan berwarna hijau dan
143
berkumpul di dasar bak penetasan
dibagian yang gelap. Ukuran larva
lebih kurang 5 – 7 mm dengan berat
1,2 – 3 mg. Setelah berumur 2 hari,
larva mulai bergerak dan menyebar
ke seluruh bak penetasan. Sampai
umur 3 hari larva tidak perlu diberi
pakan tambahan, karena masih
memanfaatkan cadangan makanan
yang dibawa di dalam tubuhnya,
yakni yang dikenal dengan “kuning
telur”. Larva ikan lele dumbo baru
diberikan pakan tambahan setelah
berumur 4 hari dengan memberikan
emulsi kuning telur ayam. Pemberian
pakan tersebut sampai umur 5 hari.
Setelah menginjak umur 6 hari, larva
diberi pakan alami (makanan hidup)
yang berukuran kecil, seperti kutu air
(daphnia sp) atau cacing sutera
(tubifex). Pakan buatan kurang baik
diberikan karena jika tidak habis
akan membusuk sehingga
menurunkan kualitas air pada bak
pemeliharaan. Pakan alami diberikan
3 kali sehari, pagi, siang dan sore
hari atau sesuai dengan kebutuhan.
Faktor lain yang perlu diperhatikan
selama pemeliharaan benih atau
larva adalah kualitas air. Pergantian
air dilakukan setiap 2 – 3 hari sekali
atau tergantung dari kebutuhan.
Jumlah air yang diganti sebanyak
50–70 % dengan cara menyipon
(mengeluarkan air secara selektif
dengan selang) sambil membuang
kotoran yang mengendap pada
dasar bak pemeliharaan larva.
Selang yang digunakan adalah
selang plastik yang lentur dan biasa
digunakan sebagai selang air.
Setelah benih lele berumur 2 – 3
minggu dan mencapai ukuran 0,5 – 2
cm, benih sudah siap untuk dipanen.
Agar benih lele tidak mengalami
stres, pemanenan dilakukan pada
pagi atau sore hari saat suhu rendah.
Cara memanennya adalah air dalam
bak disurutkan secara perlahan,
selanjutnya benih ditangkap secara
hati hati menggunakan seser
(serokan) halus. Benih dapat
langsung dipasarkan (dijual)
langsung kepada pembeli atau
didederkan pada kolam pendederan.
Larva yang akan didederkan
sebaiknya jangan ditebarkan
langsung ke dalam kolam namun
terlebih dahulu dilakukan aklimatisasi
untuk menghindarkan perubahan
suhu ekstrim antara suhu kolam
dengan suhu air pada wadah
pengangkutan. Padat penebaran
larva 10.000–15.000 ekor/m2.
Selama masa pendederan (28 - 30
hari) pemupukan ulang perlu
dilakukan untuk menjamin
tersedianya makanan alami yang
cukup. Pemupukan dapat dilakukan
1 - 2 kali seminggu, menggunakan
pupuk kandang (25 kg kotoran sapi
atau 3 kg kotoran ayam/100 m2).
Pada saat pemeliharaan dapat diberi
makanan tambahan berupa
makanan halus seperti bekatul,
konsentrat, atau pakan buatan
bentuk tepung. Pengelolaan kualitas
air dapat dilakukan berupa
pengontrolan sistem pemasukan air
agar tetap mengalir untuk
mempertahankan tinggi air di kolam
serta menjamin difusi oksigen terlarut
kedalam kolam. Sedangkan
pengendalian hama penyakit dapat
dilakukan dengan cara mencegah
hama atau hewan liar masuk ke
kolam seperti: membersihkan
lingkungan sekitar kolam, memasang
144
saringan pada pipa inlet, memasang
pagar sekeliling kolam, memasang
lampu perangkap, dan lain
sebagainya.
Pendederan adalah pemeliharaan
benih lele dumbo yang berasal dari
hasil pembenihan sehingga
mencapai ukuran tertentu.
Pendederan dilakukan dalam dua
tahap, yakni pendederan pertama
dan pendederan kedua. Pada
pendederan pertama, benih lele
dumbo yang dipelihara adalah benih
yang berasal dari pembenihan yang
berukuran 1 – 3 cm. Benih ini
dipeliharan selama 12 – 15 hari
sehingga saat panen akan diperoleh
lele dumbo berukuran kurang lebih 5
– 6 cm perekornya. Pada
pendederan ke dua, benih yang
dipelihara berasal dari hasil
pendederan pertama. Pemeliharaan
dilakukan selama 12 – 15 hari
sehingga diperoleh benih lele dumbo
berukuran 8 – 12 cm perekornya.
Pendederan ini dapat dilakukan di
kolam tanah atau kolam tembok.
Penebaran benih dilakukan setelah 6
hari dari pemupukan atau saat
pakan alami telah tersedia.
Penebaran benih dilakukan pada
pagi atau sore hari dengan
kepadatan 200 – 300 ekor/M2
berukuran 1 - 3 cm per ekornya.
Penebaran harus dilakukan dengan
hati-hati agar benih lele dumbo tidak
mengalami stress. Benih yang akan
didederkan sebaiknya jangan ditebar
langsung ke kolam namun terlebih
dahulu dilakukan aklimatisasi untuk
menghindari perubahan suhu yang
mencolok antara suhu air kolam dan
suhu air pada wadah pengangkutan.
Cara penebaran untuk proses
adaptasi (aklimatisasi) benih lele
dumbo cukup mudah. Benih lele
dumbo yang masih berada di dalam
wadah pengangkutan di biarkan
terapung-apung diatas permukaan
air selama 5 menit. Selanjutnya
ditambahkan air dari kolam ke wadah
pengangkutan sedikit demi sedikit.
Dengan cara ini diharapkan kualitas
air yang ada di dalam wadah
pengangkutan tersebut akan sama
dengan yang ada di kolam.
Kegiatan pemeliharaan benih
merupakan kegiatan inti dari
pendederan. Selama pemeliharaan,
benih harus diberi pakan tambahan.
Pakan tambahan berupa tepung
pelet sebanyak 3 – 5 % dari jumlah
total benih yang dipelihara. Pakan
diberikan 3 – 4 kali sehari. Agar
pemberian pakan lebih efektif,
sebaiknya pemberian pakan
disebarkan merata pada kolam
pendederan.
Untuk memperkecil mortalitas atau
kehilangan benih, selama
pemeliharaan harus dilakukan
pengontrolan terhadap serangan
hama dan penyakit. Hama yang
menyerang benih lele berupa belut,
ular, ikan gabus. Tindakan
pencegahan penyakit cukup dengan
menjaga kualitas dan kuatitas air
kolam, yakni dengan menghindarkan
pemberian pakan yang berlebihan.
Karena pakan yang berlebihan akan
menumpuk di dasar kolam dan bisa
membusuk yang akhirnya menjadi
salah satu sumber penyakit.
Pada ikan nila pemeliharaan larva
dan benih ikan dapat dilakukan pada
wadah pemeliharaan larva antara
145
lain adalah akuarium, fibre glass, bak
dan sebagainya. Sebelum larva
dimasukkan, wadah pemeliharaan
larva terlebih dahulu dibersihkan dan
dilakukan sanitasi. Sanitasi dapat
menggunakan malachyte green atau
methalyn blue 10 ppm dengan cara
dibilas keseluruh permukaan wadah.
Pemeliharaan larva dilakukan
selama 6 - 8 hari, larva berumur 3
hari sudah dapat berenang di dasar
wadah pemeliharaan. Sedangkan
larva umur 5 hari sudah dapat
berenang dipermukaan air.
Pemeliharaan larva meliputi
pemberian pakan dan pengelolaan
kualitas air. Selama pemeliharaan,
larva dapat diberi pakan berupa
pakan alami, tepung ikan, dedak
halus dan sebagainya. Pakan yang
diberikan harus lebih kecil dari
bukaan mulut larva dan jumlah
pakan. Ukuran butiran pakan harus
lebih kecil dari bukuaan mulut larva.
Demikian pula jumlah pakan harus
sesuai dengan jumlah larva. Pakan
yang tersisa di wadah pemeliharaan
dapat mengakibatkan kualitas air
kurang baik. Oleh sebab itu setiap
hari dilakukan penyiponan terhadap
kotoran atau sisa pakan. Air harus
terus menerus mengalir di wadah.
Selain itu sebaiknya diberi aerasi
pada wadah pemeliharaan larva.
Benih yang telah berumur 7 - 8 hari
ditebar di kolam pendederan.
Diharapkan pada saat penebaran
pakan alami sudah tersedia di kolam.
Padat penebaran benih ikan nila
sebanyak 75 - 100 ekor/m2. Benih
dari wadah pemeliharaan larva
ditangkap menggunakan seser halus.
Larva yang tertangkap tersebut
ditampung di wadah. Selanjutnya
benih tersebut ditebar di kolam.
Sebelum ditebar terlebih dahulu di
lakukan aklimatisasi dengan cara
wadah yang berisi larva dimasukkan
ke dalam air kolam. Jika suhu air
wadah penampungan larva lebih
rendah dari suhu air kolam maka air
kolam dimasukkan sedikit demi
sedikit ke wadah penampungan
sampai suhu kedua air tersebut
sama. Selanjutnya larva ditebar
dengan cara memiringkan wadah
penampungan larva sehingga larva
dapat keluar dengan sendirinya
berenang ke kolam. Penebaran larva
sebaiknya dilakukan pagi atau sore
hari pada saat suhu udara rendah.
Pendederan dilakukan selama 3 - 4
minggu. Pada umur tersebut benih
ikan sudah men-capai ukuran 3 - 5
cm. Selama pendederan benih ikan
selain mendapatkan makanan alami
di kolam juga diberi pakan tambahan
yang halus seperti dedak. Pakan
tambahan tersebut ditebar di
sepanjang kolam. Frekuensi
pemberian pakan sebanyak 2 - 3 kali
perhari. Kandungan protein pakan
benih ikan sebesar 30 %. Jumlah
pakan yang diberikan 10 % dari
biomasa.
Kualitas air sangat penting
diperhatikan dalam kegiatan
pendederan. Suhu yang baik untuk
pendederan ikan nila adalah 28 - 30
C. Sedangkan oksigen terlarut
sebesar 6 - 8 ppm. Pertumbuhan
ikan mulai terganggu pada suhu 18
C dan 30 C.
Pada suhu optimum, pertumbuhan
ikan normal. Suhu air sangat
146
berpengaruh pada laju metabolisme
ikan. Perubahan temperatur yang
terlalu drastis dapat menimbulkan
gangguan fisiologis ikan yang dapat
menyebabkan ikan stress.
Pencegahan hama dan penyakit
pada kegiatan pendederan sangat
perlu dilakukan. Pencegahan
tersebut dapat dilakukan dengan
pengeringan dan pengapuran dasar
kolam serta pergantian air kolam,
membuat saringan air sebelum air
masuk ke kolam. Hama yang sering
menyerang benih ikan nila adalah
belut, ular, burung, ikan gabus dan
ikan lele. Penyakit yang menyerang
terutama penyakit parasitik seperti
Ichthyophthirius multifilis yang
mengakibatkan bintik putih
dipermukaan tubuh ikan dan
mengakibatkan kematian masal.
Pencegahan penyakit ini dilakukan
dengan menambahkan garam dapur
di kolam media pendederan
sebanyak 200 gr/m3.
Pemeliharaan benih pada ikan patin
meliputi pemberian pakan,
pengelolaan kualitas air serta
pengendalian/hama penyakit ikan.
Pemberian pakan yang perlu
diperhatikan adalah jenis pakan,
kadar protein, jumlah ukuran, dan
frekuensi pemberian pakan.
Pemberian pakan benih ikan patin
yang dipelihara secara intensif dapat
diberikan jenis cacing tubifex,
daphnia, rotifera dan lain-lain.
Pemberian pakan benih ikan harus
disesuaikan ukuran benih ikan
dengan ukuran pakan. Pakan yang
diberikan untuk benih ikan sesuai
dengan bukaan mulut benih ikan.
Pakan yang diberikan harus lebih
kecil dengan bukaan mulut ikan.
Pengelolaan kualitas air mutlak perlu
diperlukan karena benih patin sangat
peka terhadap perubahan lingkungan
khususnya kualitas air. Pada
pemeliharaan benih ikan patin
secara intensif yang dilakukan di
bak atau akuarium perlu dilakukan
pembersihan kotoran dan
penggantian air di wadah
pemeliharaan. Pembersihan wadah
dilakukan dengan menyipon kotoran
dan sisa makanan menggunakan
selang. Pada saat menyipon harus
dilakukan dengan hati-hati agar
benih ikan tidak ikut keluar.
Penyiponan dapat juga dilakukan
juga sekaligus dengan penggantian
air. Air yang dikeluarkan pada saat
penyiponan segera diganti dengan
air bersih. Air yang dikeluarkan
sebanyak 25 - 50%. Sehingga air
yang diganti sebanyak air yang
dikeluarkan. Hal yang perlu
diperhatikan pada saat penggantian
air adalah suhu air. Suhu air yang
akan dimasukkan ke dalam wadah
pemeliharan. Selain itu air baru yang
akan dimasukkan sebaiknya telah
diendapkan terlebih dahulu.
Pengendalian hama dan penyakit
benih ikan patin lebih ditekankan
pada pencegahan. Pencegahan
dapat dilakukan dengan sanitasi
lingkungan seperti wadah dan air.
Demikian juga air yang akan
digunakan sebaiknya disanitasi
demgan menggunakan methylen
blue, malachyte green, Kalium
permanganat dan sebagainya.
Wadah yang akan digunakan
sebaiknya terlebih dahulu
dibersihkan menggunakan deterjen.
Hama dan penyakit ikan timbul
disebabkan oleh kondisi lingkungan,
147
kondisi benih ikan dan bibit penyakit.
Ketiga bibit penyakit tersebut
menjadi suatu sistem sehingga benih
ikan terserang penyakit. Kondisi
lingkungan yang kotor
menyebabkan benih ikan lemah,
kurang nafsu makan. Pada kondisi
tersebut benih ikan mudah terserang
bibit penyakit. Parasit/penyebab
penyakit sering menyerang bibit
benih ikan patin adalah
Ichthyopthirius mulitifilis atau white
spot, gyrodactius sp, dactilogyrus sp,
aeromonas sp dan sebagainya.
Ichthyopthirius sp sering menyerang
pada bagian sisik dan sirip benih
ikan. Benih ikan yang terserang
penyakit ich biasanya menggosokgosokkan
bagian tubuhnya ke
dinding atau dasar wadah.
Pemeliharan benih ikan patin
dilakukan secara intensif di bak,
akuarium, fiberglass dan dapat juga
dilakukan dipeliharaan di kolam. Jika
pemeliharan benih ikan patin di
kolam harus dilakukan persiapan.
Persiapan tersebut meliputi
pengolahan dasar kolam,
pemupukan dan pengapuran,
pembuatan kamalir, perbaikan
saluran dan sebagainya.
Pengolahan dasar kolam berfungsi
untuk mengoksidasi gas beracun
yang terdapat di dasar kolam.
Pengolahan dasar kolam meliputi
pencangkul tanah dasar kolam.
Selanjutnya dilakukan pemerataan
dasar kolam. Pemupukan bertujuan
untuk menumbuhkan pakan alami
dikolam. Pakan alami ini diharapkan
menjadi pakan utama bagi benih ikan.
Pupuk ditebar merata di dasar kolam.
Dosis pupuk yang ditebar sebanyak
0,3 - 0,5 kg/m2.
Selanjutnya kolam diisi dengan air
setinggi 40 cm. Pakan alami akan
mencapai puncaknya aetelah 10 –
14 hari dari pemupukan. Pada hari
ke 10 air kolam dinaikkan menjadi
50-70 cm. Selanjutnya benih ikan
dapat dilepas ke kolam. Pelepasan
benih sebaiknya dilakukan sore hari
agar suhu air kolam sudah menurun.
Pelepasan benih ikan menggunakan
metode aklimatisasi. Demikian juga
untuk pelepasan benih ikan patin ini
juga menggunakan metode
aklimatisasi. Metode aklimatisasi
adalah suatu cara memberikan
kesempatan kepada ikan untuk
menyesuaikan diri terhadap
lingkungan baru. Lingkungan baru
tersebut adalah suhu, pH dan
salinitas. Suhu
merupakan ”Controling factor” yaitu
apabila suhu air berubah maka faktor
yang lain akan berubah. Sedangkan
pH termasuk ”Masking factor” yaitu
sebagai faktor pengendali perubahan
kimia dalam air. Ikan mempunyai alat
dan cara untuk beradaptasi terhadap
lingkungannya. Alat-alat tersebut
akan dipergunakan pada saat
sedang mengadakan proses
osmoregulasi. Alat-alat tersebut
antara lain kulit, insang, ginjal.
Namun demikian ikan mempunyai
batas toleransi terhadap perubahan
lingkungannya. Begitu juga ikan
mempunyai batas toleransi terhadap
perubahan lingkungannya. Sebagai
contoh ikan hanya mampu mentolerir
perubahan suhu hanya ± 5 0C,
perubahan ini mampu ditolerir 0,5 0C
permenit. Betapa pentingnya kehatihatian
saat pelepasan benih ikan
patin.
148
Padat penebaran sangat tergantung
kepada ”Caryng Capacity” kolam
tersebut dan sifat serta ukuran ikan.
Caryng capacity bisa diartikan daya
dukung kolam yang menyangkut
kelimpahan pakan alami,
ketersediaan oksigen serta
minimalnya faktor penggangu
hidupnya ikan. Caryng capacity bisa
dihitung, contoh : ada beberapa juta
sel per ml kelimpahan planktonnya,
ada berapa ppm kandungan
oksigennya atau berapa kapasitas
oksigen per volume kolam tersebut.
Kemudian dengan menggunakan
metode sampling ada berapa juta sel
plankton yang terdapat dalam perut
ikan dan berapa laju kecepatan
respirasi ikan tersebut dalam
menyerap oksigen.
Hal ini bisa digunakan rumus
Schroeder (1975), respirasi ikan
pada suhu 20-30 0C.
Y= 0.001 W0,82
Y= Konsumsi O2/ikan (gr)/jam
W= Berat ikan
R= 0.99
Dengan membandingkan caryng
capacity dengan jumlah plankton isi
perut ikan dan laju respirasi ikan
maka padat penebaran bisa dicari.
Secara singkat caryng capacity
biasanya telah diketemukan
berdasarkan pengalaman atas
beberapa kali pendederan ikan atau
pemeliharaan ikan pada kolam
tersebut. Contoh kolam A seluas 200
m2 biasanya ditebar ikan 100 ekor/
m2 atau menghasilkan ikan 300 kg.
Dalam pemeliharaan benih ikan patin
harus dilakukan pemberian pakan.
Menurut beberapa penelitian bahwa
pendekatan jumlah pakan yang
diberikan per hari adalah 3% dari
total bobot ikan. Frekuensi
pemberian pakannya 3 kali yaitu pagi,
siang dan sore hari dengan jumlah
yang sama. Tetapi kondisi
permintaan pakan akan berubahubah
tergantung suhu air. Apabila
cuaca cerah, matahari bersinar
terang maka suhu air akan naik
segala proses/metabolisme
dipercepat. Barangkali apabila
kondisi demikian frekuensi
pemberian pakan akan lebih dari 2
kali. Tetapi apabila cuaca mendung,
matahari tidak bersinar otomatis
suhu akan menurun, kondisi ini
dibarengi dengan fotosintesis
plankton terhambat. Sehingga
produksi oksigen menurun sebagai
akibat nafsu makan ikan menurun
permintaan ikan akan pakan juga
menurun. Ada suatu teori bahwa
untuk mengatasi ikan kekurangan
oksigen disamping melakukan aerasi
air, diusahakan ikan selalu berenang
dipermukaan air. Hal ini terjadi
apabila ikan dipuasakan.
Pakan yang diberikan selama
pendederan benih ikan patin adalah
campuran tepung pelet dengan
bekatul dengan perbandingan 1 : 2.
Tetapi sebenarnya jenis ikan ini
sangat menyukai pakan alami. Jika
kombinasi kedua jenis pakan yaitu
pakan buatan dan pakan alami
diberikan bersama adalah sangat
baik, karena unsur gizinya saling
melengkapi. Dari hari kehari ikan
hidup itu tumbuh, baik bertambah
panjang maupun bertambah berat.
Begitu pula dari hari ke hari populasi
ikan semakin berkurang ada
beberapa ikan yang mati. Atas dasar
kejadian ini maka untuk menetukan
149
jumlah pakan pada hari-hari
berikutnya perlu diadakan sampling
ikan (Gambar 4.24). Jika total bobot
ikan diketahui maka jumlah pakan
yang dibutuhkan dapat dihitung.
Konversi/efesiensi pakan akan dapat
dihitung apabila jumlah pakan yang
diberikan serta bobot total ikan
diketahui. Untuk itu pendataan hal ini
perlu ketekunan.
Gambar 4.24. Sampling benih ikan
4.5. Pembesaran Ikan
Pembesaran ikan merupakan salah
satu proses dalam budidaya ikan
yang bertujuan untuk memperoleh
ikan ukuran konsumsi. Pada usaha
budidaya ikan pembesaran
merupakan segmen usaha yang
banyak dilakukan oleh para
pembudidaya ikan. Dalam
melakukan pembesaran ikan ini
relatif tidak terlalu sulit karena
ketrampilan yang dibutuhkan tidak
sesulit dalam melakukan
pembenihan ikan. Pada kegiatan
pembesaran ikan yang perlu
diperhatikan antara lain adalah
wadah yang akan digunakan dalam
proses pembesaran, padat
penebaran, pola pemberian pakan,
pencegahan terhadap hama dan
penyakit ikan, pengontrolan
pertumbuhan (sampling, grading dan
sortasi) serta pengelolaan kualitas air.
Berdasarkan jenis pakan yang
digunakan dalam melakukan proses
pembesaran ikan dapat
dikelompokkan menjadi tiga
kelompok yaitu :
1. Pembesaran ikan secara
tradisional yaitu pembesaran ikan
yang hanya mengandalkan
pakan alami yang terdapat dalam
kolam budidaya. Padat
penebaran disesuaikan dengan
daya dukung kolam dan pakan
yang tersedia di kolam
pembesaran. Dalam pembesaran
tradisional ini kesuburan perairan
akan sangat menentukan
tumbuhnya pakan alami.
Misalnya pembesaran ikan pada
kolam tergenang, pembesaran
ikan disawah.
2. Pembesaran ikan semiintensif
yaitu pembesaran ikan yang lebih
mengutamakan pakan alami
yang terdapat pada kolam dan
diberi pakan tambahan yang
tidak lengkap kandungan gizi dari
pakan tersebut. Pada
pembesaran semi intensif ini
padat penebaran lebih tinggi
dibandingkan dengan tradisional.
Misalnya melakukan pembesaran
ikan pada kolam air tenang
dengan memberikan pakan
tambahan berupa dedak selain
pakan alami yang terdapat pada
kolam pembesaran.
3. Pembesaran ikan intensif yaitu
pembesaran ikan yang dalam
proses pemeliharaannya
mengandalkan pakan buatan
dalam pemberian pakannya serta
150
dilakukan pada wadah yang
terbatas dengan kepadatan
maksimal. Dalam pembesaran
secara intensif ini harus
diperhitungkan kualitas dan
kuantitas air yang masuk
kedalam kolam pembesaran.
4.5.1. Pembesaran ikan mas
Pembesaran ikan mas dapat
dibedakan menjadi 3 kelompok
berdasarkan penyediaan pakan dan
luas lahan pemeliharaan, yaitu :
1. Pembesaran ikan mas secara
ekstensif/tradisional.
2. Pembesaran ikan secara semi
intensif.
3. Pembesaran ikan mas secara
intensif.
Pembesaran ikan mas secara
tradisional adalah pembesaran ikan
mas dalam kolam yang tenang
airnya dan dalam pemeliharaannya
hanya mengandalakan pakan yang
ada didalam kolam pemeliharaan,
tidak ada pakan tambahan. Biasanya
ukuran kolam pembesaran relatif
luas (lebih dari 200m2).
Pembesaran secara semi intensif
adalah pembesaran ikan mas dalam
kolam air tenang tetapi dalam
pemeliharannya diberi makanan
tambahan. Makanan tambahan ini
dapat berupa dedak, limbah rumah
tangga, daun-daunan dan
sebagainya. Selain itu dapat juga
ditambahkan pakan buatan (pellet)
tetapi jumlahnya sedikit.
Pembesaran ikan mas di sawah dan
di dalam kerambah merupakan salah
satu contoh pembesaran ikan mas
secara semi intensif.
Pembesaran ikan mas secara
intensif adalah ikan mas dalam air
yang mengalir, ukuran kolam
pemeliharaan relatif kecil (kurang
dari 100m2) dan sangat bergantung
pada pakan buatan. Pakan buatan
yang diberikan biasanya adalah
pellet. Salah satu contoh
pembesaran ikan mas secara intensif
adalah pembesaran ikan mas di
kolam air deras (running water) atau
jaring terapung.
Berdasarkan jenis ikan yang
dipelihara dalam kolam
pemeliharaan/pembesaran ikan mas
di kelompokkan menjadi 2, yaitu :
1. Mono kultur, yaitu pemeliharaan
ikan mas dalam wadah
pembesaran yang hanya diisi
oleh ikan mas saja. Dalam
pemeliharaan ikan mas secara
monokultur dapat dikelompokkan
menjadi tunggal kelamin dan
campur kelamin.
Pemeliharaan ikan mas tunggal
kelamin adalah pemeliharaan
ikan mas yang menggunakan
ikan jantan atau ikan betina saja.
Pemeliharaan ikan mas campur
kelamin adalah pemeliharaan
ikan mas dengan menggunakan
ikan jantan dan betina bersamasama
dalam wadah
pemeliharaan. Hal ini muncul
karena adanya kecenderungan
pada ikan mas betina untuk
tumbuh lebih cepat dibandingkan
dengan ikan jantan.
151
2. Polikultur yaitu pemeliharaan ikan
mas dengan mempergunakan
lebih dari satu jenis ikan dalam
wadah pemeliharaan. Ikan mas
dapat dipelihara secara polikultur
dengan ikan mas atau ikan nila,
karena jenis ikan ini bukan
merupakan pesaing makanan
dalam kolam pemeliharaan.
Dalam melakukan usaha
pembesaran ikan mas, ukuran benih
yang akan digunakan sangat
bergantung kepada sistem budidaya
yang akan ditetapkan. Pada
budidaya ikan mas di kolam air deras,
ukuran benih yang dapat digunakan
sebaiknya berukuran 100 gram/ekor.
Sedangkan pembesaran ikan mas di
jaring terapung saat ini sudah dapat
menggunakan benih ikan mas yang
berukuran lebih dari 5 – 8 cm.
Padat penebaran benih ikan mas di
kolam pemeliharaan harus dilakukan
dengan hati-hati dan biasanya di
tebar pada saat matahari belum
bersinar. Agar benih yang ditebar
tidak mengalami stress atau tingkat
kematian yang tinggi. Sebaiknya
benih ikan mas tersebut dibiarkan
keluar dengan sendirinya dari tempat
penampungan benih (plastik)
kedalam pemeliharaan.
Hal-hal yang harus diperhatikan
dalam melakukan pembesaran ikan
mas sampai mencapai ukuran
konsumsi adalah :
1. Pakan.
Pakan merupakan suatu sumber
energi bagi ikan. Tanpa makanan
ikan tidak akan tumbuh dan
berkembang biak. Pakan yang
dapat diberikan untuk ikan mas
adalah pakan alami, pakan
buatan dan pakan tambahan.
Pakan alami adalah makanan
hidup bagi larva dan benih ikan
yang diperoleh dari
perairan/kolam atau
membudidayakannya secara
terpisah. Ikan mas merupakan
ikan pemakan segala (omaevora),
oleh karena itu sebaiknya pada
kolam pemeliharaan harus
dilakukan pemupukan awal 3-5
hari sebelum penebaran benih
dan pemupukan susulan agar
ketersediaan pakan alami di
dalam kolam pemeliharaan selalu
ada. Ketersediaan pakan alami
yang melimpah akan
menguntungkan bagi ikan dan
petani itu sendiri karena tidak lagi
membutuhkan pakan tambahan
dalam pemeliharaannya.
Pakan tambahan yang diberikan
dalam bentuk apa adanya
kepada ikan pemeliharaan
seperti daun-daunnan, keong,
limbah rumah tangga dan lainlain.
Pakan tambahan
dibutuhkan oleh ikan mas dalam
pemeliharaan ikan mas secara
semi intensif.
Pakan buatan adalah pakan yang
dibuat dengan susunan bahan
tertentu dengan gizi sesuai
keperluan ikan. Pakan buatan
dapat berbentuk pellet, larutan
(emulsi dan suspensi), lembaran
(flake atau waren) dan remahan.
Ikan mas yang dipelihara secara
intensif dan semi intensif
memerlukan pakan buatan.
Bentuk pakan buatan yang biasa
diberikan adalah pellet. Garis
152
tengah pellet berkisar antara 2-4
mm.
2. Pengelolaan kualitas air.
Pengelolaan kualitas air adalah
cara pengendalian kondisi air di
dalam kolam budidaya
sedemikian rupa sehingga
memenuhi persyaratan hidup
bagi ikan yang akan di pelihara.
Dalam pembesaran ikan mas agar
dapat tumbuh dengan optimal maka
kondisi air kolam pembesaran harus
sesuai dengan kebutuhan ikan mas.
Variable kualitas air yang sangat
berpengaruh pada ikan mas antara
lain :
Suhu air
Suhu air merupakan faktor
penting yang harus diperhatikan
karena dapat mempengaruhi laju
metabolisme dalam tubuh ikan.
Pada suhu air yang tinggi maka
laju metabolisme akan meningkat,
sedangkan pada suhu yang
rendah maka laju metabolisme
akan menurun. Dengan suhu
yang optimal maka laju
metabolisme akan optimal.
Pertumbuhan ikan mas sangat
dipengaruhi oleh suhu air, baik
dalam usaha pembesaran ikan
mas atau pembenihan ikan mas.
Suhu yang optimal untuk
pertumbuhan ikan mas berkisar
antara 25-30oC
Kadar oksigen terlarut.
Untuk dapat hidup manusia
membutuhkan oksigen yang
dibutuhkan ikan yang hidup di
dalam air disebut dengan
oksigen terlarut. Ikan mas
membutuhkan oksigen dalam
bentuk terlarut dalam air untuk
proses metabolisme di dalam
tubuhnya dan untuk bernafas.
Kandungan oksigen terlarut di
dalam air agar ikan mas tumbuh
dan berkembang minimal 3 ppm.
Kebutuhan oksigen terlarut ini
sangat dipengaruhi oleh suhu air,
biasanya suhu air meningkat
maka kandungan oksigen terlarut
menurun (berkurang).
Kadar CO2
Sumber air yang akan digunakan
untuk budidaya ikan mas antara
lain adalah air tanah, air sungai
atau air hujan. Air tanah adalah
salah satu sumber air yang
banyak digunakan untuk
budidaya. Jika menggunakan
maka harus di tampung terlebih
dahulu dalam bak penampung air
minimal 24 jam, karena air tanah
tersebut mengandung CO2 yang
tinggi berkaitan erat dengan
kadar O2 yang terlarut yang
rendah. Oleh karena itu kadar
CO2 yang layak untuk budidaya
ikan mas sebaiknya < 5mg/l
Volume air
Ikan mas yang dipelihara di
dalam kolam air deras
mempunyai pertumbuhan yang
lebih cepat dibandingkan dengan
ikan mas yang dipelihara d kolam
air tenang. Pada pemeliharaan
ikan mas di kolam air deras
membtuhkan volume air yang
besar, dimana debit air yang
masuk ke dalam kolam
pemeliharaan berkisar antara 75-
300 liter/detik.
153
Pada kolam air deras dengan
debit air yang tinggi maka
kandungan oksigen terlarut di
dalam kolam pemeliharaan cukup
tinggi. Dengan oksigen yang
cukup maka proses metabolisme
ikan akan optimal maka
pertumbuhan ikan pun akan
optimal.
Kekeruhan air
Dalam membesarkan ikan mas di
kolam pemeliharaan harus
diperhatikan juga tentang
kekeruhan air. Kekeruhan air
menggambarkan tentang banyak
cahaya yang dapat masuk ke
dalam perairan. Kekeruhan air
ini disebabkan oleh bahan
organic dan anorganik yang
terlarut di dalam kolam. Air yang
jernih biasanya miskin akan
mineral, air yang terlalu keruhpun
tidak baik untuk budidaya ikan
karena banyak mengandung
Lumpur. Air yang baik untuk
budidaya ikan yang mempunyai
warna air tidak keruh dan tidak
jernih. Untuk mengukur
kekeruhan biasanya dilakukan
pengukuran kecerahan air
karena kecerahan air sangat
bergantung kepada warna iar
dan kekeruhan. Nilai kecerahan
yang ideal untuk pertumbuhan air
sebaiknya berkisar antara 25 –
40 cm.
3. Pengelolaan Kesehatan Ikan
Salah satu kendala dalam
membudidayakan ikan mas
adalah terserangnya ikan mas
yang dibudidayakan dari hama
dan penyakit. Jenis hama dan
penyakit yang biasanya
menyerang ikan mas ukuran
larva sampai konsumsi dapat
dikelompokkan menjadi 4
golongan, yaitu :
Hama, misalnya huhurangan,
notorecta sp, eybister sp dsb.
Parasit, misalnya
ichthyoptherius multifiliis
berbentuk bulat putih yang
menempel pada badab ikan,
trichodina sp dsb.
Cendawan
Bakteri dan virus.
Hama yang menyerang ikan pilihan
dapat diatasi dengan melakukan
penyaringan terhadap air yang
masuk ke dalam kolam pemeliharaan.
Penyakit ikan di kolam pemeliharaan
ikan mas akan muncul jika kondisi
perairan kolam (kualitas air kolam)
rendah, hal ini dapat menyebabkan
daya tahan tubuh ikan menurun.
Penyakit ikan ini dapat terjadi akibat
interaksi antar ikan itu sendiri,
penyakit dan lingkungan yang buruk.
Lingkungan yang uruk sangat
berpengaruh terhadap kondisi
kesehatan ikan. Dengan lingkungan
yang buruk maka daya tahan tubuh
ikan menurun sehingga penyakit
akan mudah menyerang ikan.
Setelah ketiga hal tersebut di
jelaskan di atas di lakukan dengan
baik, maka dalam memelihara ikan
mas akan memperoleh produksi ikan
mas yang cukup tinggi dan efisien.
Lama pemeliharaan ikan mas sangat
tergantung kepada ukuran ikan yang
digunakan, padat penebaran dan
luas kolam yang digunakan serta
sistem pemeliharaan yang digunakan.
Untuk lebih jelasnya dapat dilihat
pada Tabel 4.8.
154
Tabel 4.8. Lama pemeliharaan ikan mas berdasarkan sistem pemeliharaan.
No. Sistem Pembesaran Ukuran
Benih
Padat
Penebaran
Lama
Pemeliharaan
1. Pembesaran Tradisional
(ekstensif)
50-80
gram/ekor
1-2 kg/m2 6 bulan
2. Pembesaran Semi Intensif
di Kolam/ sawah
50-80
gram/ekor
3-5 kg/m2 5 bulan
3. Pembesaran Ikan Intensif
di Jaring Terapung
50-100
gram/ekor
5-10 kg/m2 4 bulan
4.5.2. Pembesaran ikan nila
Hal-hal yang harus diperhatikan
dalam melakukan pembesaran/
pemeliharaan ikan nila sampai
mencapai ukuran konsumsi adalah :
4. Pakan
Pakan merupakan sumber energi
bagi ikan. Tanpa makanan ikan
tidak akan tumbuh dan
berkembang biak. Pakan yang
dapat diberikan untuk ikan nila
adalah pakan alami, pakan buatan
dan pakan tambahan.
Pakan alami adalah makanan
hidup bagi larva dan benih ikan
yang diperoleh dari
perairan/kolam atau
membudidayakannya secara
terpisah. Ikan nila merupakan
ikan pemakan plankton yang
tumbuh disekitarnya. Persiapan
pakan alami di kolam
pemeliharaan dilakukan dengan
pemupukan awal 3-5 hari sebelum
penebaran benih dan pemupukan
susulan setelah pemeliharaan
berjalan agar ketersediaan pakan
alami di kolam tersebut tetap ada.
Pakan tambahan adalah pakan
yang diberikan dalam bentuk apa
adanya kepada ikan seperti daundaunan,
limbah rumah tangga,
keong dan lain-lain.
Sedangkan pakan buatan adalah
pakan yang dibuat dengan
susunan bahan tertentu dengan
gizi sesuai keperluan. Pakan
buatan dapat berbentuk pellet,
larutan (emulsi dan suspensi),
lembaran (flake atau waver) dan
remahan.
Ikan nila yang dipelihara secara
intensif dan semi intensif
memerlukan pakan buatan.
Bentuk pakan buatan yang biasa
diberikan adalah pellet. Garis
tengah pellet berkisar antara 2-4
mm.
5. Pengelolaan kualitas air
Pengelolaan kualitas adalah cara
pengendalian kondisi air di dalam
kolam budidaya sedemikian rupa
sehingga memenuhi persyaratan
hidup bagi ikan yang akan
dipelihara.
Dalam budidaya ikan nila di kolam
agar ikan dapat tumbuh dan
155
berkembang maka kondisi air kolam
budidaya harus sesuai dengan
kebutuhan ikan nila. Variabel
kualitas air yang sangat berpengaruh
terhadap ikan nila antara lain adalah:
Suhu air.
Suhu air merupakan faktor
penting yang harus diperhatikan
karena dapat mempengaruhi laju
metabolisme dalam tubuh ikan.
Pada suhu air yang tinggi maka
laju metabolisme akan meningkat,
sedangkan pada suhu yang
rendah maka laju metabolisme
akan menurun. Dengan suhu
yang optimal maka laju
metabolisme akan optimal.
Pertumbuhan ikan nila sangat
dipengaruhi oleh suhu air dalam
usaha pembesaran atau
pembenihan. Suhu air sangat
berpengaruh terhadap aktifitas
saluran pencernaan benih ikan
nila. Makanan alami yang berupa
detritus dan fauna dasar selesai
dicerna dalam waktu 1,68 jam
pada suhu 27 – 28oC dan 1,31
jam pada suhu 32-33 oC. Pada
suhu 27 – 28oC pakan
zooplankton dapat dicernakan
dalam waktu 2,2 jam. Ikan dapat
mencernakan makanannya
selama 2,5 – 3 jam pada suhu
30oC. Berdasarkan hasil
penelitian tersebut maka suhu
optimum untuk pertumbuhan ikan
nila adalah 25 – 30oC.
Volume air
Pertumbuhan ikan nila yang
dipelihara dalam air mengalir lebih
cepat daripada yang dipelihara
dalam air tergenang. Dalam
kondisi air mengalir, ikan nila
dengan bobot awal 9,1 gram
diberi pakan pellet 25% protein
dan feeding ratenya 3,5% dalam
waktu seminggu akan mencapai
bobot 34,2 gram. Selain itu
volume air sangat menentukan
padat penebaran ikan nila yang
optimal. Padat penebaran ikan
nila di kolam adalah 30 ekor/m2.
Kadar oksigen terlarut
Untuk dapat hidup manusia
membutuhkan oksigen begitu juga
dengan ikan. Oksigen yang
dibutuhkan ikan yang hidup
didalam air disebut dengan
oksigen terlarut. Ikan nila
merupakan ikan yang tahan
terhadap kekurangan oksigen
terlarut dalam air, namun
pertumbuhan ikan ini akan optimal
jika kandungan oksigen terlarut
lebih dari 3 ppm. Kandungan
oksigen terlarut kurang dari 3 ppm
dapat menyebabkan ikan tidak
dapat tumbuh dan akhirnya mati.
Kadar garam (salinitas)
Ikan nila mempunyai toleransi
salinitas yang cukup luas, tetapi
pertumbuhan ikan nila pada kadar
garam lebih dari 30% akan
terhambat. Pada kadar garam
yang tinggi ikan membutuhkan
energi yang minim untuk
osmoregulasi sehingga energi
yang digunakan untuk
pertumbuhan berkurang.
Cemaran
Ikan nila yang dipelihara pada
musim kemarau banyak yang mati.
Hal ini diakibatkan oleh pengaruh
secara tidak langsung dari sinar
matahari yang dapat
meningkatkan keasaman (pH)
perairan.
156
Gejala mabuk pada ikan nila
dapat diakibatkan dari akitifitas
berenang ikan yang cepat
dipermukaan dengan gerakan
tidak beraturan dan tutup insang
bergerak aktif. Selain itu air
budidaya yang tercemar minyak
akan menyebabkan kerusakan
sel-sel saluran pencernaan. Oleh
karena itu agar ikan nila tunbuh
dengan cepat air budidayanya
tidak boleh tercemar baik oleh
limbah industri maupun rumah
tangga.
Dalam air budidaya ikan yang baik
sepintas dapat dilihat dari keruh
atau tidaknya air kolam. Untuk
mengetahui tingkat kekeruhan air
kolam dapat dilihat dari tingkat
kecerahan air kolam dengan
menggunakan alat pengukur yang
disebut secchi disk atau keeping
secchi.
Kecerahan yang baik untuk
kehidupan ikan nila di kolam
berkisar antara 25-40 cm. Artinya
jarak batas pengelihatan terhadap
keeping secchi adalah berkisar
antara 25-40 cm dari atas
permukaan perairan. Kecerahan
kurang dari 25 cm tidak
menguntungkan karena
mengakibatkan rendahnya
kandungan oksigen terlarut di
kolam. Pada kolam budidaya
yang keruh maka jarak batas
penglihatan terhadap keeping
secchi rendah yang berarti kolam
tercemar bahan organik atau
Lumpur.
6. Pengelolaan kesehatan ikan
Dalam memelihara ikan nila di
kolam selalu ada saja kendalanya
diantaranya adalah terhadap
hama dan penyakit dalam kolam
pemeliharaan. Hama yang biasa
terdapat dikolam pemeliharaan
adalah cladocera sebagai
pesaing/kompetitor, copepoda
sebagai predator benih, larva,
kumbang air, serangga air dan
lain-lain.
Hama tersebut kadang-kadang
sulit untuk dihilangkan.
Pengendalian hama yang paling
mudah melakukan penyaringan
terhadap air yang masuk kedalam
kolam pemeliharaan.
Penyakit ikan dikolam
pemeliharaan akan muncul jika
kondisi perairan kolam (kualitas
air kolam) rendah, hal ini dapat
menyebabkan daya tahan tubuh
ikan menurun. Penyakit ikan ini
dapat terjadi akibat interaksi antar
ikan itu sendiri, penyakit dan
lingkungan yang buruk.
Lingkungan yang buruk sangat
berpengaruh terhadap kondisi
kesehatan ikan. Dengan
lingkungan yang buruk maka daya
tahan tubuh ikan menurun
sehingga penyakit akan mudah
menyerang ikan. Jenis-jenis
penyakit ikan antara lain adalah
penyakit pendarahan, penyakit
jamur, penyakit bakteri.
Setelah ketiga hal utama yang
telah di jelaskan diatas dilakukan
dengan baik maka dalam
memelihara ikan nila akan
diperoleh produksi ikan nila yang
cukup tinggi dan efisien. Lama
pemeliharaan ikan nila sangat
bergantung kepada ukuran ikan
yang akan dipanen. Sebagai
bahan pertimbangan ada 4 ukuran
157
ikan nila yang diproduksi
dipasaran yaitu :
Ukuran 100 gram, umurnya
kurang lebih 3-4 bulan
Ukuran 250 gram, umurnya
kurang lebih 4-6 bulan.
Ukuran 500 gram, umurnya
kurang lebih 6–8 bulan.
Ukuran diatas 800 gram
umurnya kurang lebih 9-12
bulan.
Ikan nila mempunyai ciri khas
tersendiri dimana pertumbuhan ikan
nila yang dipelihara secara tunggal
kelamin yaitu ikan jantan lebih cepat
tumbuh dibandingkan ikan nila yang
dipelihara secara campuran (jantan
dan betina). Oleh karena itu banyak
petani ikan yang lebih suka
memelihara ikan nila jantan. Sistem
pemeliharaan ikan nila berdasarkan
jenis kelamin ini disebut monokultur
sedangkan untuk pemeliharaan ikan
nila dengan jenis ikan lainnya disebut
dengan polikultur.
Pada pemeliharaan ikan untuk
mencapai ukuran konsumsi dapat
digunakan beberapa macam kolam
pemeliharaan :
1. Kolam empat persegi panjang
dengan luas 200-500m2,
kedalaman air 1-1,25m, dasar
kolam dapat tanah atau beton.
2. Kolam jaring terapung yang
berbentuk bujur sangkar dengan
ukuran minimal 1-4 m2 dan
maksimal 9 – 49 m2 , yang
terbuat dari bahan jaring dengan
kedalaman air 1,5 – 2 m.
3. Hampang atau keramba yang
dapat dilakukan diperairan dasar
yang dangkal dengan kedalaman
air 1-2m.
4. Mina padi yaitu pemeliharaan
ikan nila disawah.
Penebaran benih pada pemeliharaan
ikan nila di kolam berukuran 10 gram
per ekor, sedangkan untuk jenis
terapung biasanya 25 gram per ekor,
intensitas berbudidaya yang dapat
dikelompokkan menjadi 3 yaitu :
1. Pemeliharaan secara ekstensif
Pada pemeliharaan ini kolam
yang digunakan relatif cukup
besar dari 200m2, kepadatan ikan
relatif rendah (1 ekor per m2) dan
pakan yang diberikan hanya
mengandalkan pakan yang
tumbuh dari kolam. Benih yang
ditebarkan biasanya campur
kelamin dan berukuran 10 gram
per ekor.
2. Pemeliharaan semi intensif
Perbedaan utama dalam
pemeliharaan ekstensif adalah
kepadatan benih yang ditebar,
dimana untuk semi intensif padat
penebarannya 5-10 ekor per m2
dan kolam diberi pupuk dan pakan
tambahan kepada ikan nila
berupa dedak atau ampas tahu,
daun sente sebanyak 5-10% dari
bobot ikan setiap hari
3. Pemeliharaan secara intensif
Pemeliharaan ikan nila secara
intensif ini biasanya dilakukan di
jaring terapung atau kolam air
deras.
Padat penebaran ikan nila di jaring
terapung adalah 400-500 ekor per m3
dengan bobot awal benih 15-25 gram
per ekor, sedangkan di kolam air
deras kepadatan tebarnya 10-20
ekor per m2.
Pada pemeliharaan ini sumber
energi bagi ikan untuk tumbuh dan
berkembang adalah pakan buatan
dalam bentuk pellet yang diberikan
158
sebanyak 3-5% sehari dan frekuensi
pemberian pakan 3-5 kali sehari.
Pakan buatan tersebut harus
mengandung protein 20-30%.
4.5.3 Pembesaran ikan bandeng
Ikan bandeng merupakan salah satu
jenis ikan laut yang dapat
dibudidayakan oleh manusia
ditambak. Jenis Ikan ini saat ini juga
sudah dapat dibudidayakan di
keramba jaring apung pada air tawar,
hal ini dikarenakan sifat ikan ini yang
euryhaline (tahan terhadap
perubahan yang besar dari kadar
garam dalam air)
Ikan bandeng dapat dipelihara
ditambak yang mempunyai kadar
garam relatif berfluktuasi. Ikan
bandeng dapat dipijahkan secara
buatan di panti pembenihan/hatchery
dengan cara implementasi atau
hypofisasi. Oleh karena itu benih
ikan bandeng yang disebut nener ini
dapat diperoleh dari alam atau panti
pembenihan/hatchery.
Nener bandeng yang berasal dari
pantai/alam ini merupakan hasil
pemijahan ikan bandeng secara
alami dilaut. Ikan bandeng yang telah
matang kelamin akan memijah
secara alami dan akan menghasilkan
telur sebanyak 5.700.000 butir dalam
tubuhnya. Pelepasan telur ini terjadi
pada malam hari dan akan menetas
dalam waktu 24 jam menjadi nener
yang berukuran 5 mm. Nener ini
akan terbawa oleh arus air
mendekati pantai dan kemudian
akan ditangkap oleh para penyeser.
Ukuran nener yang ditangkap ini
kurang lebih 13 mm.
Nener ikan bandeng yang diperoleh
dari alam ditangkap oleh pencari
nener sangat bergantung kepada
musim, lokasi, cara dan waktu
penangkapan. Pada musim nener
jumlah nener cukup melimpah yang
dapat mengakibatkan menurunnya
harga nener. Selain itu waktu
penangkapan yang tepat yaitu diawal
musim penangkapan mempunyai
daya tahan dan vitalitas yang tinggi
dalam pengangkutan serta
mempunyai harga jual yang lebih
mahal.
Tetapi ketersediaan nener dari alam
ini tidak bersifat kontinue sehingga
untuk mengusahakan pembesaran
ikan bandeng secara intensif
dibutuhkan nener bandeng yang
berasal dari panti
pembenihan/hatchery. Nener dari
alam selain tidak tersedia secara
kontinue juga mempunyai ukuran
yang sangat beragam. Oleh karena
itu nener yang berasal dari panti
pembenihan sangat dibutuhkan
untuk memenuhi kekurangan nener
ditambak-tambak pembesaran.
Nener yang dihasilkan dari panti
pembenihan mempunyai keunggulan.
Karena kemurnian nener dapat
dijamin 100% dan umurnya diketahui
secara tepat.
Nener yang berasal dari alam atau
hatchery, yang akan digunakan
untuk usaha pembesaran ikan
bandeng ditambak, haruslah nener
yang sehat. Nener yang sehat dapat
dilihat dari ciri-ciri umurnya yaitu :
1. Tidak terdapat luka atau lecet
2. Tidak cacat pada organ tubuh
3. Warnanya tidak kusam
159
4. Gerakannya aktif
Dengan menggunakan nener yang
sehat maka akan diperoleh target
produksi yang sesuai dengan
rencana. Selain nener yang sehat
dalam pemilihan benih ikan bandeng
(nener) juga harus diperhatikan
ukuran benih. Ukuran benih yang
akan ditebar ke dalam tambak
pembesaran sebaiknya seragam. Hal
ini akan menguntungkan dalam
pemeliharaan, karena ikan tidak
akan berebut makanan sehingga
pertumbuhan ikan seragam,
kekuatan makanpun seragam.
Ukuran nener yang ditebar ke
tambak pembesaran bisa dimulai
dari ukuran nener sampai
gelondongan yang dapat
membedakannya adalah cara
pemeliharaan ditambak
pembesarannya.
Jika yang ditebar adalah nener kecil
maka waktu yang dibutuhkan untuk
mencapai ukuran konsumsi yaitu 4 –
6 ekor/kg bisa mencapai lebih dari 6
bulan sedangkan jika yang ditebar
adalah gelondongan maka waktu
yang dibutuhkan untuk mencapai
ukuran konsumsi berkisar antara 4 –
6 bulan.
Dalam memilih nener yang berasal
dari alam maupun hatchery dapat
dilakukan dengan menghitung jumlah
ruas tulang belakang. Nener yang
berkualitas prima memiliki jumlah
ruas tulang belakang antara 44 – 45.
Jumlah ruas tulang belakang dapat
dihitung menggunakan mikroskop
sederhana pada pembesaran 10 kali
atau nener ditempatkan pada
sumber cahaya seperti lampu senter.
Nener bandeng yang telah dipilih
selanjutnya akan ditebar kedalam
tambak pembesaran. Sebelum
nener tersebut ditebar harus dihitung
terlebih dahulu padat penebaran
nener ditambak pembesaran dan
dilakukan aklimatisasi.
Nener ikan bandeng yang akan
ditebar kedalam tambak pembesaran
sebaiknya ditentukan terlebih dahulu
tentang jumlah nener yang akan
ditebar. Nener bandeng yang akan
ditebarkan dan dipelihara ditambak
pembesaran harus diketahui
jumahnya agar dapat diketahui
jumah ikan bandeng yang akan
dipanen. Istilah dalam perikan
disebut dengan padat penebaran.
Padat penebaran adalah
perbandingan jumlah ikan-ikan/nener
yang akan ditebar dengan luas
tambak pembesaran. Dengan
mengetahui padat penebaran pada
awal pemeliharaan akan diperoleh
manfaat antara lain adalah :
Dapat menentukan jumlah pakan
yang akan diberikan
Dapat mengoptimalkan tambak
pembesaran sesuai dengan
daya dukung tambak
pembesaran tersebut.
Dapat mengurangi timbulnya
penyakit ditambak pembesaran
karena kepadatan tinggi.
Dapat menetukan target produksi
pada akhir pemeliharaan.
Masa pemeliharaan nener bandeng
ditambak pembesaran sangat
bergantung kepada ukuran nener
yang ditebar pada awal
pemeliharaan. Ukuran nener yang
160
ditebar kedalam tambak pembesaran
bervariasi antara 1–15 cm. Padat
penebaran nener ditambak
pembesaran juga ditentukan oleh
ukuran nener, lama pemeliharaan,
mutu nener dan daya dukung
kesuburan tambak pembesaran.
Padat penebaran nener ditambak
pembesaran berkisar antara 5 – 6
ekor/m2 untuk ukuran nener bandeng
3 – 5 cm. Sedangkan untuk nener
yang berukuran 1 – 3 cm, padat
penebarannya berkisar antara 2 – 3
ekor/m2. Untuk benih bandeng yang
berukuran 12 – 15 cm yang disebut
gelondongan ditebar ke tambak
pembesaran dengan padat
penebaran 1.500 ekor/ha. Nener
bandeng yang akan ditebar kedalam
tambak pembesaran. Setelah
menghitung jumlah yang akan
ditebar lalu dipersiapkan nener
tersebut. Nener bandeng untuk
sementara diaklimatisasi selama
satu hari dalam bak plastik.
Aklimatisasi ini bertujuan untuk
menyesuaikan kondisi lingkungan
dimana nener itu berada dengan
kondisi lingkungan tambak
pembesaran. Penyesuaian suhu,
salinitas dan pH dapat dilakukan juga
begitu nener bandeng yang dikemas
dalam kantong plastik dating.
Caranya kantong plastik yang terisi
nener diisi penuh dengan air yang
ada dalam tambak pembesaran,
maka secara perlahan-lahan nener
bandeng yang ada didalam kantong
platik akan keluar kedalam tambak
pembesaran jika sudah terjadi
penyesuaian.
Penebaran nener ditambak
pembesaran sebaiknya dilakukan,
pada pagi atau sore hari pada saat
matahari tenggelam. Hal ini untuk
menghindari kematian nener akibat
stress karena tingginya suhu
dilingkungan. Lakukan penebaran
nener dengan hati-hati !
Langkah selanjutnya setelah
dilakukan penebaran nener bandeng
adalah melakukan proses
pemeliharaan nener sampai
mencapai ukuran konsumsi. Proses
yang dilakukan selama pemeliharaan
sama persis dalam melakukan
budidaya ikan lainnya meliputi
pemberian pakan, pengelolaan
kualitas air, pengendalian hama dan
penyakit, pemantauan pertumbuhan.
Perlakuan selama pemeliharaan
sangat ditentukan oleh sistem
budidaya yang diterapkan.
4.6. Pemanenan
Pemanenan dilakukan pada setiap
akhir siklus budidaya. Dalam
budidaya ikan ada dua siklus
produksi yaitu pada usaha
pembenihan ikan maka yang akan
dipanen adalah benih ikan.
Sedangkan pada usaha pembesaran
ikan yang akan dipanen adalah ikan
ukuran konsumsi. Prisnsip
pemanenan benih ikan dan ikan
ukuran konsumsi pada umumnya
adalah sama. Dalam subbab ini akan
diuraikan proses pemanenan ikan
pada stadia benih. Pemanenan benih
ikan harus dilakukan dengan hati-hati.
Selain itu waktu dan cuaca pada saat
panen perlu diperhatikan. Banyak
petani pembenih yang gagal karena
kurang hati-hati pada saat panen.
161
4.6.1. Pemanenan benih ikan nila
Kegiatan pemanenan benih meliputi
persiapan penampungan benih,
pengeringan kolam, penangkapan
benih dan pengangkutan.
Pemanenan benih ikan sebaiknya
dilakukan pagi atau sore hari.
1. Penampungan benih
Sebelum pengeringan kolam,
terlebih dahulu dilakukan
persiapan penampung benih.
Penampung benih dapat berupa
hapa atau bak. Air pada
penampungan harus terus
menerus mengalir, hal ini
bertujuan untuk mensuplai
oksigen ke dalam air wadah
penampungan. Hapa yang akan
digunakan untuk menampung
benih di pasang didepan pipa
pemasukkan air. Sebaiknya
hapa di pasang di kolam yang
paling dekat dengan kolam yang
akan dipanen. Hal ini bertujuan
untuk memudahkan
pengangkutan benih yang telah
di tangkap. Pemasangan hapa
dilakukan dengan mengikat ke
empat sudutnya ke patok
bambu/kayu.
2. Pengeringan Kolam
Pengeringan kolam sebaiknya
dilakukan pada pagi hari agar
penangkapan benih dapat
dilakukan sebelum suhu air naik.
Pengeringan kolam harus
dilakukan dengan hati-hati agar
benih ikan dapat berkumpul pada
kamalir sehingga memudahkan
pemanenan. Pengeringan kolam
diawali dengan menutup pintu
pemasukkan air. Selanjutnya
pada pintu pengeluaran air di
pasang saringan untuk
mencegah benih ikan keluar
kolam. Setelah di pasang
saringan, pintu pengeluaran air di
buka sedikit demi sedikit agar
benih ikan tidak terbawa arus air.
3. Penangkapan benih
Setelah air kolam kering, benih
ikan berkumpul di kamalir.
Penangkapan benih dilakukan
menggunakan seser atau ancho.
Penangkapan benih di mulai dari
hilir atau di depan pintu
pengeluaran air. Benih ikan di
depan pintu pengeluaran harus
habis di tangkap. Jika benih ikan
di hilir telah habis dilanjutkan ke
lebih hulu sampai habis di depan
pintu pemasukkan air (hulu).
Penangkapan benih ikan yang di
mulai dari hilir bertujuan agar
benih ikan tidak stres akibat
kualitas air. Jika penangkapan
benih di mulai dari hulu (depan
pintu pemasukkan) maka benih
ikan yang terdapat di hilir akan
stres atau mabuk karena air dari
hulu sudah kotor akibat lumpur.
Pada saat panen sering terlihat
ikan mengalami stres atau mabuk.
Hal ini diakibatkan kualitas air
kurang baik khusunya suhu,
oksigen dan lumpur. Untuk
mengatasi hal tersebut dapat
dilakukan dengan mengalirkan air
dari pipa pemasukkan. Jika
masih terlihat benih ikan stres
atau mabuk pemanenan
dihentikan dan di tunda sampai
besok atau hari lainnya.
Benih yang telah ditangkap di
tampung dalam wadah
pengangkutan berupa ember
162
atau alat lainnya. Benih pada
wadah pengangkutan segera
dikumpulkan di hapa tempat
penampungan benih. Benih yang
cacat, luka dan mati lebih banyak
akibat penanganan. Penanganan
tersebut biasa terjadi pada saat
penangkapan dan pengangkutan
benih ke tempat penampungan
benih.
4.6.2. Pemanenan benih ikan
patin
Tahap akhir dari pekerjaan
memelihara benih ikan patin adalah
memanen. Hasil dari memanen
benih ikan tersebut merupakan
evaluasi terhadap pekerjaan
memelihara benih ikan patin tersebut.
Jika hasilnya benih ikan banyak
maka secara teknik produksi
pekerjaan memelihara benih ikan
tersebut dapat dikatakan berhasil.
Tetapi kebalikannya jika hasilnya
benih ikan sedikit maka pekerjaan
memelihara benih ikan patin tersebut
secara teknik produksi dapat
dikatakan gagal.
Kapan benih ikan patin dipanen?
Menentukan waktu/saat panen benih
ikan patin biasanya tergantung dari
lamanya memelihara benih ikan
tersebut atau ukuran benih ikan
tersebut. Tetapi adakalanya jika
kondisi ikan serta lingkungan ikan
baik, ukuran benih ikan akan tercapai
pada periode waktu pemeliharaan
ikan tersebut seperti biasanya.
Ukuran benih ikan dipanen adalah 2
inci (5 cm) setelah dipelihara selam 3
minggu dimulai dari ukuran ikan 1
inci. Pemenenan benih ikan patin
dilakukan seperti memanen benih
ikan lainnya. Setelah benih ikan
tersebut dipanen, benih ikan
ditampung dalam tempat
penampungan baik berupa bak
maupun fiberglass. Jangan lupa
teknik aklimatisasi tetap dilakukan
pada saat memasukkan benih ikan
tersebut ke dalam tempat
penampungan. Sebelum benih ikan
patin diangkut ke tempat lain yang
relatif jauh, benih ikan tersebut
dipuasakan terlebih dahulu selama 1
hari. Pemuasaan tersebut
dimaksudkan agar benih ikan
mengeluarkan kotoran dari dalam
perutnya, agar nanti pada saat benih
ikan diangkut sudah tidak
mengelurkan kotoran lagi. Jika benih
ikan masih mengeluarkan kotoran
pada saat pengangkutan maka
kondisi kualitas air media
pengangkutan benih ikan akan
dengan segera menurun sehingga
tidak mustahil benih ikan akan
segera mati.
163
Gambar 4.26. Pengemasan benih
Pengemasan benih ikan hasil pembesaran ini sebaiknya harus memperhatikan
faktor-faktor sebagai berikut :
Jarak dan waktu tempuh
Jumlah benih yang diangkut dalam wadah
Kondisi kuailtas air selama pengangkutan yang terpenting yaitu suhu air,
salinitas air, pH dan oksigen didalam wadah pengangkutan. Suhu air yang
baik untuk pengemasan ikan hidup adalah 15 – 200C. Oleh karena itu
sebaiknya pengangkutan dilakukan pada pagi atau malam hari, pH air yang
baik adalah 7 – 8, jumlah oksigen didalam pengangkutan harus 3 kali
jumlah air.
Pengemasan benih ikan dapat dilakukan dalam 2 cara yaitu :
1. Sistem Tertutup
Sistem tertutup yaitu sistem pengemasan benih ikan dalam wadah tertutup
seperti kantong plastik.
Cara yang dilakukan untuk pengangkutan benih ikan dengan kantong
plastik adalah :
Kantong plastik yang digunakan harus cukup air agar mata ikan
tenggelam
Rasio oksigen = air sekitar 3:1
Plastik harus terikat dengan baik
Masukkan plastik dalam Styrofoam dan tambahkan es batu yang
terbungkus plastik lalu diselipkan diantara plastik dalam Styrofoam.
164
2. Sistem terbuka
Pengangkutan benih ikan sistem terbuka biasanya dilakukan untuk
mengangkut benih ke lokasi yang dekat. Benih ikan tersebut dimasukkan
kedalam wadah dan diberi aerasi selama pengangkutan. Dan suhu air
diusahakan berkisar antara 15 – 200C .
4.6.3. Pemanenan ikan mas
Panen merupakan tahap akhir dari suatu proses produksi dalam budidaya ikan.
Tidak sedikit petani atau pengusaha ikan yang gagal dalam usaha budidaya
ikan dikarenakan pada waktu panen, penanganan dan alat kelengkapannya
kurang tepat. Penangganan ikan pada waktu panen bertujuan untuk :
1. Mengurangi atau menghindari kehilangan, kematian dan kerusakan ikan.
2. Mempertahankan kesegaran ikan setelah dipanen sampai tiba di
konsumen.
Hasil panen ikan yang akan dijual dan dikonsumsi oleh masyarakat dijual
dalam dua cara :
1. Ikan dalam keadaan hidup sampai ketangan konsumen.
2. Ikan dalam keadaan mati tetapi masih dalam kondisi segar.
Penentuan waktu panen biasanya diperoleh setelah dilakukan pengukuran
berat badan ikan yang dipelihara. Berat badan ikan yang akan dijual sangat
tergantung pada selera konsumen. Oleh karena itu sebelum melakukan panen
harus dilakukan pengamatan terhadap permintaan pasar tersebut.
Dengan mengetahui data mengenai permintaan konsumen tentang ukuran ikan
dan keadaan ikan (mati segar atau masih hidup) maka akan dapat dilakukan
waktu pemanenan dan penentuan cara panen yang sesuai.
Waktu panen yang tepat adalah pada pagi hari atau sore hari. Hal ini
dilakukan karena pada waktu pagi atau sore hari suhu air di kolam rendah
sehingga ikan tidak stress pada saat dilakukan pemanenan.
Cara panen pada prinsipnya dapat dilakukan dengan dua cara :
1. Panen selektif
Panen selektif biasa dilakukan jika pada waktu tebar ukuran ikan tidak
seragam atau keinginan petani untuk menjual ikan dengan ukuran yang
berbeda-beda. Alat yang digunakan biasanya lambit dan hapa/waring.
2. Panen total
Panen total dilakukan secara sekaligus dengan cara menguras air kolam
dan di depan pintu pengeluaran telah dipasang waring atau hapa untuk
memudahkan penangkapan ikan pada saat panen.
165
Untuk menghindari kematian ikan mas pada saat pemanenan, hal yang harus
dilakukan jangan terjadi luka atau banyak sisik lepas karena penggunaan alat
saat panen adalah:
1. Jagalah kondisi air agar tidak terlalu keruh, karena kotoran seperti lumpur
atau larutan suspensi lainnya dapat menutupi labirin pada insang lele
sehingga ikan tidak dapat bernafas.
2. Pemanenan tidak dilakukan pada saat hujan.
3. Waktu pemanenan tidak melebihi dari jam 10.00 atau bila cuaca panas
sebaiknya pada sore hari (lebih dari jam 16.00).
Gunakan alat-alat pemanenan yang terbuat dari bahan halus seperti : seser,
hapa agar tidak melukai ikan.
166
LAMPIRAN A
A1
DAFTAR PUSTAKA
Abel. 1989. Water Pollutin Biology. Dept of Biology. Sunderland Polytechnic.
Halsted Press. New York.
Affandi,R., DS Sjafei, MF Rahardjo dan Sulistiono. 1992. Fisiologi Ikan. Pusat
Antar universitas Ilmu Hayati. IPB. Bogor.
Agrara T. 1976. Endokrinologi Umum. Airlangga University Press.
Yogyakarta.
Alimuddin. 1994. Pengaruh waktu awal kejutan panas terhadap
keberhasilan Triploidisasi Ikan Lele Lokal (Clarias batrachus L).
Skripsi. Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Ath_Thar.M.H.F. 2007. Efektivitas promoter -actin ikan medaka Oryzias
latipes dengan penanda gen hrGFP (humanized Renilla reniformis
Green Fluorescent Protein) pada ikan lele Clarias sp keturunan F0.
Skripsi. Departemen Budidaya Perairan. Fakultas Perikanan dan Ilmu
Kelautan. Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Andarwulan, dan S.Koswara. 1992. Kimia Vitamin. Rajawali Press. Jakarta.
Anonymous. 1985. Budidaya Rotifera (Brachionus plicatilis OF Muller) Seri
Ke Tiga. Proyek Penelitian dan Pengembangan Budidaya Laut. Serang.
Antik, E dan Hastuti,W. 1986. Kultur Plankton. Direktorat Jenderal Perikanan
bekerjasama dengan International Development Research Centre.
Jakarta.
Andrew JW, Sick LV. 1972. Studies on the nutritional requirement of
dietary penaeid shrimp. Proceedings of the World Mariculture Society
3:403-414.
Alava VR, Lim C. 1983. The quantitative dietary protein requirement of
Penaeus monodon juveniles in controlled environment.
Aquaculture 30:53-61.
LAMPIRAN A
A2
Avers CG. 1986. molecular cell biology. Rutgers University. The Benjamin
Cummings Publising Co. Inc. 832 p.
Baustista-Teruel MN, Millamena OM. 1999. Diet development and evaluation
for juvenile abalone, Haliotis asinine: protein to energi levels.
Aquaculture 178:117-126.
Bonyaratpalin.M. 1989. Methodologies for vitamin requirement studies.
Fish Nutrition research in Asia. Edited by S.S de Silva. Proceeding of
Third Asian Fish Nutrition Network Meeting International Development.
Reseach Center of Canada. 58 – 67
Boyd. 1982. Water Quality Management for Pond Fish Culture. Auburn
University. Alabama. USA
Borgstrom G. 1962. Fish as Food Volume III. Nutrition, Sanitation and
Utilization. Academic Press, New York and London.
Bongers ABJ, EPC in’t Veld, K Abo-Hashema, IM Bremmer, EH Eding,
J.Komen, CJJ Richter. 1994. Androgenesis in common carp
(Cyprinus carpio) using UV irradiation in synthetic ovarian fluid
and heat shocks. Aquaculture, 122 : 119 – 132.
Catacuta,M.R and Coloso. 1997. Growth of juvenile Asian Seabass, Lates
calcarifer fed varyng carbohydrate and lipid levels. Aquculture, 149:
137-144.
Calduch-Giner. J.A, Duval H, Chesnel F, Boeuf G, Perez-Sanches J and
Boujard D. 2000. Fish Growth Hormone Receptor : Molecular
Characterization of Two Membrane-Anchored Forms. Journal of the
Endocrine Society : 3269 – 3273.
Campbell.N.A; Reece. J.N; Mitchell. L.G. 2002. Biologi. Edisi Kelima. Erlangga.
Jakarta.
Carman O. 1990. Ploidy manipulation in some warm water fish. Master’s
Thesis. Departement of Aquatic Biosciences. Tokyo University of
Fisheries. Japan.
Carman O. 1992. Chromosome set manipulation in some warm water fish.
A Dissertation. Departement of Aquatic Biosciences. Tokyo University
of Fisheries. Japan.
Chumadi dkk. 1992. Pedoman Teknis Budidaya Pakan Alami Ikan dan
Udang. Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian. Pusat
penelitian dan Pengembangan Perikanan. Jakarta.
LAMPIRAN A
A3
Cole, G.A. 1988. Textbook of Limnology. Third Edition. Waveland Press, Inc.
Illionis, USA.
Cowey,C.B and Walton,M.J. 1989. Intermedier metabolism, p : 259-329. In.
J.E Halver (Ed.), Fish Nutrition,2nd. Academic Press. New York.
Chris Andrews, Adrian Exell and Neville Carrington., 1988. The Manual of
Fish Health. New Jersey: Tetra Press,
Davis, D.A and Delhert MG III. 1991. Dietary Mineral Requirment of Fish and
Shrimp. Pages : 49 – 65. In : Proceedings of The Aquaculture Feed
Processing and Nutrition Workshop. Akimaya, D.M and Ronni K.H.T.
Singapore.
Davis, C.C. 1955. The marine and freshwater plankton. Michigan state
University Press. Chicago.
De Silva,S and T.A. Anderson. 1995. Fish Nutrition in Aquaculture.
Chapman & Hall, London.
Dieter Untergasser Translation by Howard H. Hirschhorn, 1989. Handbook of
Fish Diseases. T.F.H. Publications, Inc
Devlin,R.H, C.A. Biagi, T.Y. Yaseki. 2004. Growth, viability and genetic
characteristic of GH transgenic coho salmon strains. Aquaculture
236 : 607 – 632.
Dunham RA. 2003. Aquaculture and Fisheries Biotechnology Genetic
Approaches. CABI Publishing. Wallingford, Oxfordshire Ox 10.8 DE.
UK.
Effendi, H. 2000. Telaahan Kualitas Air. Bagi Pengelolaan Sumberdaya dan
Lingkungan Perairan. Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Effendi, I. 2004. Pengantar Akuakultur. Penebar Swadaya. Jakarta.
Effendi. M.I. 1997. Biologi Perikanan. Yayasan Pustaka Nusatama.
Yogyakarta.
Fujaya. Y. 2004. Fisiologi Ikan Dasar Pengembangan Teknik Perikanan.
Rineka Cipta. Jakarta.
Gong Wu, Yonghua Sun & Zuayan Zhu. 2003. Growth hormone gene
transfer in common carp. Aquatic Living Resources 16 : 416-420.
LAMPIRAN A
A4
Glick. B.R and Pasternak.J.J. 2003. Molecular Biotechnology : Principles
and Applications of Recombinant DNA (Third Edition). ASM Press.
Washington, D.C.
Halver, J.E. 1988. Fish Nutrition. Academic Press. San Diego.
Hamre,K; B.Hjeltne; H.Kryi; S. Sandberg; M.Lorentzen; and O.Lie. 1994.
Decesed Concentration of Haemoglobin, Accumulation of Lipid
Oxidation Product”s and unchanged Skeletal Muscel in Atlantik
Salmon. Salmo salar Fed Low Dietary Vitamine E. Physiology and
Biochemistry. 12 (5) : 421 – 429.
Harper. 1990. Biokimia. EGC (Penerbit Buku Kedokteran). Jakarta.
Hepher B. 1988. Nutrition of Pond Fish. Cambridge University Press.
Cambridge.
Halver JE. 1989. Fish Nutritiion 2nd edition. Academic Press Inc.
Jean L Marx. 1991. Revolusi Bioteknologi, diterjemahkan oleh Wildan Yatim .
Yayasan Obor Indonesia. Jakarta. 513 hal.
Jusuf.M. 2001. Genetika I. Struktur dan Ekspresi Gen. Sagung Seto. Jakarta.
Kobayashi S, Alimuddin, Tetsuro Morita, Misako Miwa, Jun Lu, Masato Endo,
Toshio Takeuci dan Goro Yoshikazi. 2006. Transgenic nile Tilapia
(Oreochromis niloticus) over-expressing growth hormone show
reduced ammonia excretion. Departement of Marine Biosciences
Tokyo University of Marine Science and Technology. Tokyo. Japan.
Koolman J and Rohm KH. 2001. Atlas berwarna dan teks biokimia. Wanadi
SI penerjemah. Sadikin M , editor. Jakarta : Hipokrates 2000.
Kebijakan DKP: Perikanan Budidaya 2003 Pedoman Teknis
Penanggulangan Penyakit Ikan Budidaya Laut. Departemen
Kelautan dan Perikanan Republik Indonesia
Kurniastuty, dkk., 2004. Hama dan Penyakit Ikan. Balai budidaya Laut
Lampung. Lampung.
Kuksis,A dan S. Mookerjea. 1991. Kolin. Vitamin. In Robert E. Olson (Eds),
Jilid II. Gramedia Pustaka Utama. Jakarta.
Lewin, R.A. 1976. The Genetic of Algae.Blackwell scientific Publications Oxford.
London. Edinburg.
LAMPIRAN A
A5
Linder,M.C. 1992. Biokimia Nutrisi dan Metabolisme (Alih bahasa : A.
Parakkasi dan A.Y. Amwila). UI Press. Jakarta.
Linder, M.C. 1992. Nutrisi dan Metabolisme Mikromineral. Hal : 261-344.
Dalam : Biokimia Nutrisi dan Metabolisme dengan pemakaian secara
klinis. Penerbit Universitas Indonesia. UI Press. Jakarta.
Lovel T. 1988. Nutrition and feeding of fish. An AVI Book. Published by Van
Nostrad Reinhold. New York.
Machin,L.J. 1990. Handbook of Vitamin. Second Edition Rivised and
Expanded.
Mc Vey,J.P and J.R.Moore. 1983. CRC Handbook of Marine Culture. Vol I.
Crustacean Aquaculture. CRC Press. Inc.Boca. Raton . Florida.
Millamena,M.O, R.m. Coloso and F.P. Pascual. 2002. Nutrition in Tropical
Aquaculture. Essential of fish nutrition, feeds and feeding of
tropical aquatic species. Aquaculture Departemen. Southeast Asian
Fisheries Development Center. Tingbauan. Iloilo, Philipines.
Muchtadi,D., Nurheni S.P, dan Made A. 1993. Metabolisme zat gizi : sumber,
fungsi dan kebutuhan bagi tubuh manusia. J.2. Pustaka Sinar Harapan.
Jakarta
Murray,R.K; D.K.Granner; P.A. Mayes; and V.W. Rodwell. 1999. Biokimia
Harper. Edisi 24. Penerbit Buku kedokteran EGC. Jakarta.
Mujiman, A. 1987. Makanan Ikan. Penebar Swadaya. Jakarta.
Matty. AS. 1985. Fish Endocrinology. Croom Helm London & Sydney Timber
Press. Portland. Oregon. 267p.
Morales et all. 2001. Tilapia chromosomal growth hormone gene
expression accelerates growth in transgenic zebra fish (Danio
rerio). Marine Biotechnology. Vol 4. No.2.
Muladno. 2002. Seputar Teknologi Rekayasa Genetika. Pustaka Wirausaha
Muda. Bogor. 123 hal.
NRC. 1993. Nutrient Requirement of Fish. Water Fishes and Shellfish.
National Academy of Sciencess. Washington DC.
O.A Conroy and R.L Herman 1966. Textbook Of Fish Diseases. Eastern
Fish Disease. Laboratory, Bureau of Sport Fisheries and Wildlife
Leetown, West Virginia.
LAMPIRAN A
A6
Prentis. S. 1990. Bioteknologi, diterjemahkan oleh Wildan Yatim. Yayasan
Obor Indonesia. Jakarta 513 hal.
Promega. 1999. Technical Manual. pGEM – T and pGEM – T easy Vector
System. Instruction for use of products. USA.
Pennak,R.W. 1978. Freshwater Invertebrae of the United State.2nd ed. John
Wiley and Sons. New york.
Prawirokusumo,S. 1991. Biokimia Nutrisi (Vitamin). BPFE. Yogyakarta.
Purdom. C.E. 1993. Genetics and Fish Breeding. Chapman & Hall. London.
Randall, J.E., 1987. A Pliraninary synopsis of the Grouper (Perciformes;
Serranidae; epinephelinae)of the Indo – Pacific regionin J.J.
Polavina, S. Raiston (editors). Tropical Sappers and Grouper ;
Biologi and Fisheries Management. Westview Press inc., Boulder and
London.
Rahman. MA and Maclean N. 1992. Production of transgenic tilapia
(Oreochromis niloticus) by one-cell-stage microinjection.
Aquaculture, 105 (1992) 219 – 232. Elsivier Science Publisher B.V.
Amsterdam.
Rocha A, S Ruiz, A Estepa and J.M Coll. 2004. Application of Inducible and
Targeted Gene Strategies to produce Transgenic Fish : A review.
Marine Biotechnology 6, 118 – 127. Springet-Verlag. New York. LLC.
Sambrook.J, Fritssch, E.F, Maniatis,T. 1989. Molecular Cloning. A
Laboratory Manual. Second edition. Cold Spring Harbor Lobaratory
Press. USA.
Suharsono dan Widyastuti,U. 2006. Penuntun Praktikum Pelatihan Teknik
Dasar Pengklonan Gen. Pusat Penelitian Sumberdaya Hayati dan
Bioteknologi. Institut Pertanian Bogor.
Suharsono. 2006. Prinsip Pengklonan Gen Melalui Teknologi DNA
Rekombinan. Pelatihan Teknik Dasar Pengklonan Gen. Bogor.
Sumantri.D. 2006. Efektifitas ovaprim dan aromatase inhibitor dalam
mempercepat pemijahan pada ikan lele dumbo Clarias sp. Skripsi.
Departemen Budidaya Perairan. Fakultas Perikanan dan Ilmu
Kelautan. Institut Pertanian Bogor. Bogor. 37 hal.
Sumantadinata,K. 2005. Materi narasumber Diklat Guru perikanan se
Indonesia. Departemen Pendidikan Nasional.
LAMPIRAN A
A7
Suyanto.R.S. 1999. Budidaya Ikan Lele. Penebar Swadaya. Jakarta.
Sandness,K. 1991. Studies on Vitamin C in Fish Nutrition Dept of Fisheries
and Marine Biologi. University of Bergen Norway.
Shiau,S.Y and C.W.Lan. 1996. Optimum dietary protein level and protein to
energy ratio for growth of grouper (Epinephelus malabaricus).
Aquaculture, 145: 259 – 266
Shimeno,S.H, Hosokawa and M.Takeda. 1996. Metabolic response of
juvenile yellowtail to dietary carbohidrat to lipid ratios. Fisheries
Science, 62 : 945 - 949
Sumantadinata, K., 1983. Pengembangbiakan Ikan-ikan Peliharaan di
Indonesia. Sastra Hudaya.
Sukma, O.M., 1987. Budidaya Ikan. Jakarta: Depdikbud.
Suseno, 1994. Pengelolaan Usaha Pembenihan Ikan Mas. Jakarta: Penebar
Swadaya.
Shepherd,J and Bromage, N. 2001. Intensive Fish Farming. Blackwell Sciene
Ltd. London.
Steffens W. 1989. Principles of Fish Nutrition. Ellis Horwood Limited. John
Wiley & Sons. England.
Stephen Goddard. 1996. Feed Management In : Intensive Aquaculture.
Chapman & Hall, New York.
Syarizal. 1988. Kadar optimum Vitamin E ( -Tocoferol) dalam Pakan Induk
ikan (Clarias batracus Linn). Thesis. IPB. Bogor.
Smith. 1982. Introduction to Fish Physiology. Publication Inc. England. P.
115.
Tacon,A.G.J. 1987. The Nutrition and Feeding of Farmed Fish and Shrimp
a Training Manual. FAO. Brazil.
Tacon,A.G.j. 1991. Proceeding of The Nutrition Workshop. American
Soybeen Association. Singapore.
Takeuchi W. 1988. Fish Nutrition and mariculture. Departemen of aquatic
Biosc. Tokyo University of Fisheries. JICA.
LAMPIRAN A
A8
Takeuchi; T.K. Watanabe; S. Satoh and T. Watanabe. 1992. Requirements of
Grass Carp Fingerling for -Tocoferol. Nipon. Suisan Galakkashi.
58 (9) : 743 – 1749.
Teknologi Tepat Guna, 2005. Pedoman Teknis Penanggulangan Penyakit
Ikan Budidaya Laut. Menteri Negara Riset dan Teknologi
Taufik Ahmad, Erna Ratnawati, dan M. Jamil R. Yakob. 2002, Budi Daya
Bandeng Secara Intensif. PT. Penebar Swadaya, Jakarta.
Tucker, C.S and Hargreaves, J.A. 2004. Biology and culture of Channel
Catfish. Elsevier. B.V. Amsterdam.
Volckaert.F.A, Hellemans.B.A, Galbusera.P, and Ollevier. F. 1994.
Replication, expression, and fate of foreign DNA during
embryonic and larval development of the African catfish (Clarias
gariepinus). Molecular Marine Biology and Biotechnology 3(2) 57 –
69.
Watanabe, T. 1988. Fish Nutrition and Mariculture. JICA Texbook The
General Aquaculture Course. Kanagawa International Fisheries
Training Centre Japan International Cooperation agency.
Wilson,R.P. 1994. Utilization of dietary carbohydrate by fish. Aquaculture,
124 : 67 – 80.
Yoshimatsu, dkk., 1986. Grouper final Report Marine Culture Research and
Development in Indonesia. ATA 192, JICA. P 103 – 129.
Yatim W. 1996. Genetika. Tarsito . bandung . 124 hal.
Zairin.M.J. 2003. Endokrinologi dan perannya bagi masa depan Perikanan
Indonesia. Orasi Ilmiah Guru Besar Tetap Ilmu Fisiologi
Reproduksi dan Endokrinologi Hewan Air. Fakultas Perikanan dan
Ilmu Kelautan. Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Zairin.M.J. 2002. Sex Reversal Memproduksi Benih Ikan Jantan dan Betina.
Penebar Swadaya. Jakarta.
LAMPIRAN B
B1
GLOSARI
Adenohipofisa
Adaptasi
Aerasi
Akrosom
Aksi gen aditif
Aklimatisasi
Albinisme
Alel
Alel dominan
Alel resesif
Aldehida
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
salah satu bagian dari kelenjar hipofisa yang
mengandung sel-sel pensekresi hormon
prolaktin, hormon Adrenocorticotropic (ACTH),
hormon pelepas tiroid (Thyroid Stimulating
Hormone), hormon pertumbuhan (STHSomatotropin)
dan Gonadotropin. Pars intermedia
mensekresi hormon pelepas melanosit
(Melanocyte Stimulating Hormone).
Masa penyesuaian suatu organisme dalam
lingkungan baru.
Pemberian udara ke dalam air untuk penambahan
oksigen
Organel penghujung pada kepala spema yang
dikeluarkan yang berfungsi membantu sperma
menembus sel telur.
aksi gen yang mana fenotipe heterosigot
merupakan intermedit antara kedua fenotipe
homosigot, kedua alel tidak memperlihatkan
dominansi, keduanya memberikan konstribusi
yang seimbang dalam menghasilkan suatu
fenotipe
Penyesuaian fisiologis terhadap perubahan salah
satu faktor lingkungan
kondisi genetik yang tidak sempurna yang
menyebabkan organisme tidak membentuk
pigmen
Bentuk alternatif suatu gen
Alel yang diekspresikan secara penuh dalam
fenotipe itu
Alel yang pemunculan fenotipenya ditutupi secara
sempurna
Molekul organik dengan gugus karbonil yang
LAMPIRAN B
B2
Anabolisme
Anadromus
Anafase
Androgen
Androgenesis
Antibiotik
Antibodi
Antigen
Asam amino
Asam
deoksiribonukleat
Asam lemak (fatty
acid)
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
terletak pada ujung kerangka karbon
Pembentukan zat organik kompleks dari yang
sederhana, asimilasi zat makanan oleh organisme
untuk membangun atau memulihkan jaringan dan
bagian-bagian hidup lainnya.
Ikan-ikan yang sebagian besar hidupnya
dihabiskan dilaut dan bermigrasi ke air tawar untuk
memijah.
Tahap mitosis dan meiosis yang mengikuti
metafase ketika separuh kromosom atau
kromosom homolog memisah dan bergerak ke
arah kutub gelendong.
Hormon steroid jantan utama, misalnya testoteron
Proses penjantanan
Bahan kimiawi yang membunuh bakteri atau
menghambat pertumbuhannya.
Imunoglobin pengikat antigen yang dihasilkan oleh
sel limfosit B, berfungsi sebagai efektor dalam
suatu respon imun.
Makromolekul asing yang bukan merupakan
bagian dari organisme inang dan yang memicu
munculnya respon imun.
Molekul organik yang memiliki gugus karboksil
maupun gugus amino. Asam amino berfungsi
sebagai monomer protein.
Suatu molekul asam nukleat berbentuk heliks dan
beruntai ganda yang mampu bereplikasi dan
menentukan struktur protein sel yang diwariskan.
Asam karboksilik dengan rantai karbon panjang.
Asam lemak bervariasi panjang dan jumlah dan
lokasi ikatan gandanya, tiga asam lemak berikatan
dengan satu molekul gliserol akan membentuk
lemak.
LAMPIRAN B
B3
Asam lemak jenuh
(Saturated fatty
acid)
Asam lemak tak
jenuh (Unsaturated
fatty acid)
Asam nukleat
Asam amino
essensial
Aseksual
Autosom
Auksospora
Backross
Basofil
Benthos
Blastomer
Blastula
Blastulasi
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Asam lemak dimana semua karbon dalam ekor
hidrokarbonnya dihubungkan oleh ikatan tunggal,
sehingga memaksimumkan jumlah atom hidrogen
yang dapat berikatan dengan kerangka karbon.
Asam lemak yang memiliki satu atau lebih ikatan
ganda antara karbon-karbon dalam ekor
hidrokarbon. Ikatan seperti itu mengurangi jumlah
atom hidrogen yang terikat ke kerangka karbon.
Suatu polimer yang terdiri atas banyak monomer
nukleotida, yang berfungsi sebagai cetak biru
untuk protein dan melalui kerja protein, untuk
semua aktivitas seluler. Ada dua jenis yaitu DNA
dan RNA.
Asam amino yang tidak dapat disintesis sendiri
oleh tubuh hewan sehingga harus tersedia dalam
makanan.
Perkembangbiakan tidak melalui perkawinan
Kromosom yang secara tidak langsung terlibat
dalam penentuan jenis kelamin, sebagai kebalikan
dari kromosom seks.
Sel-sel yang besar berasal dari
perkembangbiakan zigot baru
Bentuk perkawinan yang sering digunakan dalam
pemuliaan yaitu mengawinkan kembali antara
anak dan orangtuanya yang sama untuk beberapa
generasi.
Bersifat menyerap basa.
Organisme yang hidup di dasar perairan
Sel-sel anak yang dihasilkan selama pembelahan
zygot.
Rongga yang terbentuk selama fase pembelahan
zigot.
Proses pembentukan blastula
LAMPIRAN B
B4
Biomassa
Budidaya
Closed Breeding
Cyste
Dekomposer
Densitas
Deoksiribosa
Detritus
Disipon
Disucihamakan
Dorsal
Diagnosis
Diferensiasi gonad
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Bobot kering bahan organik yang terdiri atas
sekelompok organisme di dalam suatu habitat
tertentu atau bobot seluruh bahan organik pada
satuan luas dalam suatu waktu tertentu.
Usaha yang bermanfaat dan memberi hasil, suatu
sistem yang digunakan untuk memproduksi
sesuatu dibawah kondisi buatan.
Perkawinan yang dekat sekali kaitan keluarganya,
misalnya antara anak dan tetua atau antara antar
saudara sekandung.
Fase dorman dari crustacea karena kondisi
lingkungan yang tidak sesuai
Fungi dan bakteri saprotropik yang menyerap
nutrien dari materi organik yang tidak hidup seperti
bangkai, materi tumbuhan yang telah jatuh dan
buangan organisme hidup dan mengubahnya
menjadi bentuk anorganik.
Jumlah individu persatuan luas atau volume atau
masa persatuan volume yang biasanya dihitung
dalam gram/cm3 atau jumlah sel/ml.
Komponen gula pada DNA, yang gugus
hidroksilnya kurang satu dibandingkan dengan
ribosa, komponen gula pada RNA
Materi organik yang telah mati atau hancuran
bahan organik yang berasal dari proses
penguraian secara biologis.
Membersihkan badan air dengan mengeluarkan
kotoran bersama sebagian jumlah air.
Disterilkan dari jasad pengganggu.
Bagian punggung
Proses pemeriksaan terhadap suatu hal
Proses penentuan kelamin dengan pernyataan
fenotipe melalui perkembangan alat kelamin dan
ciri-ciri kelamin.
LAMPIRAN B
B5
Diploid
Diploidisasi
Donor
Dormant
Ekspresi gen
Elektroforesis gel
Embriogenesis
Endokrin
Enzim
Enzim restriksi
Estrogen
Eukaryot
Fekunditas
Feminisasi
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Keadaan perangkat kromosom bila setiap
kromosomnya diwakili dua kali (2n)
Penggandaan jumlah kromosom pada sel-sel
haploid
Pemberi sumbangan
Telur yang dibuahi dan merupakan dinding tebal
dan jika menetas menjadi betina amiktik.
Pengejewantahan bahan genetik pada suatu
makhluk hidup sebagai keseluruhan jumlah tabiat
yang khas.
Pemisahan asam nukleat atau protein
berdasarkan ukuran dan muatan listriknya,
dengan cara mengukur laju pergerakkannya
melalui suatu medan listrik dalam suatu gel.
Proses perkembangan embrio
Kelenjar/sel yang menghasilkan hormon
Molekul protein komplek yang dihasilkan oleh sel
dan bekerja sebagai katalisator dalam berbagai
proses kimia didalam tubuh makhluk hidup.
Enzim yang digunakan untuk memotong fragmen
DNA yang memiliki sekuen tertentu.
Hormon seks steroid betina yang utama.
Makhluk yang sel-selnya mengandung inti sejati
yang diselimuti selaput inti, mengalami meiosis,
membelah dengan mitosis dan enzim oksidatifnya
dikemas dalam mitokondria.
Jumlah sel telur yang dihasilkan oleh seekor
hewan betina pertahun atau persatuan berat
hewan.
Proses pembetinaan
LAMPIRAN B
B6
Fenotipe
Feromon
Fertilisasi
Flagella
Fotosintesis
Galur
Gamet
Gastrula
Gastrulasi
Gelendong
Gen
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Ciri fisik dan fisiologis pada suatu organisme atau
sifat yang terlihat pada makhluk hidup yang
dihasilkan oleh genotipe bersama-sama dengan
faktor lingkungan.
Sinyal kimiawi atsiri dan kecil yang berfungsi
dalam komunikasi diantara hewan-hewan dan
bertindak sangat mirip dengan hormon dalam
mempengaruhi fisiologi dan tingkah laku.
Penyatuan gamet haploid untuk menghasilkan
suatu zigot diploid.
Tonjolan berbentuk cambuk pada salah satu sel
untuk alat gerak.
Pengubahan energi cahaya menjadi energi
kimiawi yang disimpan dalam glukosa atau
senyawa organik lainnya.
Pengelompokkan anggota-anggota jenis yang
hanya memiliki satu atau sejumput ciri, biasanya
bersifat homozigot dan dipertahankan untuk
keperluan percobaan genetika.
Sel sperma atau telur haploid, gamet menyatu
selama reproduksi seksual untuk menghasilkan
suatu zigot diploid.
Tahapan pembentukan embrio berlapis dua dan
berbentuk piala.
Proses pembentukan gastrula dari blastula atau
proses pembentukan tiga daun kecambah
ektoderm, mesoderm dan endoderm.
Kumpulan mikrotubula yang menyelaraskan
pergerakan kromosom selama pembelahan
eukariotik.
Bagian kromosom yang mengatur sifat-sifat
keturunan tertentu atau satuan informasi yang
terdiri atas suatu urutan nukleotida spesifik dalam
DNA.
LAMPIRAN B
B7
Generasi F1
Generasi F2
Genom
Genotipe
Ginogenesis
Gonad
Gonadotropin
Haploid
Heritabilitas
Hermaphrodit
Heliks ganda
Haemoglobin
Herbivora
Heterozigot
Heterosis
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Turunan pertama atau turunan hibrid dalam
fertilisasi-silang genetik.
Keturunan yang dihasilkan dari perkawinan
generasi hibrid F1.
Komplemen lengkap gen-gen suatu organisme,
materi genetik suatu organisme.
Kandungan genetik suatu organisme.
Proses perkembangan embrio yang berasal dari
telur tanpa kontribusi material genetik jantan
Organ seks jantan dan betina, organ penghasil
gamet pada sebagian besar hewan.
Hormon yang merangsang aktivitas testes dan
ovarium.
Memiliki jumlah kromosom yang khas untuk gamet
makhluknya.
Keragaman fenotipe yang diakibatkan oleh aksi
genotipe atau menggambarkan tentang
persentase keragaman fenotipe yang diwariskan
dari induk kepada keturunannya. Dinotasikan
dengan huruf h2 dengan nilai berkisar antara 0 – 1.
Individu yang mempunyai alat kelamin jantan dan
betina.
Bentuk DNA asli
Protein mengandung besi dalam sel darah merah
yang berikatan secara reversibel dengan oksigen.
Hewan heterotropik yang memakan tumbuhan.
Mempunyai dua alel yang berbeda untuk suatu
sifat genetik tertentu.
Suatu ukuran untuk menilai keunggulan dan
ketidakunggulan hibrid
LAMPIRAN B
B8
Hibrid
Hibridisasi
Hipofisasi
Hipotalamus
Histon
Homeostasis
Homozigot
Hormon
Ikan transgenik
Inaktivasi sperma
Inbreeding
Infeksi Retroviral
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Turunan dari tetua yang secara genetik sangat
berbeda, bahkan mungkin berlainan jenis atau
marga.
Perkawinan antara individu yang berbeda atau
persilangan.
Salah satu teknik dalam pengembangbiakan ikan
dengan cara menyuntikkan ekstrak kelenjar
hipofisa kepada induk ikan untuk mempercepat
tingkat kematangan gonad.
Bagian ventral otak depan vertebrata, yang
berfungsi dalam mempertahankan homeostasis,
khususnya dalam mengkoordinasikan sistem
endokrin dengan sistem saraf.
Protein kecil dengan porsi besar yang terdiri dari
asam amino bermuatan positif yang berikatan
dengan DNA bermuatan negatif dan berperan
penting dalam struktur kromatinnya.
Kondisi fisiologis yang mantap dalam tubuh.
Mempunyai dua alel yang identik untuk suatu sifat
tertentu.
Bahan kimia pembawa sinyal yang dibentuk dalam
sel-sel khusus pada kelenjar endokrin. Hormon
disekresikan ke dalam darah kemudian disalurkan
ke organ-organ yang menjalankan fungsi-fungsi
regulasi tertentu secara fisiologik dan biokimia.
Ikan yang memiliki DNA asing didalam tubuhnya
Menonaktifkan sperma
Perkawinan antara individu-individu yang
sekerabat yaitu berasal dari jantan dan betina
yang sama.
Salah satu metode transfer gen. Metode ini
menggunakan gen-gen heterogen yang
dimasukkan ke dalam genome virus dan dapat
dipindahkan kepada inang yang terinfeksi virus
tersebut.
LAMPIRAN B
B9
Inkubasi
Interfase
Karakter kuantitatif
Kariotipe
Katadromus
Kelenjar hipofisa
Kromosom
Kopulasi
Kista
Larva
Larutan hipoklorit
Lokus
Maskul;inisasi
Meiosis
Metasentrik
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Masa penyimpanan
Fase dimana tidak ada perubahan pada inti sel,
waktu istirahat.
Suatu ciri yang dapat diturunkan dalam suatu
populasi yang bervariasi secara kontinu sebagai
akibat pengaruh lingkungan dan pengaruh
tambahan dua atau lebih gen.
Metode pengorganisasian kromosom suatu sel
dalam kaitannya dengan jumlah, ukuran dan jenis.
Ikan-ikan yang sebagian besar hidupnya
dihabiskan di perairan tawar dan bermigrasi ke
laut untuk memijah.
Kelenjar kecil dibagian otak bawah yang
menghasilkan berbagai macam hormon yang
dibutuhkan pada makhluk hidup .
Struktur pembawa gen yang mirip benang yang
terdapat di dalam nukleus.
Proses perkawinan
Suatu stadia istirahat pada hewan cladosera atau
crustacea tingkat rendah.
Organisme yang belum dewasa yang baru keluar
dari telur atau stadia setelah telur menetas.
Larutan yang mengandung HClO
Tempat khusus disepanjang kromosom tertentu
dimana gen tertentu berada.
Penjantanan.
Tipe pembelahan sel dan nukleous ketika jumlah
kromosom direduksi dari diploid ke haploid.
Kromosom yang sentromernya terletak ditengahtengah.
LAMPIRAN B
B10
Metafase
Metamormofose
Mikropil
Mikroinjeksi
Mitosis
Morula
Nauplii
Neurohipofisa
Omnivore
Ovarium
Ovipar
Ovivipar
Outbreeding
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Tahapan mitosis dan meiosis ketika kromosom
mencapai keseimbangan posisi pada bidang
ekuator.
Perubahan bentuk organisme dalam daur hidup
Lubang kecil pada telur tempat masuknya sperma.
Metode yang digunakan dalam mengintroduksi
DNA asing ke dalam pronukleus atau sitoplasma
telur yang telah terbuahi. DNA asing disuntikkan
pada saat fase 1-2 sel.
Proses pembelahan nukleus pada sel eukariotik
yang secara konvensional dibagi menjadi lima
tahapan : profase, prometafase, metafase,
anafase, dan telofase. Mitosis mempertahankan
jumlah kromosom dengan cara mengalokasikan
kromosom yang direplikasikan secara sama ke
masing-masing nukleus anak.
Sekelompok sel anak (blastomer) yang terbentuk
selama fase pembelahan zygot.
Bentuk stadia setelah menetas pada crustacea
atau copepoda.
Bagian dari kelenjar hipofisa, terdiri dari pars
nervosa yang berfungsi mensekresi Oxytoxin,
Arginin Vasotocin dan Isotocin
Organisme pemakan segala
Kelenjar kelamin betina yang menghasilkan ovum.
Berkembangbiak dengan menghasilkan telur.
Berkembangbiak dengan menghasilkan telur
tetapi telur tersebut menetas dalam tubuh
induknya.
Perkawinan antara individu-individu yang tidak
sekerabat (berbeda induknya), masih dalam satu
varietas atau beda varietas.
LAMPIRAN B
B11
Ovulasi
Partenogenesis
Pemijahan
Pigmen
Plasmid
Polar body
Profase
Progeni
Poliploidisasi
Reproduksi
Seleksi
Sentromer
Seks reversal
Spermatogenesis
Spermatogonium
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Proses terlepasnya sel telur dari folikel.
Perkembangbiakan telur menjadi individu baru
tanpa pembuahan telur dan menghasilkan telur
diploid.
Proses peletakan telur atau perkawinan
Zat warna tubuh
Molekul DNA sirkular yang bereplikasi pada sel-sel
bakteri secara independent.
Sel telur hasil pembelahan meiosis yang tidak
memiliki sitoplasma.
Tahap pertama meiosis dan mitosis ketika
kromosom mulai jelas terlihat.
Keturunan yang berasal dari sumber yang sama,
anak cucu
Proses pergantian kromosom dimana individu
yang dihasilkan mempunyai lebih dari dua set
kromosom.
Proses perkembangbiakan baik secara aseksual
maupun seksual.
Pemisahan populasi dasar yang digunakan ke
dalam kedua kelompok, yaitu kelompok terpilih
dan kelompok yang harus terbuang.
Bagian kromosom yang terletak pada titik ekuator
kumparan pada metafase, tempat melekat benang
penarik gelendong, posisi sentromer menentukan
bentuk kromosom.
Proses pembalikan kelamin dengan menggunakan
metode tertentu.
Proses perkembangan spermatogonium menjadi
spermatis
Sel-sel kecambah untuk membentuk sperma
LAMPIRAN B
B12
Spermatozoa
Spermiasi
Spermiogenesis
Submetacentrik
Subtelocentrik
Spektrofotometer
Telofase
Testis
Tetraploid
Triploid
Triploidisasi
Vitellogenesis
Zygot
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
:
Sel gamet jantan dengan inti haploid yang
ememiliki bentuk berekor.
Proses dimana spermatozoa dilepaskan dari cyste
dan masuk kedalam lumen.
Proses metamorfosa spermatid menjadi
spermatozoa
Sentromer terletak pada ujung kromosom yang
memiliki dua lengan yang tidak sama panjangnya.
Sentromer juga terletak pada ujung kromosom
namun masih jelas terlihat adanya lengan pendek.
Suatu instrumen yang mengukur porsi dari cahaya
dengan panjang gelombang yang berbeda yang
diserap dan dihantarkan oleh suatu larutan
berpigmen.
Tahap akhir dari mitosis atau meiosis ketika
pembagian sitoplasma dan penyusunan inti
selesai.
Gonad yang berperan menghasilkan sperma
Individu yang mempunyai empat perangkat
kromosom haploid pada nukleusnya.
Individu yang mempunyai tiga perangkat
kromosom haploid pada nukleusnya.
Proses pembuatan organisme triploid dengan
menggunakan kejutan suhu untuk menahan polar
body II atau menahan pembelahan mitosis awal.
Proses deposisi kuning telur, dicirikan oleh
bertambah banyaknya volume sitoplasma yang
berasal dari vitelogenin eksogen yang membentuk
kuning telur.
Sel diploid sebagai hasil perpaduan gamet jantan
dan gamet betina haploid.
LAMPIRAN C
C1
DAFTAR GAMBAR
No. Judul Halaman
1.1. Ikan Mas (Cyprinus carpio)
1.2. Ikan Nila (Oreochromis niloticus)
1.3. Ikan Gurami (Osphronemus gouramy)
1.4. Udang galah (Macrobrachium rosenbergii)
1.5. Ikan Patin (Pangasius hiphothalamus)
1.6. Ikan Bawal (Colosoma brachyponum)
1.7. Ikan Tawes (Puntius gonionotus)
1.8. Ikan Tambakan (Helostoma temmincki)
1.9. Ikan Sepat (Trichogaster pectolaris)
1.10. Ikan Kowan (Ctenopharyngodon idella)
1.11. Ikan Lele (Clarias sp)
1.12. Ikan Sidat (Anguilla sp)
1.13. Udang vanamei (Penaeus vannamei)
1.14. Ikan Bandeng (Chanos chanos)
1.15. Kerapu Merah (Plectopomus maculates)
1.16. Ikan Kakap putih (Lates calcarifer)
1.17. Ikan Kerapu (Chromileptes altivelis)
1.18. Ikan Betutu (Oxyeleotris marmorata)
1.19. Lobster Air Tawar (Cherax quadricarinatus)
1.20. Ikan Beronang (Siganus gutatus)
2.1 Kolam tanah
2.2 Kolam semiintensif
2.3 Kolam intensif
2.4 Kolam Pemijahan
2.5 Kolam Penetasan
2.6 Kolam Pemeliharaan
2.7 Kolam Pemberokan
2.8 Bak beton
2.9 Bak Fiber
2.10 Bak Plastik
2.11 Akuarium Kelompok
2.12 Akuarium sejenis
2.13 Akuarium Tanaman
2.14 Kolam jaring terapung tampak atas
2.15 Kolam jaring terapung tampak depan
2.16 Bentuk pematang trapesium sama kaki
2.17 Bentuk pematang trapesium tidak sama kaki
2.18 Kemiringan dasar kolam
2.19 Saluran tengah atau kemalir
2.20 Pintu pemasukan dan pengeluaran air di tengah
2.21 Pintu pemasukan dan pengeluaran air di sudut
44444555555666666667
22
22
22
23
23
23
24
24
24
24
25
26
26
26
27
28
28
28
29
29
29
LAMPIRAN C
C2
2.22 Pintu pemasukan dan pengeluaran air bentuk L
2.23 Pintu pemasukan dan pengeluaran air system monik
2.24 Pemasukan dan pengeluaran air pipa paralon
2.25 Meletakkan lembaran kaca
2.26 Mengukur kaca
2.27 Memotong kaca
2.28 Menghaluskan bagian pinggir kaca
2.29 Lem silicon dan alat tembak lem
2.30 Penggunaan alat tembak lem
2.31 Lakban pada kaca
2.32 Mengeringkan akuarium
2.33 Kerangka jarring apung
2.34 Pelampung drum besi
2.35 Jangkar
2.36 Pola jarring
2.37 Pengeringan dasar kolam
2.38 Mengairi kolam
2.39 Sanitasi bak budidaya
3.1 Termometer
3.2 Secchi disk
3.3 Salinometer
3.4 Refraktometer
3.5 Flow meter
3.6 DO meter
3.7 pH meter
3.8 Kerta Lakmus
3.9 Planktonnet
3.10 Haemocytometer
3.11 Ekman Dredge
3.12 Spektrofotometer
4.1 Diagram skematik perkawinan dua tipe linebreeding
4.2 Induk ikan lele betina dan genital papilla
4.3 Induk ikan lele jantan dan genital papilla
4.4 Induk ikan mas betina dan genital papilla
4.5 Induk ikan mas jantan dan genital papilla
4.6 Induk ikan nila
4.7 Induk ikan patin jantan dan betina
4.8 Kanulasi induk ikan patin
4.9 Skema pengaturan sekresi hormone
4.10 Letak dan jenis kelenjar endokrin ikan dari arah depan
4.11 Mekanisme hormone steroid
4.12 Representasi diagram pada penempang sagital otak
4.13 Pengambilan kelenjar hipofisa
4.14 Penggerusan kelenjar hipofisa
4.15 Pemutaran alat sentrifuse
4.16 Pembuatan ekstrak kelenjar hipofisa
30
30
30
32
32
32
32
33
33
34
34
37
38
38
41
43
46
48
71
71
71
71
71
71
72
72
72
72
72
72
95
96
97
100
100
102
102
103
105
106
109
110
111
112
112
112
LAMPIRAN C
C3
4.17 Pengambilan kelenjar ekstrak hipofisa
4.18 Penyuntikan ekstrak kelenjar hipofisa
4.19 Pemasangan kakaban dikolam pemijahan cara Sunda
4.20 Kolam pemijahan cara Cimindi
4.21 Kolam pemijahan cara Magek
4.22 Kolam pemijahan cara Kantong
4.23 Kolam pemijahan cara Dubish
4.24 Kolam pemijahan cara Hofer
4.25 Diagram susunan kolam pemijahan bersekat
4.26 Sampling benih ikan
4.27 Pengemasan benih
6.1 Disk mill
6.2 Hammer mill
6.3 Vertical mixer
6.4 Horizontal mixer
6.5 Alat penggiling daging
6.6 Alur proses pembuatan pakan skala pabrikasi
6.7 Silo
6.8 Alat pengukur kadar air
6.9 Peralatan pengukuran kadar protein
6.10 Peralatan pengukuran kadar lemak
6.11 Peralatan pengukuran kadar serat kasar
6.12 Peralatan pengukuran kadar abu
6.13 Metode pemberian pakan dengan tangan
6.14 Ametode pemberian pakan dengan demand feeder
7.1 Chlorella sp
7.2 Tetrasemis sp
7.3 Scenedesmus sp
7.4 Skeletonema costatum
7.5 Spirulina sp
7.6 Brachionus sp
7.7 Artemia salina
7.8 Moina sp
7.9 Daphnia sp
7.10 Paramecium
7.11 Tubifex sp
7.12 Erlemeyer
7.13 Cawan Petri
7.14 Jarum ose
7.15 Pipet kaca
7.16 Tabung reaksi
7.17 Mikroskop
7.18 Bak fiber
7.19 Aerator
7.20 Daphnia sp (bagian-bagian tubuh)
7.21 Kemasan cyst Artemia
112
113
118
119
120
121
122
123
129
145
159
283
283
284
284
286
287
287
293
294
294
295
296
323
323
331
332
332
333
333
334
334
335
335
335
335
336
337
337
337
337
337
338
338
360
367
LAMPIRAN C
C4
7.22 Perkembangbiakan Artemia
7.23 Rotifera
7.24 Daur hidup rotifer
7.25 Tubifex
7.26 Daur hidup tubifex
8.1 Ichthyophthirius multifiliis
8.2 Siklus hidup Ichthyophthirius multifiliis
8.3 Trichodina tampak bawah
8.4 Trichodina tampak atas
8.5 Myxobolus sp
8.6 Myxosoma sp
8.7 Thellohanellus sp
8.8 Henneguya sp
8.9 Dactylogyrus sp
8.10 Gyrodactilus sp
8.11 Lernea sp
8.12 Argulus indicus tampak bawah
8.13 Saprolegnia sp
8.14 Achlya sp
8.15 Aeromonas sp
8.16 Mekanisme kerja mekanik
8.17 Penumpukan partikel pada media filter mekanik
8.18 Filter air
8.19 Dropsy pada ikan plati dan cupang
8.20 Dropsy tampak samping
8.21 Akumulasi cairan
8.22 Contoh kasus kelainan gelembung renang
8.23 Gejala umum ulcer
8.24 Ikan terserang white spot
373
382
384
391
392
405
406
407
407
407
408
408
408
409
409
410
411
411
411
412
413
414
415
418
419
419
420
421
422
LAMPIRAN C
C5
DAFTAR TABEL
No. Judul Halaman
1.1 Komoditas akuakultur yang sudah lazim
dibudidayakan dalam system budidaya di Indonesia
2.1 Perbandingan antara ukuran akuarium dengan
ketebalan kaca
2.2 Jenis pelampung dan lama pemakaian
2.3 Ukuran mata jaring yang digunakan berdasarkan
ukuran ikan yang dibudidayakan
2.4 Perbandingan jumlah mata jarring yang harus
dipotong dalam berbagai ukuran kantong jarring dan
mata jaring.
2.5 Dosis kapur tohor (CaO)
3.1 Pengaruh suhu air terhadap respon konsumsi pakan
3.2 Hubungan antara kadar oksigen terlarut dan suhu
3.3 Pengaruh pH terhadap komunitas biologi perairan
3.4 Presentase ammonia bebas terhadap ammonia total
3.5 Kriteria kualitas air Golongan C
3.6 Parameter kualitas air untuk budidaya ikan dan
peralatan pengukuran yang dapat digunakan
4.1 Perbandingan strategi, keuntungan dan kerugian dari
seleksi individu (A), seleksi within family (B) dan
seleksi between family (C)
4.2 Pengaruh silang dalam terhadap frekuensi genotype
dan frekuensi alel dalam lokus
4.3 Ciri-ciri induk jantan dan betina ikan mas
4.4 Ciri-ciri induk jantan dan betina ikan mas matang
gonad
4.5 Ciri-ciri induk jantan dan betina ikan nila
4.6 Dosis pengapuran untuk menetralkan dari berbagai
jenis tekstur tanah dan pH awal yang berbeda
4.7 Perkembangan stadia embrio ikan lele pada suhu 28
oC
4.8 Lama pemeliharaan ikan mas berdasarkan sistem
pemeliharaan
5.1 Kebutuhan energi untuk ikan Salmon
5.2 Kebutuhan energi untuk Catfish
5.3 Nama dan singkatan asam amino
5.4 Kebutuhan asam amino essensial pada beberapa
jenis ikan dalam % protein pakan
5.5 Tingkat kebutuhan protein optimal (% berat kering
pakan) pada beberapa jenis ikan budidaya
5.6 Klasifikasi karbohidrat
3
31
37
39
42
45
56
60
62
66
69
70
78
94
99
99
101
128
134
150
166
166
171
178
182
184
LAMPIRAN C
C6
5.7 Nilai kecernaan karbohidrat berdasarkan kadar dan
sumbernya oleh beberapa ikan budidaya
5.8 Kebutuhan optimum karbohidrat dalam pakan untuk
pertumbuhan beberapa ikan budidaya
5.9 Nama umum asam lemak
5.10 Kelompok asam lemak unsaturated jenuh
5.11 Kebutuhan asam lemak essensial pada ikan
5.12 Komposisi asam lemak essensial pada berbagai
sumber lipid (g/100 g asam lemak)
5.13 Penggolongan beberapa sumber vitamin A
5.14 Kebutuhan vitamin A beberapa spesies ikan budidaya
5.15 Kekurangan vitamin A pada beberapa jenis ikan
5.16 Kebutuhan vitamin D beberapa spesies ikan budidaya
5.17 Kebutuhan vitamin E beberapa spesies ikan budidaya
5.18 Kriteria respon ikan terhadap pemberian vitamin E
sesuai dengan kebutuhan ikan budidaya
5.19 Gejala kekurangan vitamin E pada beberapa ikan
budidaya
5.20 Kebutuhan tiamin dalam pakan
5.21 Tanda-tanda kekurangan tiamin A pada ikan budidaya
5.22 Kebutuhan vitamin B2 dalam pakan ikan
5.23 Tanda-tanda kekurangan riboflavin pada ikan
budidaya
5.24 Kebutuhan vitamin B6 dalam pakan ikan
5.25 Tanda-tanda kekurangan piridoksin pada ikan
budidaya
5.26 Kebutuhan vitamin B5 dalam pakan ikan
5.27 Tanda-tanda kekurangan asam pantotenat pada ikan
budidaya
5.28 Kebutuhan biotin dalam pakan ikan
5.29 Tanda-tanda kekurangan biotin pada ikan budidaya
5.30 Kebutuhan asam folat dalam pakan ikan
5.31 Tanda-tanda kekurangan asam folat pada ikan
budidaya
5.32 Kebutuhan vitamin B12 dalam pakan ikan
5.33 Tanda-tanda kekurangan vitamin B12 pada ikan
budidaya
5.34 Kebutuhan Niasin dalam pakan ikan
5.35 Tanda-tanda kekurangan Niasin pada ikan budidaya
5.36 Kebutuhan inositol dalam pakan ikan
5.37 Tanda-tanda kekurangan inositol pada ikan budidaya
5.38 Kebutuhan Kolin dalam pakan ikan
5.39 Tanda-tanda kekurangan kolin pada ikan budidaya
5.40 Kebutuhan vitamin C dalam pakan ikan
5.41 Tanda-tanda kekurangan vitamin C pada ikan
budidaya
188
190
194
195
196
197
202
203
203
205
207
208
209
211
212
213
214
215
216
218
218
220
220
221
222
223
223
224
225
226
226
227
228
229
230
LAMPIRAN C
C7
5.42 Kebutuhan mineral makro dalam pakan pada
berbagai jenis ikan air tawar (mg/kg atau g/kg berat
kering)
5.43 Kebutuhan mineral mikro dalam pakan pada berbagai
jenis ikan air tawar (mg/kg atau g/kg berat kering)
5.44 Kebutuhan zat besi pada beberapa jenis ikan
5.45 Kebutuhan mineral seng pada beberapa jenis ikan
5.46 Kebutuhan mangan pada beberapa jenis ikan
5.47 Kebutuhan mineral tembaga pada beberapa jenis ikan
6.1 Beberapa jenis ikan berdasarkan kebiasaan
makannya
6.2 Kandungan nutrisi bahan baku nabati
6.3 Kandungan nutrisi bahan baku hewani
6.4 Kandungan nutrisi bahan baku limbah pertanian
6.5 Rekomendasi penggunaan bahan baku untuk pakan
ikan dan udang dalam %
6.6 Jenis dan kandungan nutrisi bahan baku ikan
karnivora
6.7 Hasil analisa proksimat bahan baku
6.8 Bahan baku pakan yang mengandung zat antinutrisi
dan cara menghilangkan zat antinutrisi
6.9 Acuan bentuk dan tipe pakan buatan untuk ikan
budidaya
6.10 Skedul pemberian pakan dalam usaha budidaya ikan
6.11 Skedul pemberian pakan pada udang
6.12 Jumlah pakan harian pudang dengan kelangsungan
hidup 80%
7.1 Komposisi pupuk pada media stok murni kultur algae
7.2 Komposisi Trace Metal Solution
7.3 Komposisi pupuk pada phytoplankton air tawar
7.4 Komposisi pupuk phytoplankton semi masal
7.5 Komposisi pupuk kultur missal
7.6 Komposisi campuran vitamin pada media Dphnia
7.7 Komposisi bahan kimia untuk membuat air laut kadar
garam 5 permill
7.8 Komposisi bahan kimia untuk membuat air laut kadar
garam 30 permill
7.9 Ukuran badan dan nilai kalori rotifer
7.10 Kandungan komposisi beberapa bahan
bioenkapsulasi
8.1 Bahan ekstrak dari tumbuh-tumbuhan serta dosisnya
8.2 Obat dan bahan kimia yang digunakan pengobatan
penyakit ikan
237
237
238
239
240
241
247
251
252
252
254
255
256
285
291
320
321
322
341
341
342
346
347
363
371
372
383
398
402
443
LAMPIRAN C
C8
0 komentar:
Posting Komentar